革兰阴性杆菌产超广谱β-内酰胺酶头孢菌素酶状况及耐药性研究

目的了解本院目前常见的革兰阴性杆菌菌种分布及产超广谱β-内酰胺酶（ESBLs）和头孢菌素酶（AmpC）情况,分析产酶菌耐药谱特征。方法用法国生物梅里埃公司的VITEK-2细菌鉴定与药敏系统对革兰阴性杆菌进行鉴定,对可疑产ESBLs、AmpC的菌株,用标准纸片扩散法和三维试验法进行两种酶的表型确证,再用纸片扩散法行药物敏感性检测。结果检出单产ESBLs、单产AmpC、同时产ESBLs和AmpC的细菌分别为175株（43.8%）、54株（13.5%）和28株（7.0%）。ESBLs检出率以肺炎克雷伯菌最高,为60.3%;AmpC检出率在阴沟肠杆菌中最高,为46.7%。单产ESBLs菌株对亚胺培南、头孢哌酮/舒巴坦以及哌拉西林/三唑巴坦的敏感性较高,耐药率分别为2.3%、26.3%和33.1%;单产AmpC菌株对亚胺培南和头孢吡肟具有较高的敏感性,耐药率分别为3.7%和29.6%;同时产AmpC和ESBLs的菌株仅对亚胺培南敏感,未发现耐药株。结论革兰阴性杆菌产ES-BLs、AmpC率较高,该类菌对大多数新型广谱β-内酰胺类抗生素耐药,对亚胺培南敏感。     

革兰阴性杆菌中AmpCβ-内酰胺酶的检测及其耐药性分析

目的了解革兰阴性杆菌临床分离株AmpCβ-内酰胺酶的发生率及产酶株的耐药性。方法采用三维试验检测AmpCβ-内酰胺酶;用K-B纸片法进行抗菌药物敏感试验。结果236株革兰阴性杆菌中,三维试验阳性菌株29株;17株(7.2%)单产AmpC酶,8株(3.4%)单产超广谱β-内酰胺酶(ESBLs),2株(0.8%)同时产AmpC酶和ESBLs,2株(0.8%)为非产AmpC酶和ESBLs菌株;共检出产AmpC酶菌株19株,检出率为8.1%;药物敏感试验结果显示,除亚胺培南和头孢吡肟外,产酶株的耐药率明显高于非产酶株。结论本院革兰阴性杆菌AmpC酶的检出率为8.1%;产酶菌呈多重耐药特性,治疗产酶菌感染首选第四代头孢菌素及碳青霉烯类药物。     

革兰阴性杆菌产AmpC酶和超广谱β-内酰胺酶的检测及耐药性分析

目的:了解革兰阴性杆菌产AmpC酶和超广谱β-内酰胺酶(ESBLs)的情况及其耐药特征,为临床合理用药提供参考依据.方法:采用VITEK-32系统鉴定细菌;K-B法测定细菌对抗菌药物的敏感性;标准纸片扩散法检测ESBLs;三维试验法检测AmpC酶.结果:在650株革兰阴性杆菌中,检出单产AmpC酶、单产ESBLs及同时产AmpC酶和ESBLs细菌分别为101株、212株和26株,总检出率分别为15.5%、32.6%、4.0%,其中阴沟肠杆菌AmpC酶检出率最高,为54.5%,肺炎克雷伯菌ESBLs检出率最高,为56.7%.产酶菌株对前三代头孢菌素、磺胺类药物、单环类抗生素氨曲南及含酶抑制剂复合制剂均高度耐药,其耐药率均高于80%,但对亚胺培南和头孢吡肟仍保持高度敏感性,其耐药率分别为0%和20%左右,另外对环丙沙星和阿米卡星亦有一定的敏感性.产酶菌株耐药率明显比非产酶菌株高.结论:革兰阴性杆菌产ESBLs和AmpC酶的状况已十分突出,其多重耐药机制严重影响各类抗菌药物的治疗,给临床抗感染治疗带来很大困难.及时、准确的检测AmpC酶与ESBLs菌株,为临床提供细菌的耐药分析,指导临床合理应用抗生素,延缓耐药的产生,控制耐药株传播等具有十分重要的意义.     

医院内感染病例的革兰阴性杆菌产酶耐药表型研究--附267株检测报告

目的:了解医院内感染革兰阴性杆菌的产酶表型及耐药情况.方法:分别用纸片扩散法及双纸片协同法从267株革兰阴性杆菌中检测超广谱β-内酰胺酶(extended spectrum β-lactamases,ESBLs),头孢西丁初筛试验筛选头孢菌素酶(AmpC酶),再用头孢西丁提取物三维试验确认AmpC酶.抗菌药物敏感试验采用K-B琼脂扩散法.结果及结论:ESBLs的检出率为51.7%(138/267),其中以大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌居多,分别为38株和26株;AmpC酶的检出率为14.6%(39/267);18株同时检出AmpC酶和ESBLs,检出率为6.7%.除亚胺培南-西拉司丁外,大部分的产酶菌株对喹诺酮类、氨基糖苷类和磺胺类等临床常用抗菌药的耐药率均显著高于非产酶株.须针对菌株产酶类型的不同选用相应的抗菌药物.     

济南地区革兰阴性杆菌产AmpC酶和超广谱β内酰胺酶的现状及药敏检测

目的：了解济南地区耐第三代头泡菌素的革兰阴性杆菌中AmpC酶和超广谱β内酰胺酶(ESBLs)的状况，并对18种抗菌药物作药敏试验，比较产酶菌与非产酶菌对18种抗菌药物的耐药率。为临床治疗产酶菌引起的感染提供理论依据。方法：应用头泡西丁三维试验检测AnpC酶。应用美国国家临床实验室标准委员会(NCCLS)推荐的纸片扩散确证法检测ES-BLs。以K—B琼脂扩散法做药敏试验。对AmpC阳性进行质粒接合试验。结果：在受检的250株革兰阴性杆菌中，53株(21．2％)产AmpC酶，98株(39．2％)产ESBLs，6株(2．4％)同时高产AmpC ESBLs酶。53株AmpC酶阳性菌中，6株临床分离菌的耐药质粒接合转移成功。产酶菌对头孢吡肟、亚胺培南和阿米卡星耐药率低。在7种喹诺酮类抗菌药物中，左氧氟沙星及加替沙星的耐药率较其他喹诺酮类低。结论：济南地区革兰阴性杆菌耐药性的产生，是由于细菌产生AnpC酶和ES-BLs引起的，以ESBLs为主。AmpC酶既可以染色体介导也可以质粒介导，以染色体介导为主。治疗产2种β内酰胺酶的细菌引起的感染亚胺培南为首选，头孢吡肟、左氧氟沙星、加替沙星和阿米卡星可作为选用药物之一。     

革兰阴性杆菌高产AmpC酶的检测及耐药性分析

目的：了解革兰阴性杆菌高产AmpC酶检出的情况及其对10种常用抗菌药物的耐药性分析。方法：对我院2001～2004年临床标本分离出的273株革兰阴性杆菌，用粗提酶头孢西丁三维试验检测高产AmpC酶并分析其对10种常用抗菌药物的耐药性。结果：273株革兰阴性杆菌中，高产AmpC酶菌株共74株．检出率为27．1％；除对亚胺培南、头孢吡肟耐药性较低外，它们对其他抗菌药物高度耐药，耐药率大多数高于80％；产AmpC酶菌株耐药性明显高于非产酶菌株。结论：高产AmpC酶的革兰阴性杆菌日益增多．耐药性强，临床治疗应首选碳青霉烯类抗生素和第四代头孢菌素。     

耐头孢西丁革兰阴性杆菌产AmpC酶情况与耐药性研究

目的:了解耐头孢西丁(FOX)革兰阴性杆菌高产AmpC酶发生率及基因型分布和耐药性.方法:对108株无重复耐FOX革兰阴性杆菌,用酶提取物三维试验检测Amo.C酶;MIC法检测产酶株的药物敏感性;PCR扩增AmpC酶基因及其序列测定.结果:高产AmpC酶的发生率为25.9%;AmpC酶基因ACT、CMY-G2、FOX、CIT、CMY-G1、DHA和MOX的检出率为13.9%、12.0%、4.6%、1.9%、0.9%、0.9%和0;产AmpC酶菌株呈多重耐药.对头孢替坦和头孢唑啉全部耐药,对亚胺培南、丁胺卡那霉素和头孢哌酮/舒巴坦的敏感性较好.结论:加强耐FOX革兰阴性杆菌高产AmpC酶的监测,治疗相关茵感染以亚胺培南为首选.     

四联药敏纸片同步检测ESBLs和AmpC β-内酰胺酶

目的建立一种简便、实用的方法,同步检测临床分离菌株的ESBLs和AmpC β-内酰胺酶,为临床选择抗生素提供依据.方法用亚胺培南、阿莫西林/棒酸、头孢他定、头孢噻肟(或头孢曲松、氨曲南)四纸片琼脂扩散法,根据各纸片间抑菌的协同、拮抗作用及耐药谱判断结果.结果200株革兰阴性杆菌中有55株单产ESBLs(27.5%),33株诱导高产AmpC酶(16.5%),19株同时产ESBLs和诱导高产AmpC (9.5%),有20株去阻遏突变高产AmpC酶(10.0%).四纸片同步法分别与双纸片增效法、头孢西丁三维试验比较,检测ESBLs、高产AmpC酶的总符合率分别为94.7%和93.6%.增加头孢曲松和氨曲南两种基质,ESBLs、诱导高产AmpC、ESBLs/诱导高产AmpC的检出率分别提高了16.3%、12.1%、15.8%.结论此方法不需任何特殊设备,能准确、简便、快速检测革兰阴性杆菌的ESBLs或AmpC酶,并能检测出同时携带两种酶的菌株.     

安徽省铜陵地区2010年细菌耐药性监测

目的了解安徽省铜陵地区2010年临床分离菌株耐药状况。方法 2010年1—12月铜陵地区临床分离菌株用纸片法(Kirby-Bauer)作药敏试验。结果此期获得的2 217株细菌中革兰阳性菌498株,占22.5%;革兰阴性菌1 719株,占77.5%;MRSA和MRCNS分别占金葡菌和凝固酶阴性葡萄球菌的34.8%和75.1%;MRSA和MRCNS对庆大霉素、环丙沙星、克林霉素和红霉素等均高度耐药,未见耐万古霉素和替考拉宁葡萄球菌;粪肠球菌对青霉素、氨苄西林、呋喃妥因、磷霉素和氯霉素的耐药率较低;屎肠球菌对磷霉素和氯霉素耐药率较低,未见耐万古霉素和替考拉宁肠球菌。大肠埃希菌和克雷伯菌属中产ESBLs株分别占53.2%和39.9%,产ESBLs株除对亚胺培南和美罗培南均无耐药株外,对其他19种抗菌药物的耐药率均较非产ESBLs株高;不发酵糖革兰阴性杆菌对常用抗菌药物的耐药率较往年上升。结论未发现对糖肽类抗生素耐药的葡萄球菌属菌株;肠杆菌科细菌对亚胺培南、美罗培南、头孢哌酮-舒巴坦、哌拉西林-他唑巴坦和阿米卡星耐药率低;不发酵糖革兰阴性杆菌对常用抗菌药物的耐药率较往年上升,应加强抗菌药物的合理使用和医院感染控制。     

医院感染革兰阴性杆菌产AmpC酶状况及耐药性检测分析

目的 探讨产头孢菌素酶(AmpC酶)革兰阴性杆菌医院内感染现状及对药物敏感性的影响.方法 对临床标本进行分离鉴定,采用K-B法对常规药物进行耐药性检测,采用美国国家临床实验室标准化委员会(NCCLS)推荐的三维法检测AmpC酶.结果 在331株革兰阴性杆菌中检出产AmpC酶109株,产酶率为18.4%,产酶菌株对第3代头孢菌素、头霉素类、环丙沙星及含酶抑制剂复合物药物敏感率下降明显,对亚胺培南、头孢吡肟、丁胺卡那耐药率较低,分别为3.28%(2/61)、44.26%(27/61)、31.1%(19/61),产酶菌株对抗菌药物的耐药率明显高于非产酶菌株.结论 革兰阴性杆菌耐药与产AmpC酶有关,治疗该菌感染应选用亚胺培南、第4代头孢菌素等.     

Five novel plasmid-determined beta-lactamases

Five novel plasmid-determined beta-lactamases named TLE-1, OXA-4, OXA-5, OXA-6, and OXA-7 were detected in ampicillin-resistant isolates of Escherichia coli and carbenicillin-resistant strains of Pseudomonas aeruginosa. TLE-1 resembled TEM-1 in substrate profile and reactions with inhibitors but differed in isoelectric point (5.55) and enzyme banding pattern on flat-bed electrofocusing.OXA-4, OXA-5, OXA-6, and OXA-7 hydrolyzed oxacillin, methicillin, and cloxacillin readily but differed from OXA-1, OXA-2, and OXA-3 in substrate profiles, inhibitor reactions, and isoelectric points (7.5 to 7.8).OXA-4 and OXA-6 were unusual for members of the OXA group in their sensitivity to inhibition by cloxacillin. OXA-5 and OXA-7 had isoelectric points close to that of SHV-1, emphasizing the need in beta-lactamase classification for studies in addition to isoelectric focusing. These five new enzymes bring the number of plasmid-determined beta-lactamases known in gram-negative organisms to more than 20. The evolution of such enzymatic diversity remains to be explored.     

AmpC beta-lactamases producing bacteria

beta-Lactamases are the principal mechanism of bacterial resistance to beta-lactam antibiotics. In recent years, resistance due to production of beta-lactamases including extended-spectrum beta-lactamses, carbapeneases and AmpC beta-lactamses, has risen at alarming rate in clinical isolates of gram-negative bacteria. AmpC beta-lactamses are classified by whether genes locate on chromosome or plasmid. The purpose of this paper is to address the general mechanism involve in AmpC beta-lactamase production and the clinical importance of the enzymes.     

Distribution of beta-lactamases in actinomycetes

The distribution of beta-lactamase activities in a collection of actinomycete strains was surveyed. Six of 127 strains were found to produce beta-lactamase. This low frequency was in contrast to the case with Streptomyces species. The producing strains were not related phylogenetically. MICs of benzylpenicillin did not correlate with beta-lactamase production.