产科多器官功能障碍综合征临床分析

目的探讨产科多器功能障碍综合征（MODS）的诱因、临床诊断及处理。方法对16例MODS的临床资料进行回顾性分析。结果导致MODS的主要因素为妊娠期高血压疾病及产后出血,器官功能障碍以肾功能衰竭为最多见。结论及时处理MODS的诱发因素,积极治疗妊娠期高血压疾病及产后出血,早期诊断及治疗肾功能衰竭及凝血功能障碍,是减少产科MODS患者死亡的关键。     

CYP17A1基因新突变致17α-羟化酶/17,20-裂解酶部分性缺陷症

目的研究1例17α-羟化酶/17,20-裂解酶部分性联合缺陷症患者CYP17A1基因突变特点,并结合患者的临床表现与基因突变类型初步探讨P450C17酶蛋白的结构与功能的关系。方法收集1例17α-羟化酶/17,20-裂解酶部分性联合缺陷症患者的临床资料及其亲属血标本,提取基因组DNA,设计7对引物扩增CYP17A1基因的8个外显子及外显子与内含子的连接区域,琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR产物,产物胶回收后直接做为DNA双链模板测序。DNA双链模板不一致的PCR产物经克隆后测序。测序结果在核苷酸序列数据库进行比较分析。结果患者CYP17A1基因突变检测结果为5994-5995delAT/7541C>T复合杂合子。这两种突变均未见报道。推测5994-5995delAT导致I259H,274X,突变形成的截短蛋白质缺少血红素结合区域,因此是没有功能的;而通过人类P450C17酶计算机模型分析显示7541C>T导致的A398V远离酶的活性中心,推测突变可能使酶的活性减弱,而不是完全地丧失。患者临床表现为有自发不规则月经及轻度高血压、低血钾,结合激素测定结果提示肾上腺和性腺保留部分功能。因而患者的基因型与其临床表型是一致的。结论应进行突变P450C17酶的功能学研究来进一步明确结构改变对功能的影响。     

47例骨髓穿刺干抽的临床和病理分析

分析４７例骨髓穿刺干抽的临床和病理改变，干抽占同期１３１９例骨穿的３．６％。根据骨髓细胞的密度和间质纤维增殖的程度，把干抽的原因分为４类：高细胞伴间质细胞增多者１９例（４２．２％）；间质细胞增多者１４例（３１．１％）；高细胞者８例（１７．８％）及低细胞者４例（８．９％）。主要疾病为：急性淋巴细胞白血病（２５．５％），急性非淋巴细胞白血病（１７．０％），慢性白血病（１４．９％），骨髓转移瘤（１０．６     

白三烯C_4对大鼠胃粘膜微循环的影响及其在急性胃粘膜损伤中的作用

探讨了静注白三烯C_4(0.1ng·100g~(-1))对胃粘膜微循环的影响及其在急性胃粘膜损伤中的作用。实验由Wistar系雄性大鼠,实验前禁食24hr,饮水不限。发现:1.胃粘膜表层毛细血管口径迅速变细,部分消失,集合细静脉口径亦变细;10分钟时集合细静脉明显淤血和出血。2.氢气清除法证明,胃粘膜血流量明显减少,注后第15分钟时由注前1.230±0.093(M±SE)降至0.521±0.079ml·min~(-1)·100g~(-1)(P<0.01)。3.反射光谱法证明,胃粘膜局部表层微循环血液量(△Er)和Hb氧饱和度(F),均有不同程度下降。4.静注白三烯C_4(0.1ng·100g~(-1))及盐酸灌胃(0.2N1ml)均未见明显胃粘膜损伤,两者并用则损伤明显加重。结果表明,外源性白三烯C_4可引起严重胃粘膜微循环障碍,是诱发溃疡形成的重要因素之一。     

心室晚电位的时间－频率表示法的进一步改进

在心室晚电位的研究中，我们引入了信号的时间一频率表示法，并根据晚电位的具体特性用Ｗｉｇｎｅｒ分布法（维格纳分布）把信号表示为在时间及频率空间中的能量分布。由于Ｗｉｇｎｅｒ分布的优异性质使我们有可能更准确表示出心室晚电位的存在。但当输入信号是两个信号的线性叠加时，Ｗｉｇｎｅｒ分布的结果会出现一个交叉项，相当于引入干扰。针对此不足，作者介绍改进方案，消除部分交叉项，收到较好的效果，并给出一些仿真及应用实例。     

Annexin A2的结构和功能及其与疾病的关系

Annexins是一类钙依赖性膜磷脂结合蛋白。Annexin A2是Annexins家族中的一个重要成员,存在于细胞膜、胞质和胞外。Annexin A2蛋白在细胞膜构架的形成、膜聚合、内吞和胞吐中均扮演重要角色。Annexin A2还参与某些病理过程,与心血管疾病、血液病、肿瘤等多种疾病相关。文章简要综述了Annexin A2分子的结构、生化特征、生物学功能及其与疾病的关系。     

Two dinucleotide repeat polymorphisms at the D8S1442 and D8S1443 loci

Two polymorphic dinucleotide (CA) repeat clones were isolated from cosmids, cCI8-1121 and cCI8-1199, mapped to chromosome 8p11.2-p12.