青霉素皮试液稳定性测定

目的：测定青霉素皮试液的稳定性，探讨不同温度下放置样品的使用时间．方法：利用微生物平皿法，测定钢管中不同皮试液的抑茵直径．结果：与即刻配制的皮试液比较，在各温度下放置不同时间的皮试液抑茵直径逐渐减小，最终失去抑茵作用．结论：青霉素皮试液配制后可引起分子重排而产生高分子聚合物，效价降低，室温保存时最好在16小时内应用，夏季应在6小时内应用．即使冰箱保存，也不能超过4天．     

用一次性1ml注射器配制皮试液回抽空气的最佳方法

当抽0．1ml药液再抽稀释液至1ml后，为了使药液与稀释液混合均匀，可再回抽一点空气，使之形成气泡，让气泡上下移动，达到药液与稀释液混合均匀的目的。一次性1ml注射器管径小，如果不注意方法会出现气泡在空管里不移动或者移动很慢的现象，影响工作效率。经过临床实践笔者认为最佳的方法如下。     

Folin—lowry法测定康克胶囊可溶性蛋白质含量

目的：建立测定康克胶囊中可溶性蛋白含量的方法。方法：采用Folin-lowry法。结果：蛋白质在25mg/ml-300ug/ml范围内呈良好的线性关系,r≥0．9990,方法灵敏、准确、重复性好,平均回收率96．81％。结论：Folin-lowry法可作为测定康克胶囊可溶性蛋白质含量的方法。     

紫外分光光度法测定头孢哌酮钠皮试液的稳定性

1　仪器与试药　日本日立 556型紫外分光光度仪 ;p H-3 B精密 p H计 (天津产 )。注射用头孢哌酮钠 (中外合资中山市小榄制药有限公司制造 ) ,批量 990 90 1 ,标示量 1 g,含量为 96.8%。 0 .9%氯化钠注射液由宁夏医学院附属医院制剂室提供。2　方法与结果2 .1　皮试液的配制取注射用头孢哌酮钠3 0 mg置 1 0 ml量瓶中 ,用 0 .9%氯化钠注射液稀释至刻度 ,摇匀。再吸取 1 ml置 1 0 ml量瓶中 ,用0 .9%氯化钠注射用水稀释至刻度 ,使成 0 .3 mg/ml,待用。刚配好的头孢哌酮钠皮试液为 p H为 5.47,p H值在最稳定范围 4.5～ 6.5。2 .2　稳定性实验2 …     

鹿茸中水溶性蛋白含量的测定

目的：对鹿茸中水溶性蛋白的含量进行测定。方法：采用Folin-酚试剂法。结果：5批样品中水溶性蛋白的含量范围为14.72%-17.51%，结论：Folin-酚试剂法测定鹿茸中水溶性蛋白的含量结果可靠，简便快捷。     

配制青霉素皮试液准确性的再探

在配制青霉素皮试液时 ,注射器的死腔问题 ,被国内外护理界广泛重视[1] ,从而为保证青霉素皮试计量的准确性奠定了基础。我们通过实践发现 ,现在所用的传统的青霉素皮试液配制方法 ,未考虑到药物稀释后增容量 (粉剂药物稀释后的量比所用溶剂量增加部分的容积 ) ,对皮试液准确性的影响 ,而导致部分患者青霉素皮试假阴性的后果。我们选用华北制药股份有限公司 (华药 )生产的注射用青霉素钠 80万U、160万U做实验 ,报告如下。1　材料选用华药生产的 80万U青霉素钠共 2 0支 ,批号分别为X0 2 0 72 0 6、E0 10 62 17各 10支 ;160万U的青霉素钠共…     

巧配皮试液

常规头孢类药物皮试液的配制较复杂且浓度准确性不易掌握，笔者对其配制方法进行改进，经临床试用，效果满意，现介绍如下：     

临床用药问题解答

1. 青霉素皮试液怎样配制? 答:青霉素皮试液是由青霉素G钠溶于0.9%氯化钠注射液(皮试液浓度为每500 U·mL-1),以无菌操作法制成的.皮试液需新鲜配制,皮内注射0.1 mL,阳性反应者禁用[1].配制皮试液的溶媒只能用等渗的氯化钠,而不用注射用水和葡萄糖注射液,因为注射用水为低渗液,渗透压低于组织液,注射后水分迅速进入细胞使其膨胀,引起局部疼痛,疼痛刺激皮肤,使局部充血、红肿,而出现假阳性.     

两种破伤风皮试液配制方法的效果评价

目的 探讨破伤风皮试液的配制方法对皮试阳性率的影响.方法 将258例外伤患者随机分成对照组120例和实验组138例.对照组采取先抽取破伤风原液(0.75 ml)加生理盐水至1ml,再推至安瓶内0.9 ml,余0.1 ml加生理盐水至1ml的皮试液.实验组先抽取生理盐水0.3 ml(含死腔0.05 ml,实际为0.25 ml)注入破伤风原液(0.75ml)中,再抽取0.1 ml加生理盐水配成1ml的皮试液,比较2组的阳性率.结果 实验组的阳性率明显低于对照组.结论 改良皮试液配制法,有效降低了假阳性率发生,减少患者脱敏注射痛苦,提高了护理工作效率,提升了患者满意度,值得临床推广应用.