靶向肝癌的GPC3-CAR-T细胞的构建与功能鉴定

目的:构建靶向GPC3阳性肝癌细胞的嵌合抗原受体修饰T细胞[chimeric antigen receptor-modified T cell,CAR-T cell],并评估其对GPC3阳性肝癌细胞的杀伤效能.方法:选择偏爱密码子技术改造基因序列,以增强CAR分子表达效率,设计靶向GPC3抗原的CAR分子基因并构建携带GPC3-CAR基因的慢病毒表达载体pCDH-GPC3-CAR,感染T细胞;采用Western blotting、流式细胞术、实时细胞监测和ELISA技术分别检测GPC3-CAR分子在CAR-T细胞的表达、慢病毒感染T细胞效率、GPC3-CAR-T细胞对GPC3阳性肝癌细胞的杀伤活性和特异性.结果:双酶切pCDH-GPC3-CAR重组慢病毒质粒可见分子质量和GPC3-CAR分子一致的基因片段,成功构建pCDH-GPC3-CAR慢病毒质粒.约54.38％的GPC3-T细胞表达GPC3-CAR分子,称为GPC3-CAR-T细胞.GPC3-CAR-T细胞对GPC3阳性的肝癌细胞Huh-7比GPC3阴性的肝癌细胞SK-HEP-1具有更高效的杀伤能力[(78.96±4.76)％ vs (6.87±3.15)％,P＜0.01].与GPC3阳性Huh-7肝癌细胞共培养的肝癌GPC3-CAR-T细胞分泌IFN-γ水平比Mock组高效[(21 371.4±1 808.3) vs (152.8±12.5) pg/ml,P＜0.01],这可能是其高效杀伤肝癌细胞的机制之一.结论:靶向肝癌的GPC3-CAR-T细胞具有高效分泌IFN-γ细胞因子并特异高效杀伤GPC3阳性肝癌细胞的能力,为进一步推进GPC3-CAR-T临床前和临床研究奠定基础.     

嵌合抗原受体修饰的CD19-CAR-T的体外构建、扩增及初步功能鉴定

目的： 探索一种特异性靶向 CD19 分子的嵌合抗原受体修饰的 CD19-CAR-T 的构建方法,并明确其体外杀伤 靶细胞的效果。 方法： 运用分子克隆技术,将 PCR 获得的 CD19-CAR 片段构建到 pCDH-GFP 慢病毒载体上,利用包装 的慢病毒颗粒转染供者 CD3 + T 细胞,通过流式细胞术及 PCR鉴定转染效率,并通过 7-AAD染色鉴定扩增得到的CD19- CAR-T细胞体外杀伤CD19 + Ramos靶细胞的效果。 结果： 经慢病毒转染T细胞在体外培养 10 d 后,CD3 + T 扩增达（78.8± 23.2）倍, （58.3±5.4）%的 CD3 + T 细胞表达 GFP,CD19-CAR-T 体外杀伤 CD19 + Ramos 靶细胞在效靶比5∶1时效率为（57.4± 9.3）%。 结论： 本实验成功建立了一种有效的体外构建及扩增CD19-CAR-T的方法,且具有明显靶向性,为CD19 + B细胞肿瘤临 床治疗提供实验依据。     

EGFRvⅢ/CAR-T对EGFRvⅢ + U87胶质瘤细胞和裸鼠移植瘤的特异性 杀伤作用

目的： 制备靶向EGFRvⅢ的第三代CAR-T(EGFRvⅢ/3CAR-T),检测其在体外和体内对EGFRvⅢ + U87胶质瘤细胞的 特异性杀伤效应。 方法： 用磷酸钙沉淀法将三质粒共转染HEK293T细胞包装EGFRvⅢ/3CAR慢病毒（LV-EGFRvⅢ/3CAR）,感 染健康人CD3 + T细胞,Western blotting和流式细胞术检测T细胞中EGFRvⅢ/3CAR的表达水平, 51 Cr释放法检测EGFRvⅢ/3CAR- T对EGFRvⅢ + U87细胞的体外杀伤效应,ELISA法检测EGFRvⅢ/3CAR + T的IFN-γ分泌水平。构建裸鼠异种胶质瘤移植模型, 检测EGFRvⅢ/3CAR-T对移植瘤的体内杀伤活性。 结果： EGFRvⅢ/3CAR慢病毒包装成功,滴度值为5×10 6 TU/ml。Western blotting在相对分子质量58 000处检测到EGFRvⅢ/3CAR表达,未转导组无相同分子量蛋白表达。流式细胞术检测结果显示EG- FRvⅢ/3CAR转导效率平均为52.3%, 51 Cr释放法检测EGFRvⅢ/3CAR-T特异性杀伤作用与E∶T值（E∶T为4∶1、为8∶1、16∶1、32∶ 1）呈正比关系。ELISA法检测到细胞因子IFN-γ分泌量为(1 836±148.2) pg/ml,与NT T和GFP + T细胞相比差异有统计学意义 （ P ＜0.01）。EGFRvⅢ/3CAR + T细胞的特异性杀伤活性及IFN-γ分泌均依赖于EGFRvⅢ在U87细胞中的表达水平。体内肿瘤生 长检测结果显示,注射后3周EGFRvⅢ/3CAR + T组肿瘤体积较GFP + T细胞和PBS组差异有统计学意义（ P< 0.01）。 结论： EGFRv Ⅲ/3CAR-T在体外和体内均能发挥靶向杀伤EGFRvⅢ + 脑胶质瘤细胞的作用,为后续临床试验提供依据。     

CD7纳米抗体衍生的CAR-T细胞对CD7阳性急性髓系白血病细胞的杀 伤活性

目的：针对CD7阳性的急性髓系白血病（acute myeloid leukemia，AML）细胞开发一种新型的CD7嵌合抗原受体修饰 的T细胞（CD7-CAR-T），观察其对CD7阳性AML细胞的杀伤作用。方法：基于CD7纳米抗体序列、CD28和4-1BB共刺激域序 列构建CD7-CAR慢病毒载体，包装病毒颗粒并与CD7蛋白阻断剂（protein expression blocker，PEBL）慢病毒共感染人T细胞， 制 备CD7-CAR-T；应用实时无标记动态细胞分析技术（real time cellular analysis，RTCA）验证CD7-CAR-T对CD7过表达的293T细 胞的特异性杀伤能力，流式细胞术检测CD7-CAR-T对CD7高、中、低表达的AML细胞（KG-1、HEL、Kasumi-1细胞）的增殖和细 胞因子分泌的影响。结果：成功构建CD7-CAR-T 细胞并阻断其表面 CD7 的表达，与 T 细胞相比，CD7-CAR-T 细胞可以抑 制 CD7-293T 细胞的增殖并促进其分泌 TNF、Granzyme B 和 INF-γ，可显著促进 CD7 阳性的 KG-1 细胞和 HEL细胞的凋亡 （t=147.1、 P＜0.01； t=23.57、 P＜0.01）和细胞 因 子 分 泌（P＜0.05 或 P＜0.01），而对低表达 CD7 的 Kasumi-1 细胞无显著影响 （t=0.7058、 P＞0.05）。结论： CD7-CAR-T细胞能够特异性杀伤CD7阳性的AML细胞。     

双特异性CAR-T细胞对EGFRvⅢ+/CD133+胶质瘤干细胞的靶向杀伤

目的：制备双特异性CAR-T(bs CAR-T)细胞,观察其对表达表皮生长因子Ⅲ型突变阳性(EGFRvⅢ⁺,简称vⅢ⁺)和CD133+胶质瘤干细胞的靶向杀伤作用。方法：基于前期研制的vⅢ/CD133双特异性微抗体和二代CAR构建的双特异性CAR(bs CAR),制备慢病毒载体转染人外周血T细胞,FCM和WB法检测bs CAR转染效率和表达水平。bs CAR-T细胞和vⅢ⁺/CD133⁺U87胶质瘤干细胞共培养,乳酸脱氢酶(LDH)释放实验、IFN-γ分泌实验检测其特异性杀伤作用和对IFN-γ分泌的促进作用。制备裸鼠vⅢ+/CD133+U87干细胞移植瘤模型检测bs CAR-T细胞对移植瘤生长的抑制作用。结果：vⅢsc Fv和CD133sc Fv通过重叠PCR无缝连接入二代CAR表达框(S-vⅢscFv/CD133scFv-Hinge-TM-CD137-CD3ζ)中,然后克隆入p CDH-MSCV-MCS-EF1-copGFP载体的Eco RⅠ和Bam HⅠ位点(pbs CAR)。3种质粒(p VSV...     

自杀基因作为一种“安全性开关”控制CAR-T细胞毒性的临床前研究

目的：探讨小分子化学诱导药AP1903能否在体内外终止过表达iCasp9自杀基因的CD19靶向嵌合抗原受体修饰T（CD19CAR-T）细胞毒性功能。方法：构建过表达iCasp9的CD19CAR-T（iCasp9-CD19CAR-T）细胞并和AP1903共孵育，采用流式细胞术检测细胞表型及凋亡的方法，分别在K562和T细胞上验证iCasp9/CID自杀基因系统，在体内（观察荷Raji细胞移植瘤NCG小鼠的生存率）和体外（流式细胞术检测细胞的杀伤功能）检测AP1903给药情况下iCasp9-CD19CAR-T细胞的杀伤功能。结果：和 CD19CAR-T 细胞相比，iCasp9-CD19CAR-T 细胞的增殖能力、表型及体内外杀伤功能均无显著差异（均 P>0.05）。AP1903给药2 h后双表达iCasp9和CD19CAR的K562和T细胞分别有（33.8±0.9）%和（27.95±0.35）%的细胞出现凋亡，AP1903给药 24 h 后双表达 iCasp9 和 CD19CAR 的 K562 和 T 细胞均已经全部死亡。检测 AP1903 给药和未给药两种条件下的 iCasp9-CD19CAR-T细胞体外杀伤效率，前者明显低于后者（P<0.01）；iCasp9-CD19CAR-T细胞治疗荷Raji细胞移植瘤NCG小鼠，其60 d 生存率同样是AP1903给药的明显低于未给药的（P<0.01）。结论：小分子化学诱导药物AP1903能在体内外有效终止iCasp9-CD19CAR-T细胞毒性功能。     

IL-12-CAR-T细胞诱发细胞因子释放综合征小鼠模型的建立及观察

目的：通过构建表达IL-12的小鼠CAR-T细胞,探讨经尾静脉将其输注于小鼠体内建立细胞因子释放综合征（CRS模型的方法。方法：构建基于靶向鼠源CD19的CAR分子,包装逆转录病毒载体并感染小鼠T细胞构建mCD19-CAR-T、mCD19/IL-12-CAR-T细胞。通过构建小鼠体内胰腺癌Panc02-CD19细胞移植瘤模型,检测mCD19/IL-12-CAR-T细胞的抗肿瘤活性,ELISA法检测两种CAR-T细胞IL-12和IFN-γ分泌水平;经小鼠尾静脉输注mCD19/IL-12-CAR-T细胞构建CAR-T细胞CRS小鼠模型,流式细胞术检测小鼠血清中IL-6、MCP-1、IL-1、IL-10、TNF-α、IFN-γ等细胞因子的含量,H-E染色法观察荷瘤小鼠肝、脾、肺和肾的病理组织学变化。结果：经过培养扩增的mCD19/IL-12-CAR-T细胞能有效分泌IL-12,CAR阳性率达（56.9±5.4）%;与非靶细胞Panc02或靶细胞Panc02-CD19共培养时,均能高分泌IFN-γ。成功构建小鼠胰腺癌Panc02-CD19细胞移植瘤模型,经小鼠尾静脉注射1×106个mCD19/...     

靶向FRα嵌合抗原受体T淋巴细胞杀伤结直肠癌细胞的研究

目的 探究叶酸受体α抗原(FRα)在结直肠癌中的表达情况,通过构建靶向FRα抗原的嵌合抗原受体(CAR)T淋巴细胞(FRα-CAR T),评估使用FRα-CAR T治疗结直肠癌的可行性。方法 应用生物信息学数据库(TIMER2.0)分析FRα抗原在结直肠癌组织中的表达情况及其与免疫细胞浸润的关系。使用慢病毒载体将编码靶向FRα抗原的二代CAR结构的基因转导入CD8⁺ T淋巴细胞,制备FRα-CAR T,流式细胞术分析转染效率。体外培养CACO-2和HCT-116细胞,采用流式细胞术分析FRα在肿瘤细胞表面的表达情况,将FRα-CAR T和CD19-CAR T及空载体转导的T细胞(mock T)作为效应细胞,CACO-2和HCT-116做为靶细胞,细胞计数试剂盒(CCK8)检测不同效靶比(1∶1、5∶1、10∶1和20∶1)对靶细胞的杀伤率;采用流式细胞术和ELISA法分别检测CAR T细胞杀伤CACO-2和HCT-116后细胞中干扰素γ(IFN-γ)和白介素-2(IL-2)的分泌情况。结果 生物信息学分析显示FRα抗原在结直肠癌组织中表达水平高于正常组织(P=0....     

嵌合抗原受体修饰的NK-92MI细胞对 HER2 阳性乳腺癌细胞的杀伤

目的:探讨用特异性靶向HER2抗原的嵌合抗原受体(HER2-CAR)修饰的NK-92MI细胞对HER2阳性乳腺癌细胞的杀伤效率.方法:通过PCR获得HER2-CAR片段,运用常规分子克隆技术,将其构建到慢病毒载体上,利用包装的慢病毒颗粒对NK-92MI细胞进行转染;应用流式细胞术检测细胞转染效率以及转染前后NK-92MI的IFN-γ和颗粒酶分泌差异;使用7-AAD和流式细胞术体外检测HER2-CAR-NK92MI细胞对乳腺癌细胞的杀伤效率;构建小鼠乳腺癌原位肿瘤模型进行体内细胞毒性的检测.结果:用HER2-CAR修饰的NK-92MI细胞对HER2阳性乳腺癌肿瘤细胞MCF-7和T47D的杀伤效率明显高于未被基因修饰的NK-92MI细胞[分别为(62.4±1.3)％ vs (22.1±1.2)％和(50.0±1.9)％vs(16.9±0.6)％,P＜0.01];而两者对HER2阴性的乳腺癌细胞MDA-MB-468的杀伤效率没有明显差异[(13.6±1.4)％vs(12.7±0.8)％,P＞0.05].同时,经HER2-CAR修饰的NK-92MI细胞相比未被基因修饰的NK-92MI细胞,IFN-γ的分泌明显升高(P＜0.01).结论:经HER2-CAR修饰的NK-92MI细胞对HER2阳性乳腺癌细胞的杀伤效率明显提高,且具有特异性靶向,此为治疗乳腺癌等恶性肿瘤提供了临床依据.     

靶向c－Met的嵌合抗原受体T细胞制备及其对非小细胞肺癌的杀伤作用

目的制备靶向c-Met蛋白的嵌合抗原受体T细胞(CAR-T), 并检测其对人非小细胞肺癌(NSCLC)H1975细胞的体外杀伤作用。方法将含c-Met抗体scFv片段的CAR序列插入慢病毒质粒中, 用酶切质粒电泳, 检测目的基因正确性。质粒转染工具为HEK293细胞, 收集浓缩慢病毒, 通过慢病毒感染的方式制备第二代c-Met CAR-T, 通过实时荧光定量聚合酶链反应(qRT-PCR)、Western blot验证CAR序列的表达, 采用流式细胞术检测c-Met CAR-T的阳性率、细胞亚型, 流式细胞术验证NSCLC细胞H1975中c-Met蛋白的阳性表达并选择c-Met蛋白阴性表达的卵巢癌细胞A2780作为对照, 采用乳酸脱氢酶(LDH)释放法检测c-Met CAR-T在效靶比为1∶1、1∶5、1∶10、1∶20时对H1975细胞的杀伤作用。酶联免疫吸附试验(ELISA)检测c-Met CAR-T在靶抗原刺激下, 细胞因子白细胞介素2(IL-2)、肿瘤坏死因子α(TNF-α)和IFN-γ的释放情况。结果成功合成c-Met CAR慢病毒重组质粒, 酶切条带位置符合理论值。基因测序结...     

靶向表皮生长因子受体Ⅲ型突变体的第三代嵌合抗原受体的构建与表达

目的：构建第三代靶向表皮生长因子受体Ⅲ型突变体（EGFRvⅢ）的嵌合抗原受体表达载体,为肿瘤过继免疫治疗提供实验基础。方法：运用分子克隆方法将嵌合抗原受体的胞外抗原结合区（EGFRvⅢ单克隆抗体的轻链和重链可变区,EGFRvⅢscFv,726 bp）、铰链区/穿膜区（213 bp）、共刺激分子（CD28和CD137的胞内信号区,123 bp和126 bp）和免疫受体酪氨酸活化基序（CD3ζ链,336 bp）连接成EGFRvⅢscFv-CD28-CD137-CD3ζ（EGFRvⅢ/3CAR）,克隆入真核表达载体pCDH-CMV-MCS-EF1-copGFP的EcoRⅠ和BamHⅠ位点,转染293T细胞48 h后提取蛋白,采用SDS-PAGE和Western blotting检测EGFRvⅢ/3CAR的表达。结果： EGFRvⅢscFv和基因合成的CD28-CD137-CD3ζ表达框通过重叠延伸PCR拼接成EGFRvⅢ/3CAR,限制性内切酶片段分析和DNA测序均验证了重组载体序列完全正确,Western blotting应用抗人-CD3ζ抗体检测到EGFRvⅢ/3CAR在293T细胞中的完整表达（相对分子质量约58 kD）。结论：成功构建嵌合抗原受体EGFRvⅢ/3CAR表达载体,为嵌合抗原受体修饰T细胞靶向治疗肿瘤提供研究基础。     

CD19和CD22双靶点CAR-T细胞对肿瘤细胞的杀伤作用

目的：设计并制备一种分别靶向B细胞表面抗原CD19和CD22的CAR-T细胞,检测其对肿瘤细胞的体内外杀伤效果。方法：将含有人源化 CD19 ScFv的二代CAR分子和带有CD3ε链作为共刺激结构域的CD22 ScFv CAR分子以P2A自剪切肽连接,序列连接于慢病毒载体pLTR-CMV-MCS中,以HEK-293T细胞包装相应的慢病毒载体,感染健康志愿者提供的T细胞制备CAR-19-22-T细胞,同时以相同二代结构分别构建单靶向CAR-T细胞作为参照。构建表达荧光素酶、CD19和/或CD22的前列腺癌3M细胞（靶细胞）。将各种CAR-T细胞与靶细胞共同培养,采用荧光素酶化学发光法和ELISA法检测其对靶细胞的杀伤能力和细胞因子的分泌水平。通过尾静脉注射Raji-Luc细胞构建NOD-SCID免疫缺陷小鼠白血病模型,分别注射各组CAR-T细胞进行治疗并评估其疗效。结果：培养7 d的CAR-19-22-T细胞的CAR-19表达率为13.7%,CAR-22表达率为14.3%。CAR-19-22-T细胞在10∶1效靶比时,对3M-CD19-Luc、3M-CD22-Luc和3M-CD19-CD22-Luc细胞的杀伤率均显著高于T细胞（[ 78.1±14.4）% vs（11.1±4.3）%、（46.7±10.7）% vs（12.4±2.7）%、（90.5±4.3）%vs（14.3±3.7）%,均P<0.01];与3M-CD19-Luc、3M-CD22-Luc、3M-CD19-CD22-Luc靶细胞共培养后,CAR-19-22-T 细胞 IFN-γ、TNF-α 和 IL-2 水平均显著低于 CAR-19-T 和 CAR-22-T 细胞（P<0.05 或P<0.01）。CAR-19-22-T细胞对移植 Raji-Luc细胞模型小鼠治疗效果明显,其生存期显著长于T细胞组（P<0.01）,与CAR-19-T组和CAR-22-T组荷瘤小鼠比较差异均无统计学意义（均P>0.05）。结论：成功设计并制备了一种双靶点CAR-19-22-T细胞,其能够有效杀伤表达CD19和/或CD22抗原的肿瘤细胞,对Raji-Luc细胞的白血病模型小鼠有显著的治疗效果。     

靶向CD33 的CAR修饰的NK92 细胞对CD33+急性髓系白血病细胞的杀伤作用

[摘要] 目的：根据抗CD33-scFv 序列构建CD33-CAR 修饰的NK92 细胞,探讨其对CD33+ 急性髓系白血病（acute myeloidleukemia,AML）细胞的杀伤作用。方法：通过基因合成以及分子克隆技术获得抗CD33-CAR片段,然后将其构建到慢病毒载体上,进行慢病毒包装,将得到的慢病毒转染NK92 细胞,用流式细胞术检测细胞转染效率并通过嘌呤霉素筛选得到稳定表达抗CD33-CAR的细胞系CD33-CAR-NK92,利用钙黄绿素释放法检测该细胞的杀伤作用,ELISA法检测细胞因子IFN-γ 分泌的变化。结果：成功构建pCDH-CD33-CAR 重组慢病毒质粒,慢病毒转导后约18.7%的NK92 细胞表达CD33-CAR（命名为CD33-CARNK92细胞）,嘌呤霉素筛选后表达CD33-CAR的NK92 细胞比例约86.3%。CD33-CAR-NK92 细胞对CD33+AML细胞MOLM-13的杀伤作用明显高于未被基因修饰的NK92 细胞（P<0.01）,而两者对CD33-肿瘤细胞JURKAT 的杀伤作用没有明显差异（P>0.05）。效靶比为2∶1 共培养6 h 后,经CD33-CAR修饰的NK92 细胞相比未被基因修饰的NK92 细胞IFN-γ 的分泌水平明显升高[ （190.97±11.52）vs（88.41±2.75）pg/ml, P<0.01]。结论：CD33-CAR-NK92 细胞能特异性识别CD33 抗原并杀伤CD33+AML细胞,其杀伤作用显著高于未被基因修饰的NK92 细胞,为进一步开展靶向CD33 的CAR-NK92 细胞治疗AML的临床转化奠定了实验基础。     

shRNA靶向抑制CD38的抗CD38 CAR-T细胞构建及其功能的初步鉴定

目的:探讨shRNA靶向抑制CD38的方法能否增强抗CD38 CAR-T细胞的抗癌功能.方法:构建shRNA靶向抑制CD38的抗CD38 CAR-T细胞的CAR分子,利用逆转录病毒载体包装成功后转导人原代T细胞,制备CAR-T细胞.实验分为shRNA1 CD38 CAR-T组、shRNA2 CD38 CAR-T组和对照...     

肿瘤免疫治疗中改善CAR-T细胞耗竭的研究进展

嵌合抗原受体T（chimeric antigen receptor T,CAR-T）细胞是一种通过基因工程表达受体的T细胞,能够识别特定的抗原,是目前最具潜力的靶向肿瘤治疗方法。然而,作为抗癌免疫系统中主要效应细胞之一的CD8+T细胞在肿瘤中发挥作用时,通常处于耗竭状态,而这种功能缺陷的CD8+T细胞是杀伤肿瘤的障碍。肿瘤微环境（tumor microenvironment,TME）中存在许多抑制性因素,例如耗竭性T细胞表面高表达的抑制性受体、免疫抑制细胞群、抑制性因子、转录因素、代谢因素等都对T细胞的分化及耗竭有重要影响。当然,CAR的结构和共刺激域也对CAR-T细胞整体功能发挥着重要作用。本文着重总结近年有关CD8+T细胞耗竭的机制及改善策略的研究进展,为增强CAR-T细胞的抗肿瘤效应提供了潜在思路。     

CD19-CAR-T细胞治疗难治复发急性淋巴细胞白血病的研究进展

难治复发急性淋巴细胞白血病（acute lymphocytic leukemia, ALL）预后差,生存期短,其治疗已成为国际难题。嵌合抗原受体基因修饰T（chimeric antigen receptor gene-modified T,CAR-T）细胞是目前最具应用前景的靶向免疫治疗,靶向CD19的CAR-T细胞（CD19-CAR-T）治疗儿童及成人难治复发性ALL的完全缓解率（complete remission,CR）可达90%以上,疗效远高于化疗。然而,细胞因子释放综合征（cytokine release syndrome,CRS）、严重神经毒性（serious neurotoxicity,SNT）、脱靶效应以及疾病复发等严重限制了CAR-T细胞的进一步临床应用。本文主要阐述CAR-T细胞的制备技术、预处理方案、细胞输注剂量及各种并发症防治策略等最新研究进展。     

MEK抑制剂显著增强EGFR CAR-T细胞对口腔鳞癌的抗肿瘤活性

目的:构建靶向表皮生长因子受体（epidermal growth factor receptor,EGFR）的二代嵌合抗原受体（chimeric antigen receptor,CAR）-T细胞,以探索MEK抑制剂联合EGFR CAR-T细胞是否可以对口腔鳞癌产生显著的抗肿瘤活性。方法:免疫组化法检测口腔鳞癌患者癌和癌旁组织中EGFR的表达;流式细胞术检测口腔鳞癌细胞系中EGFR的表达;慢病毒感染法构建EGFR CAR-T细胞;生物发光法检测EGFR CAR-T细胞联合MEKi对靶细胞的杀伤活性;流式细胞术检测共孵育后效靶细胞的占比情况;活体成像监测小鼠肿瘤的生长;免疫组化法检测小鼠肿瘤组织中CD3的表达;ELISA法检测肿瘤组织中IFN-γ和GrmB的含量。结果:人口腔鳞癌组织较癌旁组织EGFR显著高表达,大部分口腔鳞癌细胞系高表达EGFR。联合MEKi在短时间的共孵育中并不能显著增强EGFR CAR-T细胞对肿瘤细胞系的杀伤活性,但在较长时间的共孵育后,联合MEKi显著增强EGFR CAR-T细胞的增殖（P＜0.01）和对肿瘤细胞的细胞毒性（P＜0.001）。体内实验也表明,联合MEKi较单独使用EGFR CAR-T细胞而言对肿瘤抑制能力更强（P＜0.01）,肿瘤组织中CD3+T细胞的浸润更多（P＜0.001）,肿瘤部位细胞因子IFN-γ（P＜0.001）和GrmB（P＜0.001）的含量也更高。结论:联合MEKi可以在体内外条件下显著增强EGFR CAR-T细胞的抗肿瘤活性,有望成为针对口腔鳞癌的潜在治疗策略。     

优化CAR结构增强CAR-T细胞治疗的安全性和有效性

[摘要] 嵌合抗原受体T（chimeric antigen receptor T,CAR-T）细胞治疗近年来发展迅速,已在某些血液系统的恶性肿瘤治疗中取得了惊人的疗效,但在实体肿瘤的治疗中进展不大。目前在CAR-T细胞治疗中需要解决的问题主要有：（1）增强CAR-T细胞的杀伤活性;（2）解除肿瘤免疫抑制状态;（3）使CAR-T细胞进入实体瘤;（4）增强CAR-T细胞治疗的安全性。通过CAR结构的优化设计,可以克服CAR-T细胞治疗中的一系列缺陷,增强CAR-T细胞的疗效和减缓并发症的发生。本文对近年来在CAR结构设计上的一些优化改进措施及方法进行总结分析,探索提高CAR-T细胞治疗过程中有效性和安全性的策略和措施。     

抗CD19 嵌合受体修饰的NK-92 细胞的构建及其对CD19 阳性非霍奇金淋巴瘤细胞的杀伤作用

目的：构建表达CD19 的二代CAR-NK-92 细胞系,探讨其对CD19 阳性非霍奇金淋巴瘤细胞的特异性杀伤作用。方法：构建表达CD19-CAR基因的载体并包装慢病毒颗粒,感染NK-92 细胞,流式细胞术检测感染率,并进一步分选阳性细胞,Western blotting 检测CD19-CAR 在NK-92 细胞中的表达;以CD19 阴性骨髓瘤细胞U-266、CD19 阳性的非霍奇金淋巴瘤细胞ARH-77 和HS-Sultan 细胞为靶细胞,以CD19CAR-NK-92 为效应细胞,流式细胞术检测细胞杀伤实验中存活肿瘤细胞的绝对数量并计算杀伤率。结果: 成功构建慢病毒载体pLVX-CD19-CAR并包装病毒颗粒,感染NK-92 细胞后CD19CAR-NK-92 细胞纯度高于90%;Western blotting 分析显示CD19-CAR已经成功表达在NK-92 中。CD19CAR-NK-92 对ARH-77[ （70.10±1.86）% vs （1.95±0.63）%,P<0.01]和HS-Sultan[ （74.98±1.60）% vs（0.58±1.49）%,P<0.01]细胞的杀伤率显著高于空载体对照组ZsGreen-NK-92 细胞,对U266 的杀伤率无显著差别（P>0.05）。结论：成功构建了表达CD19CAR的NK-92 细胞系,其对CD19 阳性的非霍奇金淋巴瘤细胞有特异性杀伤作用。     

CAR-T细胞治疗的神经毒性副反应处理新策略

[摘要] 嵌合型抗原受体修饰T (chimeric antigen receptor modified T,CAR-T)细胞疗法是肿瘤免疫治疗的重要手段之一,CAR-T细胞的靶向性、杀伤活性、增殖性和持久性较常规T细胞明显提高,并且经过不断的改进演变,其在血液系统肿瘤治疗中取得了巨大的成效,受到广泛的关注。然而,其治疗过程中出现的神经毒性,也称CAR-T细胞相关脑病综合征(CAR-T cell relevant encephalopathy syndrome,CRES),影响了CAR-T疗法的临床应用。探索CRES的发病机制及其高风险因素、寻找相应的处理策略,对预防和治疗CRES具有重要意义。本文以CD19-CAR-T 细胞治疗为例,就CRES的发病症状、发病机制、高风险因素及应对策略作一综述,为临床治疗提供参考。