海藻糖对大鼠肾脏冻融法脱细胞效果的影响

目的应用海藻糖溶液辅助冻融法脱细胞获得脱细胞支架,优化大鼠肾脏冻融脱细胞工艺。方法首先采用不同浓度的海藻糖溶液对大鼠肾脏进行预处理,放入-20℃环境下进行冷冻,12 h后在37℃的温水中进行水浴复温;然后采用Triton X-100以04 mL最后通过血管网络CT三维重构、染色切片、蛋白质定量检测以及力学性能检测等手段评估所得大鼠脱细胞肾脏支架,同时与新鲜组做对比。结果未添加海藻糖实验组血管网络损伤较大,洗脱效果一般,无法制取有效的脱细胞支架。添加不同浓度海藻糖实验组的血管网络也均有一定的损伤。但5%海藻糖组保留最为完整,能够为脱细胞支架提供良好的血管网络,细胞外基质保留完整且洗脱细胞效果良好。结论在一定浓度下海藻糖能够更好地辅助冻融法脱细胞获得更优大鼠肾脏脱细胞支架,这为下一步研究冻融脱细胞获取脱细胞肾脏支架提供了重要的实验依据。     

牛心包脱细胞支架的制备研究

组织工程支架材料是构建组织工程器官或组织的重要基础,天然脱细胞基质由于具有其优良特性而成为理想的支架材料。本研究采用胰酶去污剂法、冻融去污剂24 h法、冻融去污剂48 h法、冻融核酸酶法和去污剂核酸酶法等5种方法对牛心包组织进行脱细胞处理。通过HE染色、扫描电镜观察、含水量检测、力学检测、DNA含量检测和细胞毒性试验,判断不同脱细胞方法的脱细胞效果及其对牛心包基质的影响,从而筛选出对牛心包进行脱细胞的最佳方法。结果显示冻融后去污剂24 h法可以完全脱除牛心包的细胞成分,同时细胞外基质和力学特性保持完好,细胞毒性低,且经济实惠,是制备牛心包脱细胞支架的较好方法。     

海藻糖对生物人工肝用人永生化肝细胞系C3A细胞低温的保存

背景：随着生物人工肝在临床上的应用,需要有一种方便、有效、实用的保护生物反应器装载细胞活力及功能的方法,设计有自主知识产权的生物人工肝用肝细胞的低温保护液迫在眉梢。 目的：验证海藻糖作为低温保护剂在4 ℃低温保存肝细胞的作用。 方法：采用C3A人永生化肝细胞系在不同低温保存液(DMEM培养液,乳酸钠林格氏液,加有不同浓度海藻糖的乳酸钠林格氏液,UW液)4 ℃保存24,48,72 h。复苏后行细胞活力、细胞损伤指标、氧自由基代谢相关指标等检测,并通过荧光双染法观察细胞凋亡情况。 结果与结论：不同低温保存液保存不同时间C3A细胞的活力、细胞损伤及细胞凋亡表现均有所不同,其中同时间点不同浓度海藻糖组均优于单用乳酸钠林格氏液组,但不如UW液组(P < 0.01)。而保存24 h的不同浓度海藻糖组及UW液组与乳酸钠林格氏液组相比差异无显著性意义(P > 0.05),提示海藻糖能有效减轻低温对肝细胞凋亡及缺血再灌注损伤的程度,可成为低温保存液中有效及重要的保护剂组分。     

肝细胞低温保存的实验研究

在传统的冻存剂配方的基础上,通过降低DMSO的浓度并且添加不同浓度的葡萄糖、蔗糖或海藻糖,探索一种改善人肝细胞冻存效果的新冻存保护剂配方.在传统的冻存保护剂配方中,将DMSO的浓度降低至2% v/v或5%v/v,加人葡萄糖、蔗糖或海藻糖;两周后将肝细胞快速复温,进行存活率、24 h贴壁率和形态学的检测,并与10%DMSO对照,其中5%DMSO+0.3 mol/mL海藻糖组效果最好,复温后肝细胞的存活率、24 h贴壁率均优于其它冻存液组.结果表明,葡萄糖、蔗糖、海藻糖均对人肝的低温保存有一定的保护作用,5% DMSO+0.3 mol/mL海藻糖组是其中最好的浓度配方;海藻糖与DMSO联合使用降低了冻存保护剂DMSO的浓度,表明两者有协同作用.     

灌注法制备全肾脏脱细胞基质支架的体内生物相容性

背景：应用灌注法制备的大鼠全肾脏脱细胞基质支架具有良好的体外细胞相容性,但其体内生物相容性尚不明确。 目的：应用灌注法制备大鼠全肾脏脱细胞基质支架,检测其体内生物相容性。 方法：应用灌注法制备Wistar大鼠全肾脏脱细胞基质支架,进行以下实验：①急性毒性实验：在小鼠腹腔分别注射全肾脏脱细胞基质支架浸提液、生理盐水及苯酚。②溶血实验：将抗凝新西兰兔血分别与全肾脏脱细胞基质支架浸提液、生理盐水及蒸馏水混合。③热源实验：向新西兰兔耳缘静脉注射全肾脏脱细胞基质支架浸提液。④内皮刺激实验：在新西兰兔皮下注射全肾脏脱细胞基质支架浸提液,观察有无皮肤刺激反应。⑤皮下植入实验：将全肾脏脱细胞基质支架埋入新西兰兔背部皮下。 结果与结论：全灌注法制备的Wistar大鼠全肾脏脱细胞基质支架无细胞残留,未引起全身毒性反应、急性溶血反应、热源反应及皮肤刺激反应,植入兔体内具有良好的组织相容性。说明大鼠全肾脏脱细胞基质材料在动物体内具有很好的生物相容性。中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料;骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性;组织工程全文链接：     

大鼠胰腺去细胞天然支架生物相容性的鉴定

目的通过离体灌注化学去垢剂的方法制备大鼠胰腺去细胞天然生物支架,并对支架的完整性、生物相容性进行检验。方法健康成年SD大鼠30只,分别经胆管与血管两条途径灌注十二烷基硫酸钠和曲亚通X-100等药品洗脱,获取胰腺去细胞生物支架。通过HE染色、扫描电子显微镜和透射电子显微镜等观察细胞残留于去细胞支架的生物学特性,分光光度计法鉴定残留去垢剂量,酶联免疫吸附剂测定法测定残留支架蛋白含量及生长因子,并用腹壁与皮下包埋实验检验其炎症反应,MTT法测定支架细胞毒性,内皮细胞共培养测定支架生物相容性。结果 HE染色、扫描电子显微镜和透射电子显微镜观察均表明去细胞支架无细胞残留,细胞外支架连续性完好,脉管支架保存完整;药物残留小于规定标准;细胞外支架生长因子及支架蛋白存留量等指标上血管组均优于胆管组;腹壁与皮下包埋实验显示,去细胞支架炎性反应较对照组明显减轻;MTT法显示无细胞毒性;内皮细胞共培养有黏附趋势。结论使用两种灌注法制备胰腺去细胞生物支架,均可将细胞去除彻底,支架生物相容性好。但就血管组细胞外支架保留完整性,生长因子保留更多,则血管灌注途径优于胆管灌注途径。     

低渗冻融联合生物酶法制备组织工程化静脉瓣脱细胞支架

目的:采用低渗冻融联合生物酶法制备组织工程化静脉瓣脱细胞支架,并与先前方法制备的静脉瓣脱细胞支架比较,以期获得一种性能较好的带瓣静脉脱细胞支架材料.方法:手术获得Beagle犬带瓣静脉分为4组,对照组、脱氧胆酸钠组、Triton组和冻融+生物酶组.处理后对各组标本行H-E染色,透射电镜观察,DAPI荧光染色,细胞相容性测试等观察.结果:3种脱细胞方法均能彻底去除细胞,DAPI荧光检测显示各组支架材料均无DNA成分残留;H-E染色及透射电镜显示,冻融+生物酶组胶原纤维排列整齐,未见明显的胶原纤维结构改变,其他2组可见胶原纤维断裂及结构紊乱现象;与其他2组脱细胞支架材料相比,冻融+生物酶组的组织细胞相容性好,可见内皮祖细胞在支架材料上生长良好.结论:结合渗透压改变的反复冻融加生物酶法,既可以较彻底除去带瓣膜静脉细胞成分,又保留了较完整的细胞外基质结构,具有良好的组织和细胞相容性,是较理想的带瓣膜静脉脱细胞支架制备方法.     

大鼠心脏硫酸腺嘌呤预处理心肌酶活性变化

目的实验观察经典缺血处理及硫酸腺嘌呤处理大鼠心肌细胞色素氧化酶和过氧化氢酶的活性变化.方法采用SD雄性大鼠24只,分4组假手术组、缺血再灌注组、经典缺血预处理组、硫酸腺嘌呤预处理组.术后速取左心室前壁肌行冰冻切片,以DAB法测定细胞色素氧化酶和过氧化氢酶的活性.依Ridit法行显著性检验.结果缺血再灌注组大鼠心肌过氧化氢酶和细胞色素氧化酶损伤性反应明显,经典缺血预处理组和硫酸腺嘌呤预处理组细胞色素氧化酶、过氧化氢酶损伤性反应较之明显减轻(P＜0.05).结论经典缺血预处理和硫酸腺嘌呤预处理对缺血再灌注大鼠心肌损伤有明显保护作用.     

在体制备大鼠全肾去细胞支架的程序性分析

目的通过在体灌注Triton X-100、SDS溶液法制备大鼠全肾去细胞生物支架,并对支架制备过程中的关键步骤进行程序性检测、分析,为制备科学合理的实验用大鼠全肾去细胞生物支架提供基础。方法 SD大鼠40只,随机分为4组,每组10只。肝素化后直接切取肾脏作为对照组(control组);肝素PBS灌注组(H组);肝素PBS、Triton X-100灌注组(HT组);肝素PBS、Triton X-100、十二烷基硫酸钠(SDS)溶液灌注组(HTS组)。HE、Masson、PAS染色及透射电镜观察各组肾组织病理及超微结构改变,免疫荧光结合4,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)观察各组胶原蛋白Ⅳ(collagenⅣ)、层黏连蛋白(LN)、纤维连接蛋白(FN)、硫酸乙酰肝素蛋白多糖2(HSPG2)、弹性蛋白(elastin)及细胞核的表达情况,总DNA测定各组DNA残留浓度。结果 Triton X-100、SDS灌注6h左右制备大鼠肾脏去细胞生物支架。在灌注过程中,肾内细胞和细胞碎片逐渐被清洗,最终变成半透明状。HE、Masson、PAS染色及透射电镜显示连续分布、形态排列类似肾小球、肾小管轮廓结构的网状结构,基膜连续完整。免疫荧光结合DAPI染色结果表明,去细胞过程中细胞外基质中的重要蛋白collagen IV、LN、FN、HSPG2、elastin都较好的得到了保存,细胞核在灌注过程中逐渐减少,直至完全消失;最终残留组织的DNA为4.90μg/g。结论通过合适浓度和灌注比例的Triton X-100、SDS制备大鼠肾脏去细胞生物支架,并对其进行程序性分析,发现能有效清除大鼠肾内所有细胞成分,较完整的保留网络状肾及肾血管细胞外基质结构和成分,是一种简单易行且较为理想的制备实验用全肾生物支架的方法。     

大鼠单叶肝去细胞生物支架的制备与鉴定

目的通过灌注法制备大鼠单叶肝去细胞生物支架,并对其进行鉴定。方法健康成年SD大鼠20只,随机分为去细胞组和正常对照组,每组10只。去细胞组经门静脉灌胃针插管,恒温37℃依次灌注肝素化PBS溶液,1%Triton X-100(p H 7.5~8.0)及PBS溶液。HE、Masson染色及扫描电子显微镜观察组织学及超微结构改变;免疫荧光结合4’,6-二脒基-2-苯基吲哚(DAPI)观察2组胶原蛋白Ⅳ和Ⅰ、层黏连蛋白和纤维连接蛋白观察细胞外基质的主要成分;DNA定性和定量分析组织中残留DNA浓度和片段长度;聚甲基丙烯酸甲酯铸型观察肝脏内血管分布情况。结果 Triton X-100灌注4h左右即可制备单叶肝脏去细胞生物支架。在灌注过程中,肝内细胞和细胞碎片逐渐被清洗,最终变成半透明状。HE、Masson、免疫荧光染色及扫描电子显微镜显示,去细胞组肝生物支架较完整地保留了细胞外支架的成分,未见明显细胞及细胞核成分残留;去细胞组支架DNA残留量较正常对照组下降了97.32%,琼脂糖凝胶电泳未见明显的DNA条带。血管铸型标本显示,去细胞组血管分布与正常对照组相仿,其分支完整、清晰。结论运用Triton X-100灌注法所制备的大鼠单叶肝生物支架去细胞彻底,较完整地保留细胞外基质和血管网络结构,是一种简单易行且较为理想的制备实验用单叶肝生物支架的方法。     

猪兔鼠肾生物支架制备及体外细胞共培养探究

目的　 灌注制备家猪、新西兰白兔、SD大鼠肾去细胞生物支架,探究三种肾支架对共培养种子细胞HEK的影响。 方法　取健康成年家猪10头、新西兰白兔28只、SD大鼠28只,分别将取出的肾脏随机均等分为正常组和支架组,支架组由肾动脉依次灌入肝素、1% Triton X-100和1% SDS溶液完成去细胞化。两组肾分别作组织形态学鉴定并检测机械力学性质。去细胞支架作组织爬片与人胚肾上皮细胞共培养,观察细胞在支架爬片上的生长状况,免疫荧光检测人胚肾上皮细胞PCNA及DAPI表达量作灰度分析。 结果　家猪、新西兰白兔、SD大鼠肾脏经灌注去细胞后HE核染色阴性, Masson染色显示胶原蛋白阳性,Collagen I和Collagen IV荧光染色阳性,电镜扫描可见去细胞支架内蜂窝状孔洞结构,并可见典型的肾小球龛样结构;支架组弹性模量与正常组肾弹性模量差异无显著性,支架组PCNA/DAPI值均高于空白对照组,而三种支架组之间PCNA/DAPI值无显著性差异。 结论　本研究灌注去细胞方法可去除家猪、新西兰白兔、SD大鼠肾内的细胞及细胞核,保留细胞外基质,维持细胞外基质的三维空间结构和机械力学强度,是一种可靠有效的制备三者肾去细胞生物支架方法,灌注制备的去细胞支架均可提高异种共培养人胚肾上皮细胞HEK的增殖活性,且这种提高作用在家猪、新西兰白兔和SD大鼠之间并无物种差异性。     

快速冷冻与慢速冷冻条件下复合组织血管内皮的生物活性

背景：恢复良好血供对于复合组织保存及再植至关重要,但不同冷冻方法对血管活性影响不同。 目的：比较快速冷冻与慢速冷冻方法对复合组织血管内皮活性的影响。 方法：新西兰大白兔后肢分别进行快速冷冻与慢速冷冻,快速冷冻的兔后肢直接放入液氮中,慢速冷冻组经4 ℃,-20 ℃,-80 ℃冷冻后再投入到液氮中,各组依次保存12 h,3 d,7 d后快速复温,并设对照组。所有新西兰大白兔后肢均经甲醛溶液固定后行苏木精-伊红染色及免疫组织化学染色检测各组血管内皮的病理变化。 结果与结论：快速冷冻组和慢速冷冻组冷冻12 h,3 d,7 d时兔血管组织形态评分均低于对照组(P < 0.05)。快速冷冻组冷冻12 h,3,7 d时血管内皮组织血管内皮生长因子评分低于慢速冷冻组(P < 0.05)。证实,慢速冷冻法能更好的维持复合组织中的血管内皮细胞的生物学活性。关键词：深低温冷冻;复合组织;冷冻方法;内皮细胞活性;组织构建 doi:10.3969/j.issn.1673-8225.2012.20.011     

京尼平交联大鼠肾去细胞生物支架提高支架生物学性能的实验研究

目的　通过京尼平交联大鼠肾去细胞生物支架,提高支架的生物学性能。 方法　取250 g左右的健康SD大鼠80只,分为正常组、未交联支架组、戊二醛交联支架组和京尼平交联支架组。游离大鼠肾、肾动脉,连接蠕动泵,经PBS灌注去血后得到的肾作为正常组。其余大鼠肾依次灌入肝素化PBS溶液、1% TritonX-100、1%十二烷基硫酸钠（SDS）、去离子水,完成大鼠肾去细胞生物支架制备。戊二醛交联支架组继续灌入0.625%戊二醛（GA）1500 mL;京尼平交联支架组浸入0.5%的京尼平溶液于37 ℃恒温箱中行化学交联24 h;未经戊二醛或京尼平交联的肾去细胞支架作为未交联支架组。对4组肾分别作HE、Masson、免疫荧光染色及电子显微镜扫描,观察支架组织形态学及超微结构改变;力学拉伸试验检测机械力学性能。 结果　SD大鼠肾支架经京尼平交联后,HE、Masson染色显示胶原纤维排列更加紧密有序,肾小球处的纤维呈聚集状,Collagen I和 Collagen IV荧光染色增强,电镜扫描可见交联后的去细胞支架内蜂窝状孔洞结构更加立体,并可见典型的肾小球龛样结构轮廓更加清晰;交联组肾弹性模量较支架组明显增强。 结论　京尼平交联大鼠肾支架能提高支架的生物学性能有助于为后期细胞植入和器官再生。     

单核因子在Tamm-Horsfall蛋白所致肾小管间质肾炎纤维化形成中的作用

将Wistar大鼠的腹腔巨噬细胞(Mφ)分别与Tamm-Horsfall蛋白(THP,A组)、去糖基THP(B组)或RPMI1640(C组)在体外共育4小时,而后更换培养液继续孵育24小时。用生物学方法测定发现唯A组Mφ上清液含肿瘤坏死因子和IL-1样活性。将三组Mφ上清液分别注入各自大鼠右肾,6周后A组右肾全部发生了炎症和纤维化,伴有肾小管功能改变,而B、C组肾间质无明显异常。由此表明,THP对单核、Mφ的活化作用及由此而产生的生物活性介质可能在某些肾小管间质疾病纤维化的形成中具有重要意义。     

Comparison of decellularization techniques for preparation of extracellular matrix scaffolds derived from three-dimensional cell culture

Extracellular matrix (ECM) scaffolds derived from cultured cells have drawn increasing attention for use in tissue engineering. We have developed a method to prepare cultured cell-derived ECM scaffolds by combining three-dimensional cell culture, decellularization, and selective template removal. Cell-ECM-template complexes were first formed by culture of cells in a poly(lactic-co-glycolic acid) (PLGA) mesh template to deposit their own ECM. The complexes were subsequently decellularized to remove cellular components. Finally, the PLGA template was selectively removed to obtain the ECM scaffolds. Seven decellularization methods were compared for their decellularization effects during scaffold preparation. They were: freeze-thaw cycling (-80°C, six times) with ammonia water (25 mM); 0.1% Triton? X-100 (TX100) with 1.5M KCl aqueous solution; freeze-thaw cycling alone; ammonia water alone; TX100 extraction; osmotic shock with 1.5M KCl; and freeze-thaw cycling with 3M NaCl. Among these methods, the methods of freeze-thaw cycling with NH(4) OH and TX100 with 1.5M KCl showed the best effect on the removal of cellular components from the complexes, while the other five methods could only partially remove cellular components. The ECM scaffolds prepared by these two methods had similar gross appearances and microstructures. In vivo implantation of the ECM scaffolds prepared by these two methods induced mild host responses. The two decellularization methods were demonstrated to be effective for preparation of cultured cell-derived ECM scaffolds.     

两种白血病细胞抗原负载DC的体外诱导特异性CTL应答的比较

目的: 比较树突状细胞 (DC)与白血病细胞融合及白血病细胞冻融抗原负载DC两种白血病DC疫苗诱导抗原特异性CTL应答的能力。方法: 采用羟乙基淀粉 Ficoll两步法分离外周血单个核细胞(PBMC), 通过贴壁 2h获得黏附的单核细胞, 用GM- CSF加IL- 4诱导培养 5d收获细胞。将细胞分为 4组: A组将K562细胞或原代慢性粒细胞白血病(CML)细胞在 500g/LPEG 100mL/LDMSO诱导下与DC融合; B组加入相应细胞数量的白血病细胞冻融抗原; C组将K562细胞或CML细胞与DC共培养; D组: 单独DC培养组。融合前以红色荧光染料PKH26标记K562细胞, 采用流式细胞仪(FCM)检测PKH26 /FITC 抗HLA ABC抗体双标细胞并评估融合率。培养的第 6天, 加入TNF -α诱导DC成熟, 然后分别与自体T细胞共培养, 用MTT比色法检测各组CTL对靶细胞的杀伤活性。结果: GM- CSF加IL -4和TNF- α依次诱导成熟的DC具有经典的DC的形态和表型特征, 在PEG -DMSO的介导下, DC与白血病细胞的融合率为 ( 17. 33 ~29. 94 )%。两种抗原负载方案激活的CTL均对表达K562抗原的细胞具有特异性的细胞毒作用。在效靶比相同时, 融合组诱导CTL的杀伤活性强于冻融抗原致敏DC组。结论: 与冻融抗原致敏的DC相比, DC与白血病细胞融合细胞递呈抗原的效率更高, 体外诱导的CTL特异性杀伤靶     

应用不同物理加强条件的Ⅰ型胶原支架的大白鼠动物模型与组织学分析

BACKGROUND: In previous studies, the dehydrothermal cross-linking method was modified by the authors to improve the degradation property of collagen scaffolds. The cross-linking time was increased from 24 to 48 hours, and the cross-linking temperature increased from 105 to 115 ℃. OBJECTIVE: To verify the anti-degradation ability of collagen scaffolds prepared using the modified dehydrothermal cross-linking method and to obtain the optimal efficacy of the scaffolds on damaged tissue repair and regeneration. METHODS: Highly-purified type I collagen scaffolds with native triple helix structure were prepared and subjected to three different dehydrothermal cross-linking conditions: 105 ℃ for 24 hours, 105 ℃ for 48 hours and 115 ℃ for 24 hours. Material samples, 1 cm×1 cm, were implanted subcutaneously into the rat dorsum. The specimens were harvested at 3 days, 14 days and 42 postoperative days followed by fixation and histological analysis using hematoxylin-eosin staining. RESULTS AND CONCLUSION: No untoward foreign body and immunological reactions were observed in any groups. In the group of 105 ℃ for 48 hours, the scaffold retention and degree of pore openness were better than the other two groups at 14 days after scaffold implantation (P < 0.05). These findings indirectly suggest that the anti-degradation ability of collagen scaffolds can be strengthened under certain dehydrothermal cross-linking conditions: the cross-linking time is increased from 24 to 48 hours.      

短暂性缺氧后海马神经元神经源性分化因子表达增高

目的 观察短暂性缺氧后神经源性分化因子(NeuroD)表达量的变化,探讨其在神经系统再生中的可能作用.方法 体外培养海马神经元,经神经元特异性烯醇化酶(NSE)免疫组织化学方法、尼氏体染色法鉴定.将培养5d的神经元置于三气培养箱(37℃、94%N2、5%CO2、1%O2)内缺氧培养.RT-PCR检测缺氧3h和6h后神经...