以色列的水和废水中病毒与指示性细菌的关系

水的卫生质量一般是根据已被采用70多年的指示性细菌来判定的。虽然细菌对于确定水的细菌学的安全性是有用的指示生物,但是它们不能精确地反映水中病毒含量概况,因为从符合细菌学标准的饮用水、海水和鱼贝等曾分离出病毒。本研究对以色列的水源进行了广泛的监测,以提供关于肠道病毒在水中的分布与确定细菌性指示生物如何反映病毒存在的资料。     

检测水中病毒方法的评价——浓缩系统

过滤吸附-洗脱法是使用滤器浓缩水中低浓度病毒的最普通的方法,这种方法可检测大体积的水。但是,得到洗脱液的体积仍比较大,需要进行第二次浓缩。为此,本文评价了用来检测接种于自来水和河水中2型脊髓灰质炎病毒的两种玻璃纤维滤器和一种纤维素滤器以及用作第二次浓缩的有机絮凝技术,目的在     

用滑石-硅藻土层浓缩大体积饮用水中的肠道病毒

本文叙述了用滑石-硅藻土(Celite 503)层浓缩实验性污染饮用水样品中的肠道病毒。作者用含有以3∶1混合的滑石和硅藻土的多层滤器吸附病毒,即在一种普通的金属滤器上加有4个过滤层,其顺序为:上面是一张AP 25圆盘状预滤膜,下面是两张夹有滑石-硅藻土层的 Whatman 氏114号滤纸。用1升样品做实验时,将滑石-硅藻土层(300mg 滑石和100mg 硅藻土)置于直径47mm 的滤器中;用10～1,000升样品时,则将滑石-硅藻土层(1.2g 滑石和0.4g 硅藻土)置于直径     

雄性猕猴血清睾酮水平的季节性变化

从60年代中期国外开始对雌性猕猴月经周期内血循环中性激素变化进行研究,积累了许多资料。国内也有人做了类似的研究工作,但有关雄性猕猴血中睾酮含量季节性变化的研究尚未找见报道,本文报道这方面的测定结果。材料与方法实验动物:选性成熟、体重3—6kg的健康雄性猕猴5只,分别单独饲养于大小为0.8m×0.7m×0.7m的笼内,每天喂食2次,并辅以蔬菜、水果,饮水充足。繁殖期室温为17±3℃,非繁殖期室温为24±2℃,自然光照。     

加氯一级处理后的污水对地面水的病毒污染

虽然目前已认识到污水一级处理(沉降),然后加氯消毒,在灭活肠道病毒方面效力很低,但是,许多处理污水的单位仍继续用这种方法处理废水。作者进行该项观察的目的在于评定接收市中心区加氯一级处理出水的一条河流的病毒污染。作者选择了 Green Creek 和 BilberryCreek 两个污水处理厂,从这两个污水处理厂每天向渥太华河排入的污水量分别为3.67×10~8升和3.0×10~6升。作者每周定期采集3种类     

从未处理的和消化的污泥中分离病毒的方法

本文目的是用污泥直接接种法与另外三种不同的检测法(牛肉浸液洗脱法,酸沉淀后牛肉浸液洗脱法,明矾沉淀后Tris缓冲液洗脱法)检测,消化的和未经处理的污泥的病毒含量,以资比较。污泥样品采自厌氧消化的三个不同的处理厂,及以污泥作肥料的现场。采样量为1升,于4℃过夜,次日进行检测。病毒检测是采用Hela细胞培养,每个样品接种四支细胞管,阴性培养物进行盲目传代两次。原接种物如为阳性,则用Hank′s液进行连续10倍稀释,每个稀释度接种三支细胞     

昆明市江河水中脊髓灰质炎病毒的监测

于１９９４年～１９９５年间，我们采用滑石粉──硅藻土夹心层法监测了昆明市盘龙江、大观河水中的肠道病毒，经脊灰病毒定型以及Ｔ特征试验和抗脊灰病毒单克隆抗体中和分析，鉴定为脊灰Ⅲ型和Ⅰ型疫苗病毒。本文结果可供我国消灭脊灰作参考。     

饮用水中猴轮状病毒SA-11的浓缩——滑石-硅藻土层过滤和脱水法

目前还没有从水中浓缩和检测人轮状病毒的有效方法。这主要是因为在试管中培养人轮状病毒尚有困难。猴轮状病毒与人轮状病毒极为相似,而且在细胞培养物中很容易生长和定量测定。为此,作者采用猴轮状病毒SA-11作为人轮状病毒的模型进行研究。本研究使用猴轮状病毒SA-11,水样为城市饮用水。先将水样脱氯,然后调pH到6.0,并加入Ear1e氏平衡盐溶液使最终浓度为1∶100。以未经病毒污染的水样作为对照,将污染病毒的水样通过适当直径的滑石-硅藻土层过滤,收集滤出液。在MA-104细胞系上作蚀斑试验,以确定滑石-硅藻土层吸附病毒的效     

污水中轮状病毒的检测

轮状病毒是婴幼儿和儿童病毒性腹泻的主要病因。越来越多的证据表明,轮状病毒能通过污水污染的水源传播。因为人轮状病毒在细胞培养系统中还不能有效地繁殖,因此,尚未见到从污水和污水污染的水体中浓缩和检测人     

检测污泥中肠道病毒的尿素-赖氨酸方法

本文叙述尿素-赖氨酸方法实验性回收和检测污泥中的肠道病毒。取200～1,000 ml污泥(加入或不加入病毒),离心(3,500×g)5分钟,分离上清液和污泥,然后分别处理。(1)上清液中加入最终浓度为0.003 M的氯化铝,用1 M碳酸钠调到pH 7,混匀5分钟,形成的絮凝物离心(4,000×g,5分钟)。弃去上清液,按每克絮凝物(湿重)与5ml 0.1M EDTA3%牛肉浸液(pH9)混合,离心(15,000×g,10分钟)去除小量不溶解的絮凝物。将上清液在4℃下对磷酸盐缓冲液(pH 7.2)透析过夜,