甘油对冰冻解冻红细胞质量的影响探讨

目的比较两种方法制备冰冻解冻去甘油红细胞质量差异。方法随机取2~6℃保存6d内的RH阴性去白细胞悬浮红细胞60袋,应用ACP215全自动血细胞处理仪制备甘油化红细胞,-80℃冰箱保存1~24个月,其中30袋去甘油冰冻保存,30袋不去甘油冰冻保存,然后取出于37~40℃水浴快速融化后,选择ACP215全自动血细胞处理仪去甘油程序进行去甘油洗涤处理,检测冰冻解冻去甘油红细胞的质量指标,并与国家标准进行比较。结果两种方法制备的冰冻解冻去甘油红细胞其血红蛋白水平、游离血红蛋白浓度、甘油残余量和细菌培养试验均满足《全血及成分血质量要求(GB18469-2012)》。结论两种方法均可制备符合国家标准的冰冻解冻去甘油红细胞。但从临床抢救角度看,采用冰冻前去甘油的方法,可以为临床抢救争取约30min的时间。     

深低温长期保存方法延缓红细胞衰老的研究

目的 探讨红细胞在深低温(-70±5)℃下保存对延缓红细胞老化的影响.方法 采用ACD-B抗凝全血制备浓缩红细胞,加入冰冻保护剂于(-70土5)℃保存12年.快速解冻后,用Haemontics215型全自动血液处理机洗涤去甘油.洗涤后制备成红细胞悬液,检测红细胞表面CD47、磷脂酰丝氨酸(PS)含量和红细胞表面抗原,并在扫描电镜下观测红细胞形态.结果 各项指标显示,红细胞保存效果良好,深低温保存可延缓红细胞的衰老速率.结论 用含甘油的冰冻保护剂深低温长期保存红细胞是一种安全、有效的方法.     

深低温长期保存红细胞的效果评价

目的 对红细胞在深低温(-70±5)℃下保存12年的效果进行评价.方法 采用ACD-B抗凝全血制备浓缩红细胞,加入冰冻保护剂于(-70±5)℃保存12年.快速解冻后,用Haemonetics215型全自动血液处理机洗涤去甘油.洗涤后制备成红细胞悬液,检测其中的红细胞回收率、残余白细胞、残余血小板、甘油残留含量、游离血红蛋白含量,并进行ATP、2,3-DPG的检测.结果 红细胞在深低温保存12年复苏去甘油后除红细胞回收率(71.40％)略低外,其它各项指标均符合中华人民共和国国家标准.深低温保存12年后的红细胞与新鲜红细胞相比,2,3-DPG含量没有显著性差异,ATP含量下降为新鲜红细胞67.2％.结论 用含甘油的冰冻保护剂深低温长期保存红细胞是一种安全、有效的方法.     

甘油化震荡频率对冰冻解冻去甘油红细胞质量的影响

目的对本站制备冰冻解冻去甘油红细胞的方法进行探索并对其质量进行评价。方法随机抽取本站40 U相似文献   

RhD(-)血液分离设备改进的效果观察

RhD(-)血液常以甘油作为保护剂对红细胞进行低温冰冻保存,临床使用前必须解冻去除甘油,使洗涤后红细胞悬液中甘油残留量含量<10g/L[1],因此解冻后的洗涤过程的操作至关重要。我们在制备解冻红细胞的过程中使用改良设备,取得了满意的效果。1材料与方法1.1材料设备组和改良组各20     

去甘油后向冻存RBC中加入的添加剂的成分的影响

背景 冻存的去甘油后使RBCs、在营养添加剂中重新悬浮,保存3周是可能的。我们检测了添加剂成分对解冻后保存的影响。方法 24单位除白细胞的AS-3 RBC保存于1～6℃6天。然后将其经无菌操作ABO相容混合,等分,通过一无菌连接的0.22mm滤器向其中加入甘油,冰冻保存1个月。接着,在一部自动化的、调整了Valeri操作程序的Haemonetics 215机(Haemonetics,Braintree,MA)上去甘油,再保存于100或200ml AS-3或EAS-61(一试验性的保存RBC 9周的保存液)。在冻存后5周内,每周进行一次RBC ATP含量、形态学及新陈代谢方面的检测。结果 在洗涤末期,RBC的ATP含量为正常的130％,且形     

细胞洗涤机去甘油化技术的应用

以40%甘油作为保护液,红细胞在-80℃低温保存,实现了稀有血型红细胞、自身输血者的红细胞的长期保存使用(使用年限为10年)[1]。笔者采用40%甘油冰冻红细胞,用血细胞处理机洗涤红细胞去甘油化,最后添加MAP液制备成冰冻解冻去甘油红细胞,各项技术指标检测结果较为满意,现报告如下。1材料与方法1.1材料57.1%的甘油、三珠袋、9%的浓氯化钠(北京博得桑特输血器材公司);羟乙基淀粉40氯化钠(江苏常熟制药厂);0.9%的氯化钠(上海市血液中心)。1.2仪器RC.12BP离心机(美国Sorvall公司);Haemon-etics115细胞洗涤系统(美国血液公司);Julabo MP.19循…     

四氢嘧啶对人冰冻红细胞质量影响的初步研究

目的通过在红细胞深低温冰冻的冻存液中添加渗透压调节物-四氢嘧啶(ectoine),检测红细胞冰冻前后的质量,探讨ectoine用于深低温冰冻红细胞的可能性,为ectoine可用于红细胞深低温冰冻的研究提供实验依据。方法取悬浮红细胞样品8袋,每袋分为对照组(复方甘油组、甘油组)和实验组(1.5%ectoine甘油组、3%ectoine甘油组和4.5%ectoine甘油组)共5组。实验组:ectoine起始浓度为1.5%、3%与4.5%(W/V)(加红细胞后终浓度为1.05%、2.10%与3.15%)。将5组(2组对照组与3组实验组)冻存液分别加入红细胞,红细胞冰冻后解冻并洗涤。测定冰冻前(未加冻存液)及解冻洗涤后红细胞数、血红蛋白量、红细胞变形性、渗透脆性,并用电镜扫描,观察红细胞显微形态。结果与2组对照组相比,3%ectoine甘油组红细胞回收率最高(89.26±2.60)%(P0.05);3%ectoine甘油组解冻洗涤的红细胞与冰冻前红细胞,在50~(-1)、100~(-1)、200~(-1)和1 000~(-1)的剪切率值上相比P0.05,差异无统计学意义;1.5%ectoine甘油组解冻洗涤的红细胞,50%溶血率时氯化钠浓度为(4.57±0.08)g/L,3%ectoine甘油组(4.80±0.17)g/L,2组分别与复方甘油组(4.98±0.26)g/L相比P0.05,差异具有统计学意义;电镜扫描显示3组实验组红细胞与复方甘油组红细胞解冻洗涤后,均无棘状和球形红细胞,甘油组可见破膜、皱缩的红细胞。结论3%Ectoine作为渗透压调节物用于冰冻红细胞,可用于高浓度甘油冰冻红细胞时作为渗透压调节物,相对于3%乳酸钠的复方甘油(商品化复方甘油),可提高解冻洗涤的红细胞回收率,改善解冻洗涤的红细胞质量,具有在深低温冰冻红细胞的潜力。     

Haemontics215型血液处理机与手工处理的效果比较200051上海市血液中心

目的观察手工法和全自动机器制备冰冻、解冻红细胞在冰冻、融化、洗涤后的质控指标,比较两种方法对红细胞保存效果的差异。方法各取12例保养液为输血用复方枸橼酸钠注射液(ACD-B)的全血,于采血后6d内离心制成红细胞制剂,使用手工和全自动机器直接滴入红细胞低温保护剂,-80℃冰冻保存数日后取出融化,再分别使用手工和全自动机器进行洗涤。于融化后即刻以及洗涤后即刻分别取样测定红细胞回收率、游离血红蛋白。结果与手工法相比,使用全自动机器保存、洗涤的冰冻红细胞,其红细胞回收率明显升高,游离血红蛋白明显减少。结论使用全自动机器保存、洗涤红细胞的效果好、保存时间长、洗涤时间短,完全可以替代手工方法。     

一种新型国产红细胞洗涤仪洗涤效果的初步探讨

冰冻条件下保存红细胞可达到长期贮存的目的,国家规定冰冻(-80℃)红细胞的有效保存时间为10年.目前冰冻红细胞主要用于稀有血型血液,如RhD(一)血液的保存.由于冰冻红细胞在临床输注前必须经过洗涤去甘油后才能应用,现国内相当一部分血站仍采用手工方法洗涤冰冻红细胞.这种洗涤方法尽管费用低,但过程烦琐、费时、红细胞容易被污染,而使用进口设备自动洗涤则由于费用高,增加了怂患者医疗成本而受到一定的限制.     

深低温保存Rh阴性血液的质量控制

目的　确保深低温保存Rh阴性红细胞解冻后的质量。方法取ACD抗凝 ,4℃保存 6d内Rh阴性红细胞悬液或全血离心除去添加剂或血浆的浓缩红细胞 ,将红细胞经 (4 0 % )浓度甘油处理后 ,置 - 80℃冰冻保存。临床需要时 37℃水浴解冻复苏红细胞 ,依次用 9%NaCl羟乙基淀粉溶液 ,0 .9%NaCl羟乙基淀粉溶液 ,0 .9%NaCl各洗涤 1次。用生理盐水羟乙基淀粉溶液悬浮红细胞。结果 35袋冰冻解冻红细胞去甘油后红细胞回收率为(81 .1 7± 1 8.5 ) % ,游离血红蛋白为 (0 .6 3± 0 .1 6 ) g/L ,甘油残留量平均为 5 .3g/L ,体外溶血试验血红蛋白增加率为2 5 .1 9%。结论冰冻解冻去甘油红细胞各项指标均达到了国家规定的质量标准 ,临床输用效果良好     

关于冰冻红细胞三珠袋改进的建议

Rh（D）阴性血型在我国汉族人群中的比例为3‰～5‰，属于较稀有的血型，常以低温冰冻红细胞保存技术对其红细胞加以保存，多用甘油作为红细胞冰冻保护剂，但临床使用前必须解冻去除甘油，使红细胞内残留甘油含量〈1％才能在输注后获得适当的存活率，因此解冻后的洗涤过程中的操作至关重要。笔者在制备冰冻红细胞的过程中，对影响解冻冰冻红细胞质量的三珠袋做了一些改进，并通过实验对比证明了改进三珠袋的必要性和优点。     

Haemontics215型血液处理机与手工处理的效果比较

目的观察手工法和全自动机器制备冰冻、解冻红细胞在冰冻、融化、洗涤后的质控指标，比较两种方法对红细胞保存效果的差异。方法各取12例保养液为输血用复方枸橼酸钠注射液（ACD—B）的全血，于采血后6d内离心制成红细胞制剂，使用手工和全自动机器直接滴入红细胞低温保护剂，-80℃冰冻保存数日后取出融化，再分别使用手工和全自动机器进行洗涤。于融化后即刻以及洗涤后即刻分别取样测定红细胞回收率、游离血红蛋白。结果与手工法相比，使用全自动机器保存、洗涤的冰冻红细胞，其红细胞回收率明显升高，游离血红蛋白明显减少。结论使用全自动机器保存、洗涤红细胞的效果好、保存时间长、洗涤时间短，完全可以替代手工方法。     

红细胞和40％(重量／体积)甘油于-80℃冻存14年,经Haemonetics ACP215去甘油,再在添加液-1(AS-1)或添加液-3(AS-3)中4℃保存3周的体外质量

背景红细胞和40％(重量／体积)甘油于-80℃(平均温度,范围-65--90℃)冻存14年,再用325ml一次性离心杯, 通过Haemonetics自动细胞处理器(ACP)215去甘油,然后在 AS-1或AS-3 中于4℃保存21天,并分析其体外质量。设计和方法总共106单位CPDA-1(枸橼酸盐磷酸盐右旋糖腺苷)红细胞和40％(重量／体积)甘油置于800mL聚氯乙烯塑料袋中, 装入波纹纸板箱于-80℃冻存14年。经解冻后的单位于325ml     

两种血液冷冻保存方法的效果比较

目的观察慢速冷冻盐液聚集洗涤法和快速冷冻法制备冰冻、解冻红细胞在冰冻、融化、洗涤后的质控指标,比较两种方法保存红细胞的差异。方法各取12例保养液为输血用复方枸橼酸钠注射液(ACD-B)的全血,于采血后6d内离心制成浓缩红细胞,使用ACP215型全自动密闭血液处理机,采用慢速冷冻盐液聚集洗涤法和快速冷冻法保存、洗涤红细胞,于融化后即刻、洗涤后即刻以及洗涤后24h分别取样测定红细胞回收率、游离血红蛋白、体外溶血及甘油含量。结果使用快速冷冻法保存、洗涤的红细胞,其红细胞回收率为(89.28±4.92)%,高于慢速冷冻盐液聚集洗涤法红细胞回收率(81.32±3.52)%;体外溶血超标,其他指标差别无显著性。结论使用快速冷冻法保存、洗涤红细胞的红细胞回收率较高,但水浴温度需要控制,且其制剂目前无法提供,应借鉴其方法对慢速冷冻盐液聚集洗涤法进行技术改进。     

改良法在制备冰冻红细胞技术上的应用研究

目的 改良制备冰冻红细胞的甘油化过程,并对洗涤后的产品进行质量检测及分析评价。方法 随机抽取本站4℃保存7d内红细胞悬液(1U)标本20份,随机分为两组,实验组在甘油化过程中,用等渗于生理盐水的0.25mol/L的甘氨酸溶液,将57%的复方甘油试剂稀释至40%的甘油溶液,将甘油浓度降低,其他过程不变,对照组在甘油化过程中加入57%复方甘油试剂,将两组制备成冰冻红细胞,置于–80℃冰箱内保存,保存1个月后取出解冻去甘油化,比较两组冰冻解冻去甘油红细胞的质量指标,并进行分析评价。结果 两组的游离血红蛋白,甘油残余量等指标均符合《全血及成分血质量要求(GB18469—2012)》,且实验组的游离血红蛋白(0.60±0.05)、甘油残余量(0.56±0.23)、红细胞内的甘油总量(0.82±0.05)、溶血率(0.33±0.10)与对照组相比显著下降,有统计学差异(P <0.05),实验组的三磷酸腺苷A T P (5.34±0.35)、2, 3-D P G(538.40±59.96)与对照组相比显著升高,有统计学差异(P <0.05),实验组的红细胞回收率(86.9±2.18)与对...     

红细胞深低温长期保存效果的探讨

目的对红细胞在深低温(-70±5)℃下保存7年的效果评估。方法采用ACD-B抗凝全血制备浓缩红细胞,加入冷冻保护剂(-70±5)℃保存;快速解冻后,用Haemontics215型全自动血液处理机洗涤去甘油;检测洗涤后的红细胞制剂的红细胞回收率、残余白细胞、血小板、游离血红蛋白、体外溶血情况以及甘油残留含量。结果各项指标均能符合国家规定的质量标准。结论用甘油深低温长期保存红细胞是一种安全、有效的方法。     

冰冻-解冻-去甘油过程红细胞形态变化与损伤相关性的探讨

目的探讨冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞形态变化与其损伤的相关性。方法依据配对设计原理,采用冻存前保留红细胞外多余甘油溶液(方法1)和冻存前离心去除红细胞外多余甘油溶液(方法2)的两种常规方法,制备冰冻解冻去甘油红细胞,对冰冻-解冻-去甘油过程各关键制备节点留取的样本,进行血常规及上清游离血红蛋白(FHb)含量的检测,分析红细胞形态变化及其与损伤的关联。结果 (1)冰冻-解冻-去甘油过程红细胞因甘油化而体积增大,后因去甘油化而复原,方法2较之方法1甘油化红细胞(冻存前)和冰冻解冻去甘油红细胞的平均体积(MCV)增高(P0.01,P0.05);(2)冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞损伤分布依次为:去甘油化过程(63.20±10.99)%、甘油化过程(30.78±10.47)%、冰冻解冻过程(6.02±4.11)%,两种制备方法间差异无统计学意义;(3)红细胞破坏与甘油化过程红细胞体积变化率呈中度负相关;(4)随着贮存时间的延长,冰冻解冻去甘油红细胞上清游离血红蛋白含量逐渐增加,0.9%氯化钠悬浮冰冻解冻去甘油红细胞储存12 h、24 h,MAP悬浮冰冻解冻去甘油红细胞储存21 d、28 d,两种制备方法间差异有统计学意义(P0.05)。结论冰冻-解冻-去甘油过程中红细胞损伤与其变形能力呈负相关,且损伤主要发生在去甘油化过程,冻存前离心去除红细胞外多余甘油溶液导致红细胞膜骨架因剪切力作用而受损,进而对冰冻解冻去甘油红细胞贮存质量产生不利影响。     

ACP215处理机制备冰冻解冻去甘油红细胞与手工制备的对比研究

目的观察ACP215血细胞处理机洗涤制备冰冻解冻去甘油红细胞与手工洗涤制备的效果,并对其检测结果进行初步分析。方法采用48袋Rh（D）阴性全血,先甘油化冰冻保存,后解冻将其随机等分成2组,实验组采用ACP215血细胞处理机洗涤制备冰冻解冻去甘油红细胞,对照组采用手工开放式洗涤法进行制备。按照相关标准分别对实验组和对照组的红细胞回收率、游离血红蛋白含量、甘油含量、残留白细胞、体外溶血试验进行检测分析。结果实验组的红细胞回收率明显高于对照组,差异具有统计学意义（P〈0.05）,实验组的甘油含量、残留白细胞均低于对照组,差异具有统计学意义（P〈0.05）。但是两种方法制备产品中游离血红蛋白含量、体外溶血试验的差异无统计学意义（P〉0.05）。结论用ACP215血细胞处理机洗涤制备冰冻解冻去甘油红细胞操作简单易行,安全可靠,省时、省力,且产品质量均符合国家标准,有实际应用价值,值得推广。     

冰冻解冻去甘油红细胞制备中去白膜预处理的必要性研究

目的了解非去除白膜层和去除白膜层方法制备的冰冻解冻去甘油红细胞中红细胞回收率和白细胞残留量,探寻简单并符合国家标准质控指标的制备方法。方法取33份红细胞悬液,分成2组,A组为非去除白膜层预处理共11份,B组为去除白膜层预处理共22份,-50℃速冻后置入-65℃冰箱保存,10-20d后取出解冻,均采用ACP215自动去甘油制成冰冻解冻去甘油红细胞。检测未处理红细胞悬液、解冻后去甘油前和去甘油红细胞成品中的红细胞回收率及白细胞残留量。结果A组成品红细胞回收率明显高于B组[分别为(84.27±3.21)%和(80.64±4.70)%],白细胞残留量略>B组,但仍在国标允许范围之内(0.75±0.14%)。结论ACP215制备冰冻解冻去甘油红细胞可采用非去除白膜层的预处理方法,制品质量符合国家标准,而且操作自动简便。