抗人BPI23单克隆抗体的制备和鉴定

目的 采用杂交瘤技术制备抗人BPI23单克隆抗体,并对其应用进行初步分析。方法 免疫小鼠脾细胞与小鼠骨髓瘤细胞按常规方法融合;用间接ELISA法和Western - blot筛选分泌抗体的杂交瘤细胞株;阳性克隆用有限稀释法亚克隆3次获得稳定分泌抗人BPI23单克隆抗体的杂交瘤细胞株;扩增杂交瘤细胞注入小鼠腹腔后制备腹水;纯化腹水中的单抗并对抗体类型进行鉴定;用Western-blot分析抗体的特异性;用间接ELISA法测抗体效价;将分离纯化的正常人外周血中性粒细胞和单个核细胞制成涂片,用抗人BPI23单克隆抗体进行免疫染色。结果 获得3个（1B4、9C12和2H11）稳定分泌抗人BPI23单克隆抗体的杂交瘤细胞株,所分泌的单抗类型分别为κ型IgM、κ型IgG1和κ型IgG1;抗体效价分别为1.28×105、1.28×105和4.1×106,纯化后抗体含量分别为0.208g/L、2.03g/L和3.88g/L;3种纯化抗体均能与本实验制备的人BPI23和市售人BPI55标准品特异性结合,而不能与小鼠BPI25和人LBP结合;在免疫组化实验中,1B4、9C12和2H11单抗均能与人中性粒细胞中的BPI特异性结合。结论 成功制备了人BPI23特异性单克隆抗体,为BPI检测试剂盒的研制奠定了基础。     

一株中和人IL-17免疫活性的单克隆抗体的制备

目的制备抗人IL-17单克隆抗体,并鉴定其中和活性。方法用hIL-17作为免疫和检测抗原,用间接ELISA法筛选分泌抗人IL-17抗体的杂交瘤细胞株,并对抗体进行中和活性鉴定。结果获得1株稳定分泌抗人IL-17单克隆抗体的杂交瘤细胞株,所分泌的单抗类型重链为IgG2b,轻链为κ;该株杂交瘤细胞腹水效价为1∶8.192×105;传30代及液氮中保存6个月,抗体效价稳定;Western Blot检测证明该单抗与人IL-17蛋白特异地结合;单抗亲和常数为8.192×10-9 mol/L;ELISA及Real-time-PCR检测证明该单抗能够有效地阻断人IL-17刺激Hela细胞产生IL-6的作用。结论所制备的抗人IL-17单克隆抗体具有高度的特异性、稳定性及中和活性,为针对IL-17为靶点的抗体药物的开发奠定了基础。     

一次融合同时获得抗独特型和抗抗独特型单克隆抗体的杂交瘤

本文在研制带有HBsAg表位内影象的单克隆抗独特型抗体的过程中,用抗-HBs单克隆抗体(Ab_1)免疫同系鼠,除筛选分泌Ab_2β的杂交瘤细胞外,还同时设计了筛选分泌Ab_3的杂交瘤。结果在一次免疫,一只免疫鼠的脾脏细胞,一次融合实验中,同时获得了分泌Ab_2β及Ab_3抗体的杂交瘤细胞株。本文报告筛选Ab_3的方法及对Ab_3所作的免疫化学鉴定。结果获得一株分泌Ab_3单克隆抗体的杂交瘤细胞株,命名为M4。证明Ab_3具有Ab_1的特异性。这一结果不仅提示独特型网络的确在同一个体内客观存在,而且也为研制单克隆抗独特型抗体杂交瘤提供了一条简单、经济、事半功倍的经验。     

抗狂犬病病毒CVS-11株单克隆抗体的制备及鉴定

目的 制备抗狂犬病毒单克隆抗体,为建立快速准确的狂犬病毒抗原检测方法奠定基础.方法 将狂犬病病毒CVS-11株纯化浓缩后免疫6～8周龄雌性BALB/c小鼠,取其脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞进行融合,经细胞克隆和间接ELISA筛选,获得稳定分泌抗狂犬病毒单克隆抗体的杂交瘤细胞株.小鼠腹腔注射法制备大量单克隆抗体并测定腹水效价,用G蛋白亲和层析柱进行纯化,间接ELISA法和间接荧光法鉴定单克隆抗体的类型、特异性及敏感性.结果 细胞融合率达100%,经克隆筛选获4株稳定分泌抗狂犬病病毒抗体的杂交瘤细胞株,其腹水效价分别为1×104,1×105,1×104和1×105;4株单抗均为IgG类型且特异性好.结论 制备的单抗具有良好特异性和敏感性.     

抗3-硝基酪氨酸单克隆抗体的制备及免疫学特性分析

目的制备抗3-硝基酪氨酸(3-NT)单克隆抗体并鉴定其免疫学特性。方法用化学合成方法将3-NT与OVA用戊二醛偶联合成的人工抗原3硝基酪氨酸-戊二醛-鸡卵白蛋白(3NT-G-OVA)作为免疫原,皮下注射免疫Balb/c小鼠,取免疫小鼠脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞进行细胞融合,用间接ELISA法筛选阳性杂交瘤细胞株,扩大培养并对抗体进行免疫学鉴定与分析。结果获得1株稳定分泌抗3-硝基酪氨酸单克隆抗体的杂交瘤细胞株,所分泌的单抗亚型为Ig G2a;纯化后的抗体效价为1∶(6.14×106);单抗亲和力常数为7.81×107(L·mol-1);Western blot检测证明该单抗与含有3-硝基酪氨酸的蛋白能特异地结合。结论制备了1株具有较高免疫学活性和特异性的抗3-NT单克隆抗体,并可用于Western blot检测病人样本中的蛋白硝基化水平。     

表达膜抗AchR抗体的杂交瘤细胞株的建立

目的 建立表达膜特异性自身抗体的细胞株。方法 用DNA重组技术表达乙酰胆碱受体 亚基，并用其免疫小鼠。应用杂交瘤技术，建立小鼠脾细胞融合的杂交瘤细胞株。通过流式细胞术分析杂交瘤细胞膜抗体和膜免疫球蛋白的表达，SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分析膜抗体和分泌型抗体分子量的差别，用免疫沉淀和Western blot等方法鉴定膜蛋白和分泌蛋白。结果 杂交瘤细胞既可以分泌抗体又可以表达膜抗体。结论 表达膜抗AchR的杂交瘤细胞类似于重症肌无力中表达膜自身抗体的B细胞，可进一步作为靶细胞研究该疾病。     

抗伏马菌素B_1单克隆抗体的制备及鉴定

目的建立抗伏马菌素B1（FB1）的单克隆杂交瘤细胞株,制备抗FB1的单克隆抗体（McAb）。方法采用FB1-KLH偶联物小剂量长周期免疫BALB/c小鼠后,采用细胞融合方法获得分泌抗FB1的杂交瘤细胞株,采用多次亚克隆的方法建立了4株稳定分泌抗FB1抗体的杂交瘤细胞株。腹水诱生法获得大量McAb,采用抗体亚类测定试剂盒鉴定抗体的亚类,SDS-PAGE测定抗体分子量,McAb的特异性和灵敏度用间接竞争抑制ELISA。结果免疫小鼠血清检测结果显示经过5次免疫后血清的效价稳定在1×10-6,经过4次亚克隆后建立4株稳定分泌抗FB1抗体的杂交瘤细胞株,获得腹水,纯化抗体,抗体亚类属于IgG2a类,轻链为κ,轻链和重链的相对分子质量分别是55000和32000,ELISA检测抗体特异性显示可与FB1发生特异性反应,采用此抗体建立间接竞争抑制ELISA方法的线性范围在2～500ng/ml。结论制备了特异性和灵敏度较高的抗FB1单克隆抗体,为建立伏马菌素免疫学检测方法打下良好基础。     

乙型流感病毒单克隆抗体的制备与评价

目的制备抗乙型流感单克隆抗体,为建立特异、灵敏、简便的乙型流感病毒快速检测方法奠定基础。方法应用鸡胚接种法、ELISA方法、免疫扩散法、血凝抑制法筛选能稳定分泌抗乙型流感病毒单抗的杂交瘤细胞,并对分泌的单抗的安全性,有效性、抗体亚型,特异性及灵敏性进行了全面评价。结果获得了3株能稳定分泌抗乙型流感病毒单抗的杂交瘤细胞株,分别命名为3G11、4F9、8G6;制备的抗乙型流感病毒单克隆抗体无鼠源病毒污染;抗体亚型为IgG2a亚型,轻链均为κ链;对乙型流感病毒具有高度特异性,而与甲型流感病毒、呼吸道合胞病毒、副流感病毒、呼吸道腺病毒等无交叉反应。结论制备的乙型流感病毒单克隆抗体具有特异性强、灵敏性高,为临床乙型流感的早期快速诊断及流行病调查奠定了实验基础。     

缺失PRD的人FOXP3单克隆抗体的制备与鉴定

目的:制备抗脯氨酸富含区缺失的人FOXP3(△PRD-hFOXP3)的单克隆抗体(mAb),为进一步研究人FOXP3各片段功能奠定基础。方法:以纯化的△PRD-hFOXP3重组蛋白为抗原免疫BALB/c小鼠,取免疫小鼠的脾细胞和骨髓瘤细胞Sp2/0进行常规融合,经筛选及克隆化建立2株分泌抗△PRD-hFOXP3的mAb杂交瘤细胞株;利用核型分析、间接ELISA及Western blot分别鉴定了杂交瘤的细胞核型、抗体的效价与特异性。结果:筛选到2株可稳定分泌抗△PRD-hFOXP3的mAb的细胞株,分别命名为1A2和3A11;2株抗体均为IgG1,腹水经ELISA方法测定效价均可达1∶105;Western blot显示这2株杂交瘤分泌的mAb均可与△PRD-hFOXP3蛋白特异性地结合。结论:成功获得2株能稳定分泌特异性抗△PRD-hFOXP3的mAb的杂交瘤细胞株,可用于人FOXP3的进一步研究及相关试剂的研发等。     

抗黄疸出血群70091株钧端螺旋体外膜抗原单克隆抗体的研制

本实验采用NSI骨髓瘤细胞与黄疸出血群70091株钩体外膜免疫的小鼠脾细胞融合,建立了一株分泌抗黄疸出血群钩体外膜抗原的单克隆杂交瘤细胞株ZMA_3。经MAT与ELISA检测.证明ZMA_3单克隆抗体具有较高的群特异性。ZMA_3杂交瘤细胞株经体外持续培养七月余,分泌抗体性能稳定。经鉴定ZM A_3单克隆抗体属IgG_2a亚类。     

抗人内皮细胞特异性分子-1单克隆抗体的研制和初步鉴定

运用B淋巴细胞杂交瘤技术 ,以人内皮细胞特异性分子 1(ESM 1)蛋白为抗原 ,经PEG融合 ,有限稀释法筛选 ,获得了 7株稳定分泌抗人ESM 1的杂交瘤细胞株 ,其中 3A7细胞株特异性尤为显著 ,效价高达 1∶6 0 0 0。所分泌抗体亚型为IgG2b ,Westernblot结果表明对内皮细胞中的ESM 1蛋白及细胞培养上清中的ESM 1均可特异性识别。并观察到ESM 1主要分布在内皮细胞的细胞胞质伴胞核中。在肾组织中 ,ESM 1定位于血管内皮细胞 ,且肾癌标本中ESM 1阳性表达显著高于正常肾组织。免疫组化结果表明所获单抗具有一定的特异性和实用性。     

抗人CD38单克隆抗体的制备、鉴定及其功能的初步研究

目的：研制抗人CD38抗原分子的单克隆抗体，进一步研究其生物学功能。方法：采用高表达CD38抗原的Daudi细胞免疫Balb/c小鼠；取其脾细胞与SP2/0细胞融合；用间接免疫荧光法进行杂交瘤筛选；流式细胞术、免疫沉淀法与CD38分子原核表达产物的Western-blot分析鉴定单克隆抗体的特异性。以MTT（四甲偶氨唑盐）法检测单克隆抗体抑制细胞增殖以及介导补体杀伤靶细胞的功能。结果：获得了一株抗人CD38分子的单克隆抗体1C6，流式细胞术显示它具有CD38抗原特异的细胞反应谱，其识别的抗原分子质量为45000u。与CD38分子原核表达产物的Western-blot分析表明，其可特异识别CD38分子胞外结构域。MTT法显示其可介导补体杀伤靶细胞。结论：成功制备了抗人CD38分子的单克隆抗体，并进行了初步的功能研究。     

抗ssDNA单抗免疫组化法用于检测肿瘤细胞株对化疗药物敏感性的研究

目的 :应用本室制备的抗单链DNA (ssDNA)单克隆抗体(mAb) ,检测多种化疗药物对不同肿瘤细胞株凋亡的诱导作用 ,并根据凋亡率判断肿瘤细胞对化疗药物的敏感性。方法 :用血浆峰值浓度 (PPC)的 9种化疗药物 ,分别诱导肿瘤细胞株K5 6 2和Hep 2的凋亡。用抗ssDNAmAb免疫组化染色法 ,检测肿瘤细胞株的凋亡并计算调亡率。结果 :以抗ssDNAmAb建立的检测细胞凋亡的免疫组化法 ,能够区分凋亡细胞和非凋亡细胞。该法检测证明 ,化疗药物可诱导敏感肿瘤细胞株凋亡 ,但不同化疗药物诱导同一肿瘤细胞株或不同肿瘤细胞株凋亡的程度不同。结论 :抗ssDNAmAb免疫组化法 ,可用于检测肿瘤细胞对化疗药物的敏感性。     

人白细胞介素15单克隆抗体的制备及鉴定

目的 :用rhIL 15与沙门氏菌裸菌相偶联制备IL 15单克隆抗体 (monoclonalantibody ,McAb) ,以便为疾病的诊断、治疗和发病机制的研究提供可靠的生物制剂。方法 :将纯化的rhIL 15蛋白与沙门氏菌裸菌相偶联制成免疫原 ,用脾内、腹腔、静脉三种途径相结合免疫BALB c小鼠 ,以PEG为促融剂 ,将脾细胞与SP2 0细胞进行融合 ,HAT选择培养 ,间接ELISA筛选阳性克隆 ,通过多次克隆化 ,获得稳定分泌特异性McAb的杂交瘤细胞株 ,并对所获得的细胞株及分泌的McAb特性进行了分析。结果 :获得 4株能稳定分泌特异性McAb的杂交瘤细胞系 (hybridomacell,Hc) ,ELISA法检测其效价分别为 1:10 6 、1:10 7、1:10 7、1:10 7。Dotblot检测IL 15的灵敏度为 1 5ng ,其中一株 (1 7E4 )尚可用于Westernblot检测。结论 :成功制备了 4株IL 15McAb杂交瘤细胞系。     

抗主要组织相容性相关蛋白MICA / B 的单克隆抗体制备及应用

目的:制备抗主要组织相容性相关蛋白A/ B(MICA/ B)的单克隆抗体并对其特异性进行验证。方法:以重组MICA*012 蛋白免疫小鼠后将其脾细胞与SP2/0 细胞进行融合和筛选得杂交瘤细胞株,并用ELISA 对其中9B10 细胞株产生的单克隆抗体进行效价检测以及通过Western blot、Luminex、免疫荧光对其特异性进行检测。结果:获得6 株杂交瘤细胞株,其中9B10 细胞株产生单克隆抗体(mAb)9B10 的最低反应浓度为0.02 ng/ μl,且mAb 9B10 可应用于Western blot、Luminex 和免疫组化荧光试验对MICA 和MICB 分子的检测。结论:成功获得可同时检测MICA 和MICB 表达的单克隆抗体9B10。     

甲胺磷单克隆抗体制备及鉴定

目的：制备并鉴定甲胺磷农药单克隆抗体。方法：用500mg/mL PEG 4000作融合剂进行细胞融合，HAT（H，次黄嘌呤；A，氨基喋呤;T,鹃腺嘧啶）培养基选择性培养，自制的显微操作装置进行亚克隆。用间接ELISA（酶联免疫吸附测定）和间接竞争ELISA方法对2株细胞进行鉴定，并测定与其它农药的交叉反应率。结果：得到2株稳定分泌甲胺磷抗体的单克隆细胞株，命名为1C3和2C6；间接ELISA法表明2株细胞与载体牛血清蛋白质（Bovine serum albumin,BSA)和卵清蛋白质（Ovalbumin,OVA)反应成阴性；间接竞争ELISA法表明2株细胞上清液内的抗体可以竞争性地与甲胺磷结合；2株单克隆细胞均系IgG1亚类；1C3细胞诱导腹水纯化后的抗体与其它有机磷农药几乎没有交叉反应。结论：成功制备2株分泌抗甲胺磷抗体的单克隆细胞株，并可用于检测甲胺磷的研究。     

Characterization of Cross-Reactive Anti-DNA Autoantibodies in Murine Lupus

The role of crossreactive anti-DNA autoantibodies in the pathogenesis of Systemic Lupus Erythematosus (SLE) and its counterpart in the mouse (murine lupus) remains undefined. Five murine monoclonal anti-DNA autoantibodies tested in ELISA and immunofluorescence assays were found to cross-react with a variety of both nucleic acid and non-nucleic acid antigens. These included double stranded DNA (dsDNA), single stranded DNA (ssDNA), transfer RNA (tRNA), and the murine thymoma cell lines WEHI-22, WEHI-7, and EL-4. The majority of the autoantibodies reacted with all antigens tested; none of the autoantibodies reacted with only one antigen. To determine if the multiple reactivities demonstrated by these hybridoma-derived monoclonal anti-DNA autoantibodies accurately reflects the in vivo, autoimmune environment, the same assays were used to measure the reactivities of autoantibodies secreted directly from unfused autoimmune spleen cells cultured in vitro. These spleen cell-derived autoantibodies were found to display reactivities very similar to those demonstrated by the monoclonal anti-DNA autoantibodies indicating that the hybridoma process itself does not appear to select and amplify reactivities which are not present in vivo. Initial molecular characterization of F11, a monoclonal anti-DNA autoantibody crossreactive with both dsDNA and ssDNA, revealed that it utilizes the same VH gene segment as an anti-DNA autoantibody specific for ssDNA. F11 was also found to utilize similar VH, D, and JH gene segments as an antibody directed against the hapten polymer (Glutamic acid⁶⁰,Alanine³⁰, Tyrosine ¹⁰)n (GAT). Thus, the same Ig gene segments used to encode crossreactive anti-DNA autoantibodies can also be utilized by anti-DNA autoantibodies displaying strict antigen specificity as well as by antibodies directed against exogenous antigens.     

Restoring antibody activity of a monoclonal anti-RNP antibody by dissociative HPLC. Demonstration of blocking antibody binding sites with antigen released from effete hybridoma cells.

In biomedical research, monoclonal anti-nuclear antibodies have a number of advantages over polyclonal antibodies in terms of both specificity and reproducibility. However, there are some potential problems in the preparation of monoclonal antibodies. A well characterized mouse monoclonal anti-ribonucleoprotein antibody (anti-RNP antibody, 2.73) known to function in Western blotting was found to lose this activity when produced in vitro from long term hybridoma cell culture. Whilst it could no longer detect RNP antigen by Western blotting, it could still function effectively in affinity purification of RNP antigen. Further studies suggested that this was due to blocking of antibody binding sites by RNP antigen released from effete hybridoma cells in culture. The activity of the antibody in affinity purification was retained because the antigen was stripped away by repeated elutions with 6 M urea. HPLC gel filtration in the presence of 6 M guanidine was able to restore the antibody activity of the protein A purified monoclonal antibody. This finding has important general consequences for the preparation of monoclonal antibodies against antigens present in hybridoma cell culture media.     

抗人PD-L1 单克隆抗体的制备及其应用

目的:获得能应用于临床诊断以及阻断PD-L1 与PD-1 结合的抗人PD-L1 单克隆抗体。方法:采用重组表达的人PD-L1 蛋白免疫BALB/ c 小鼠,通过杂交瘤细胞融合技术获得稳定分泌抗人PD-L1 单抗的阳性细胞株,ELISA 方法鉴定抗体的特异性、亲和力、亚型等方面特性;免疫印迹、间接免疫荧光方法对肿瘤细胞进行检测;肿瘤杀伤实验验证抗体阻断活性。结果:共获得2 株抗人PD-L1 单抗,抗体效价分别为1 2.56 106 和1 3 105 ,亲和力分别为1.5 109 L/ mol 和2.5 108 L/ mol,均与PD-L2 蛋白无交叉反应。免疫印迹、间接免疫荧光证实抗体有诊断作用。杀伤实验显示抗体有阻断作用。结论:共获得两株稳定分泌高效价、高特异性的抗人PD-L1 单抗的杂交瘤细胞株,能作为诊断抗体应用于肿瘤表型检测和预后有效性的评估。抗体的阻断功能可应用于联合CIK 细胞免疫治疗。     

Monoclonal antibody production by hybridoma growth in Freund's adjuvant primed mice

Incomplete Freund's adjuvant was used as a priming agent prior to the injection of hybridoma cells in mice to expand monoclonal antibody production. Two hybridoma cell lines, FDO28B (IgG1) and FDO31C (IgM), which produce monoclonal antibodies reactive towards human placenta, were used. Monoclonal antibody was detected in the ascites fluids by agarose gel electrophoresis. It was found that the time interval between adjuvant priming and cell injection could be reduced to 1 day, allowing collection of ascites fluid containing monoclonal antibody within 2 weeks of priming. In addition, as few as 1 X 10(5) hybridoma cells were needed to collect approximately 5-7 ml of ascites fluid containing antibody detectable by gel electrophoresis. Thus priming with incomplete Freund's adjuvant enables production of large amounts of monoclonal antibody in a short time using a low number of hybridoma cells.