抗诺氏疟原虫裂殖子表面分子量140,000的蛋白单克隆抗体能抑制裂殖子侵入恒河猴红细胞

已知疟原虫裂殖体表面一种分子量为140,000的蛋白与其入侵江细胞的能力有关。作者先将裂殖体蛋白进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳,然后分出分子量为140,000的蛋白包入脂质体后加完全佐剂对BALB/c小鼠进行免疫,在进行细胞杂交前3天用完整裂     

抗诺氏疟原虫裂殖子表面抗原决定簇单克隆抗体阻断裂殖子侵入红细胞

作者报道了明显凝集裂殖子的两种单克隆抗体可阻断裂殖体侵入红细胞。以马来西亚H-株诺氏疟原虫静脉注射感染恒河猴,俟虫血症达8—30%,大部分裂殖体含6个以上裂殖子时采血,除去血小板及白细胞,按Dennis等(1975)的方法制备裂殖子。裂殖子制剂免疫6—8月龄的BALB/C小鼠细胞融合分成5组,1,2,3组小鼠以5×10~7裂殖子混于CFA中,经腹腔注射,30—40天后再以同样数量的裂殖子静脉注射2次,末次注射于融合前4天进行;第4,5组小鼠腹腔注射混于CFA中的5×10~7裂殖子,10天后,即融合前4天再行第2次     

恒河猴反复感染诺氏疟原虫后的功能性免疫与抗裂殖子抗体

为了发展测定宿主免疫状况的体外试验,Butcher和Cohen(1972)的研究证实了免疫血清能抑制诺氏疟原虫在培养基中的繁殖。认为这种抑制抗体提供了与免疫状态一致的指标,并可能表示保护性抗体。但考虑到疟疾免疫反应的复杂性和抗原变异等问题,一种试验不见得能很好地测定宿主的免疫状态。本文作者研究了体外裂殖子的侵入试验和感染裂殖体的红细胞凝集试验(SICA)与宿主功能性免疫的关系。     

用裂殖子免疫接种抗诺氏疟原虫感染试验

疟疾获得性免疫机理的研究指出,保护性抗体对细胞内原虫无作用,但可阻止裂殖子释放入血浆后的发展。有人观察到免疫血清可凝集游离的裂殖子,并且阻止其附着于易感宿主红细胞的接受点。这说明裂殖子抗原在疟疾特异性免疫中的重要作用。本文报告用裂殖子作疫苗对猴进行免疫接种抗诺氏疟原虫感染的应用。实验用猴为恒河猴(Macaca mulatta)及克拉猴(M.fascicularis)。诺氏疟原虫分W株和Nuri株(N株),又根据裂殖体感染细胞凝集(SICA)试验区分为不同的系别。免疫接     

约氏疟原虫裂殖体和裂殖子的浓集分离方法

本文对浓集和分离约氏疟原虫约氏亚种的方法进行了探讨。应用17.5％的聚蔗糖(Ficoll)溶液可浓集该种疟原虫感染的红细胞,并可分离出以裂殖体为主的上层和滋养体占50％左右的中层感染细胞层。应用ConA-Sepharose 4B柱可以分离出大量比较纯净的裂殖子,其形态完整,纯度在90％以上。     

恒河猴接种抗诺氏疟原虫的裂殖子疫苗对孢子体攻击的免疫力

为测定接种裂殖子疫苗后对孢子体攻击的免疫力,作者进行了本试验。试验虫株为马来西亚的诺氏疟原虫W株和A株,W株又以红细胞凝集试验从血清学上区分出不同的变异株。接种的裂殖子疫苗均为W_1变异株。裂殖子通过植物血凝素(PHA)沉淀作用或     

疟原虫裂殖子顶端膜抗原研究进展

疟原虫裂殖子顶端膜抗原１（Ａｐｉｃａｌｍｅｍｂｒａｎｅａｎｔｉｇｅｎ１,ＡＭＡ－１）存在于疟原虫裂殖子顶端复合体中,在裂殖体成熟破裂时,被迅速散布到裂殖子整个表面［１～３］。一旦裂殖子钻入红细胞形成环状体后,ＡＭＡ－１即不复检出,推测其与裂殖子入侵红...     

裂殖子疫苗预防诺氏疟疾

对自然感染恶性疟的儿童的研究,以及对得自恒河猴的诺氏疟原虫的体外研究,提示抗体能抑制裂殖子侵犯红细胞,是对疟疾保护性免疫的重要组成部分。这促使努力分离红细胞的裂殖子用于恒河猴实验预防接种。分离裂殖子:恒河猴体内的诺氏疟原虫以发育同步化和高度原虫血症为特征。注射感染10~4个无性期原虫的猴,在7或8天后血检可见大量红细胞被感染(正常为20～70%),而且6～8个核的裂殖体占多数。在350g离心8分钟后,感染裂殖体的细胞在灰白色层及未感染的红细胞层之间形成一不带     

抗诺氏猴疟原虫的免疫方法

作者报道了一种对猕猴抗诺氏疟原虫的免疫方法。以冻融的感染裂殖体的红细胞加于福氏完全佐剂(Freund’s complete adjuv-ent)中使弥猴致敏免疫,然后以同株原虫激发感染,多数猴虽出现短暂的原虫血症,但于激发感染的第2～3周原虫完全被消除。此项结果经去脾与血液转种阴性证实后,又再用同株原虫接种,再出现短暂的原虫血症,以后原虫亦被消除,再以另一株诺氏疟原虫激发     

接种诺氏疟原虫裂殖子所产生的免疫的抗体介导机理

诺氏疟原虫感染恒河猴,一般可导致其死亡。如猴事先用诺氏疟原虫裂殖子加福氏完全佐剂(FCA)接种,再用疟原虫攻击,则在出现短暂疟原虫血症后,感染即被清除。接种裂殖子后产生了清除感染的免疫。它具种株的特异性。本文目的就在于分析与这种免疫有关的抗体介导机理。     

用裂殖子疫苗防止恒河猴感染诺氏疟原虫

疟疾仍然是热带国家最具有威胁性疾病之一,因为媒介控制和化疗措施仅获得部份的成功。现在正转向用免疫预防疗法,希望疫苗也可作为一种有效武器。本文总结了用冰冻保存和新鲜分离得到的诺氏疟原虫裂殖子并用弗氏完全佐剂(FCA)免疫后,多批猴子在4年半时间内得到的保护,也测定了诱     

感染人类的第五种疟原虫—猴诺氏疟原虫

猴诺氏疟原虫（Plasmodium Knowlesi）目前被公认是感染人类的第五种疟原虫,研究结果表明该猴疟不仅在自然的猴群中通过传疟按蚊相互传染,也可以通过传疟按蚊传染给人类,造成人-人和人-猴之间的传播,人类同样也可以通过血液进行传染。该猴疟原虫不论是感染人或猴之后红细胞内裂变周期均为24h,有报道被感染者血内原虫短期内达到高密度原虫血症并发肾功能衰竭而导致死亡心。     

约氏疟原虫重组裂殖子表面蛋白免疫原性的研究

目的 检测约氏疟原虫裂殖子表面蛋白C端相对分子质量为41 000重组蛋白的抗原性和免疫原性,对其抗虫感染效果进行评价,为疟疾DNA疫苗的研究提供基础资料.方法 采用重组表达质粒pPGEX-2T-PyMSP1在大肠杆菌中表达的融合蛋白,免疫BALB/c小鼠,2周后用约氏疟原虫子孢子感染小鼠.用酶联免疫吸附试验(ELISA)测定抗MSP1抗体滴度,MSP1融合蛋白特异性免疫反应测定,MSP1对小鼠免疫保护作用.结果 免疫11 d后抗体水平开始上升,到42 d达到最高峰,各时段抗体滴度分别为:第11天1:2 183、第21天1:38 115、第42、63、86和第124天均维持在1:798 560水平;ELISA检测免疫后第21天小鼠抗MSP1的IgG、IgM、IgG1、IgG2a、IgG2b和IgG3,其405 nm波长的吸光度(A405)依次为1.82±0.61、0.33±0.05、2.35 ±0.77、1.14±0.40、2.22±0.58、0.18±0.02.免疫后的小鼠体内产生特异性保护免疫,子孢子攻击感染20 d后,原虫密度有较快的下降.结论 所表达的重组约氏疟原虫裂殖子表面蛋白,具有一定的抗原性和免疫原性,能够诱导小鼠产生特异性保护抗体,并且该抗体能够维持在较高的水平.     

秋水仙碱对体外诺氏疟原虫发育的影响

本文用秋水仙碱这个有干扰微管合成及其功能的已知抗有丝分裂的药物,观察其对体外培养的诺氏疟原虫红内期发育的影响。以Mill Hill培养基配制1%M 浓度的秋水仙碱溶液,经0.22μm微孔膜过滤除菌。开始时用4ml摇动稀释培养物,内含0.4ml原     

各株间日疟原虫裂殖体内的裂殖子数

殖子均数互有差异,本实验试图说明这一现象的意义。于1938～1960年期间以静脉血传染14例,以蚊虫传染11例,共计25例,在用的12个虫株中,北部8株,南部3株,伏而加格勒1株。在第6～8次发作时取血制片,每例查100～400个裂殖体。结果未见感染途径与裂殖子数之间有任何差异,北方各株裂殖子的平均数为14. 3～18. 2,南方各株为15. 4～18. 0,伏尔加格勒株为15. 5～17. 3。     

恶性疟原虫云南勐捧分离株裂殖子顶端膜抗原Ⅰ序列分析

根据文献报道的恶性疟原虫裂殖子顶端膜抗原IDNA序列的保守区，设计并合成两对20聚寡核苷酸作引物，对恶性疟原虫勐捧分离株DNA进行PCR扩增。扩增产物经BamHI和EcoRI双酶解后，克隆入具有相应末端的M13mp8和M13mp8载体，转化JPA101，生长于含X－gal的培基上，抽提无色噬菌斑DNA，以DNA序列测定仪进行DNA序列测定，并自动翻释成氨基酸序列。用双脱氧终止法测定部分DNA序列，并与DNA序列测定仪测定的序列进行比较。结果表明，扩增的序列长度为1773个碱基，编码591个氨基酸。与参照序列比较，有17个点突变，引起15个密码子的取代，其中，除1个密码子为同义取代外，其余密码子均为非同义取代，造成14个氨基酸的取代。点突变在序列中呈散在分布，但在氨基酸序列中第160－210位相对较集中。     

恶性疟原虫裂殖子和感染恶性疟原虫裂殖体的红细胞表面蛋白

作者按照Tragager和Jensen的方法,用含10%人血清的RPMI 1640-HEPES(称为RPS培基)在100mm的陪氏培养皿中培养恶性疟原虫。为收集大量的裂殖子,首先进行同步培养。最初,用山梨糖醇处理培养物,然后,在明胶中漂浮反复地分离环状体和滋养体。用这种方法(一般是5次)每40—42小时挑选一次感染滋养体的红细胞,直到3—4小时内原虫同步发育。在释放裂殖子预测时间的八小时前,吸出培养基,并用含下列任一基质:(a)[~(35)S]蛋氨酸,10μci/ml的培养基;(b)[~3H]亮氨酸,10μci/ml 60ci/mmol;(c)[~3H]葡萄糖胺,40μci/ml;(d)[~3H]甘露糖,25μci/ml的10ml RPS培养基进行补充。     

纤维素柱分离伯氏疟原虫子孢子

应用 DEAE-纤维素柱可以得到比较洁净的子孢子混悬液。每次实验需配制新鲜的缓冲液,成分为每升水8. 8克三(羟甲基)氨基甲烷(Tris),5克 NaH_2PO_4·H_2O,5克氯化钠和18克葡萄糖,pH 为8. 2±0. 05,离子强度0. 121。制备 DEAE 纤维素柱时,用内径16毫米、容量12毫升的注射器状塑料筒,出口盖以16毫米直径的细尼龙网盘,将预先