许旺细胞与小肠黏膜下层体外复合培养的形态学研究

目的观察体外培养的许旺细胞在小肠黏膜下层（SIS）表面的黏附生长状况，探讨SIS与许旺细胞（SCs）的生物相容性。方法体外分离培养SD乳鼠的许旺细胞，接种于制备好的SIS进行复合培养，不同时间段通过相差显微镜、组织学、扫描电镜和透射电镜观察SCs在SIS上的黏附、生长和增殖情况。结果相差显微镜下见3—5d后SIS边缘SCs生长良好；组织学观察见5d时许旺细胞与SIS表面黏附紧密；扫描电镜观察见SIS表面SCs增殖黏附良好，胞体突起显著，呈端对端的相互连接或排列成束，细胞表面可见有蛋白颗粒分泌。透射电镜观察见SIS表面许旺细胞生长状态良好，细胞紧密贴附生长于SIS表面；许旺细胞与SIS交界部见细胞底部形成一些突起与SIS接触。结论SCs能够在SIS表面良好地黏附生长，SIS作为支架材料，与SCs具有良好的生物相容性。     

膀胱平滑肌细胞与小肠黏膜下层体外复合培养的实验研究

目的探讨体外快速培养犬膀胱平滑肌细胞的方法及观察膀胱平滑肌细胞在脱细胞小肠黏膜下层(small intestinal submucosa,SIS上的生长状况,为构建组织工程膀胱平滑肌组织提供实验依据。方法分别采用酶消化法和组织块培养法分离、获取和原代培养犬膀胱平滑肌细胞,倒置相差显微镜下观察细胞的生长情况,透射电镜观察细胞的超微结构,免疫组织化学染色进行细胞鉴定。将犬膀胱平滑肌细胞接种到SIS支架材料上,于复合培养5、7及9d取材,行苏木素染色、石蜡切片HE染色和扫描电镜观察膀胱平滑肌细胞在SIS上的生长状况。以细胞-SIS复合培养组为实验组,以膀胱平滑肌细胞为对照组,每组各设9孔,分别于接种后3、5及7d取材,酶消化后收集细胞并计数。结果酶消化法原代培养获取犬膀胱平滑肌细胞数量多,细胞生长速度快,形态良好,培养5d细胞在培养瓶底生长汇合。组织块培养法接种3d见长梭形的膀胱平滑肌细胞从植块边缘萌出,获取的细胞数量较少。透射电镜下见膀胱平滑肌细胞胞质中有特征性细肌丝和细胞膜的密斑。抗α-肌动蛋白免疫组织化学染色胞浆呈棕黄色阳性反应。膀胱平滑肌细胞在SIS表面能黏附、生长和增殖。体外复合培养5d后,膀胱平滑肌细胞铺满SIS表面,呈单层细胞结构。7、9d细胞形态与5d相似。实验组3、5及7d的细胞计数分别为(16.85±0.79)×105、(39.74±2.16)×105及(37.15±2.02)×105个,对照组分别为(19.43±0.54)×105、(34.50±1.85)×105及(33.07±1.31)×105个。两组5d细胞计数差异有统计学意义(P<0.05)。结论酶消化法原代培养膀胱平滑肌细胞可提供大量活性良好的种子细胞。SIS支持膀胱平滑肌细胞黏附和生长,可为构建组织工程膀胱平滑肌组织提供良好支架。     

人工生物可降解支架构建组织工程食管的实验研究

目的 研究食管上皮细胞在聚乳酸-聚乙醇酸[poly（1actic-co-glyeolic acid），PLGA]三维支架材料上的黏附和生长情况，探索利用组织工程技术构建组织工程食管的可行性。方法 应用粒子浸出常温模压法制作PLGA三维多孔支架材料；分离培养6只犬食管上皮细胞，体外扩增后，种植到预涂Ⅳ型胶原的PLGA支架材料上。在体外和犬腹腔内分别培养食管上皮细胞-支架复合物，分期终止培养，体外培养3d，1、2、3和4周，其中将体外培养3d后细胞-支架复合物植入同只犬腹腔内，于体内培养1、2、3和4周后行组织学、扫描电镜观察，以及细胞角蛋白抗体免疫组织化学检测。结果 分离培养的犬原代食管上皮细胞呈铺路石样，体外可大量扩增，细胞角蛋白抗体免疫组织化学染色呈阳性；体外及体内培养可见食管上皮细胞在支架材料上黏附、生长良好，持续培养仍保持食管上皮细胞特性；犬腹腔内培养4周后，可形成食管黏膜样组织。结论预涂Ⅳ型胶原的PLGA支架材料适合食管上皮细胞黏附生长，可作为组织工程食管的支架材料。利用组织丁程的方法在体外和犬腹腔内培养有可能获得适于移植的组织工程食管。     

上皮细胞条件培养液对BMSCs分化的影响

目的 探讨上皮细胞条件培养液(epithelial cell conditioned medium,ECCM)体外诱导犬BMSCs向上皮细胞分化的可行性.方法 成年健康雄性比格犬1只,体重10 kg.于犬髂后上棘采用骨髓穿刺法取骨髓5 mL,分离培养BMSCs.取犬口腔黏膜下组织,剪成约4 mm×4 mm大小,制备ECCM.取第2代BMSCs以2×104个/孔细胞密度接种,实验组于ECCM中培养,对照组于低糖DMEM完全培养基中培养.观察两组细胞形态特征,MTT法绘制生长曲线,诱导培养21 d免疫组织化学染色鉴定上皮细胞特异性标志物--细胞角蛋白19(cytokeratinl9,CK-19)和细胞角蛋白AE1/AE3,透射电镜观察细胞超微结构.结果 倒置相差显微镜下见两组细胞均呈长梭形,均匀分布,折光性较强,增殖迅速.两组细胞生长曲线均呈"S"形,实验组生长曲线较对照组右移,提示ECCM对细胞增殖有抑制作用.实验组CK-19和细胞角蛋白AE1/AE3免疫组织化学染色均呈阳性反应,对照组呈阴性.透射电镜下实验组细胞胞浆内可见紧密连接.结论 ECCM体外有诱导同种BMSCs向上皮细胞分化的作用.     

显微剥离酶消化法体外培养人胚胎食管鳞状上皮细胞的方法研究

目的 探讨利用显微剥离酶消化法行人胚胎食管鳞状上皮细胞原代培养的可行性，并对所得细胞进行纯化及传代培养。方法选择意外流产20周龄胎儿食管标本，通过显微剥离法获得菲薄食管黏膜上皮，经短时酶消化分离所得细胞，在10％胎牛血清混合培养基中培养，通过倒置显微镜、透射电镜及免疫组织化学方法鉴定所得细胞，并测定其生长曲线。结果倒置显微镜下见细胞呈不规则圆形或多边形，透射电镜可见其具有鳞状上皮细胞特征性的张力微丝，细胞表面微突起，细胞角蛋白免疫组织化学染色胞浆呈棕黄色阳性表现，MTT法测定第2代细胞在传代培养3～4d达生长高峰。3、4d吸光度（A）值与1、2、5及6d比较，差异有统计学意义（P〈0．05）。结论通过显微剥离酶消化法可获得足量、较纯食管鳞状上皮细胞，混合培养基中细胞能快速传代、扩增，适宜作为种子细胞构建组织工程食管。     

人舌黏膜上皮细胞体外构建组织工程尿道的初步研究

目的 探索人舌黏膜上皮细胞和脱细胞支架体外复合构建组织工程尿道的可行性.方法 前尿道狭窄患者10例,手术切取0.5 cm×0.8 cm大小舌黏膜组织,分离获得舌黏膜上皮细胞,AE1/AE3抗体行细胞免疫荧光鉴定.收集第3代上皮细胞,按1×107/ml密度分别接种于脱水BAMG支架、液体保存BAMG支架以及4层脱细胞基质(SIS)支架表面,体外培养7d后行HE及扫描电镜检测.结果 10例患者术后1个月未出现舌部相关并发症.14 d后原代舌黏膜上皮细胞融合达90％～95％并呈典型的“鹅卵石”状生长.第3代时增殖速度达顶峰,平均7d达到90％～95％融合,第4代开始细胞逐渐老化.HE及扫描电镜检测液体保存BAMG支架表面仅复合极少量细胞,脱水BAMG以及SIS支架表面可见明显多层上皮细胞覆盖,其中4层SIS支架内部可见局部细胞浸润性生长迹象 结论 人舌黏膜上皮细胞可以作为组织工程尿道上皮种子细胞来源之一,与脱水处理后的SIS和BAMG有很好的组织相容性和黏附能力,二者的有效复合可以构建适合尿道修复重建需要的组织工程替代材料.     

胎盘间充质干细胞与骨髓间充质干细胞分离培养和生物学特性研究

目的探讨兔胎盘间充质干细胞(placenta-derived mesenchymal stem cells,PMSCs)和兔骨髓间充质干细胞(bone marrow-derived MSCs,BMSCs)体外分离培养、增殖,对其生物学性状进行比较观察。方法取足月待产新西兰大耳白兔1只,采用密度梯度离心法及贴壁培养技术从兔胎盘对PMSCs进行分离、纯化和传代培养。取2周龄新西兰大耳白兔1只,采用直接贴壁法从后肢骨髓中对BMSCs进行分离、纯化和传代培养。用倒置相差显微镜观察两种细胞形态。免疫组织化学染色对第3代细胞表面标志(CD44、CD105、CD34、CD40L)进行鉴定。将BMSCs与PMSCs第2代细胞分别与生物衍生骨进行复合培养5d,每条材料接种(1.0~1.5)×106个细胞,苏木素染色观察细胞与材料复合培养情况。扫描电镜观察两种细胞分别与材料复合培养3d和8d的情况。结果在倒置相差显微镜下观察,两种细胞均为贴壁生长,形态为均一成纤维细胞样。PMSCs增殖力强,细胞的增殖能力随传代次数的增加而有所下降,细胞体外培养10代后,生长速度减慢。两种细胞均表达CD44、CD105,不表达CD34、CD40L。复合培养5d,PMSCs和BMSCs在生物衍生骨表面生长,大量黏附,细胞积聚成团,相互连接成网状,孔隙内也可见细胞生长和增殖,并分泌基质。扫描电镜观察:复合培养3d,可见较多量的细胞在生物衍生骨上黏附,呈梭形或多角形;8d两种细胞均已大量增长,呈层状排列,细胞连接紧密,分泌大量基质,细胞周围有较多的网状胶原形成。结论PMSCs与BMSCs有相似的生物学特性,可作为组织工程的另一成体干细胞来源。     

应用组织工程口腔黏膜重建尿道的初步实验研究

目的 探讨兔口腔黏膜细胞的体外培养方法,并以其为种子细胞与异体膀胱黏膜下脱细胞基质(bladder acellular matrix graft,BAMG)复合,构建组织工程尿道. 方法 18只10周龄雄性新西兰大耳白兔,体重0.3～0.5 kg.取其中12只兔口腔黏膜组织,分离获得口腔黏膜细胞.将口腔黏膜细胞分别接种于有3T3细胞及无3T3细胞的培养皿进行培养,接种后第2天于倒置相差显微镜下观察细胞形态变化,绘制细胞生长曲线,观察生长增殖情况,并行免疫荧光组织化学染色鉴定.取余6只兔膀胱,经脱细胞处理制备BAMG,随机取1 cm×1 cm组织行HE染色,观察脱细胞效果.将接种于有3T3细胞培养皿培养获得的第2代口腔黏膜细胞种植于BAMG上,培养1周后,行HE染色及扫描电镜观察口腔黏膜细胞与BAMG的复合状况. 结果 倒置相差显微镜下观察,接种于有3T3细胞培养皿的口腔黏膜细胞可传至7～8代,其细胞形态均一,功能良好;无3T3细胞培养皿的口腔黏膜细胞形态多样,传至第2代时,即开始出现老化.细胞生长曲线显示,两种方法培养的口腔黏膜细胞均于第8天开始呈对数增长,第14天达峰值.接种于有3T3细胞培养皿的口腔黏膜细胞,培养至融合时所获得细胞数量明显多于接种于无3T3细胞培养皿的u腔黏膜细胞.两种方法培养的口腔黏膜细胞行免疫荧光染色,均呈绿色荧光.HE染色观察,BAMG经脱细胞处理后未见细胞,脱细胞效果良好.复合培养1周后,HE染色及扫描电镜观察口腔黏膜细胞与BAMG复合良好. 结论 兔口腔黏膜细胞可在体外成功培养、扩增,与同种异体BAMG复合后生长良好,为构建组织工程尿道提供了一种新的选择.     

小肠黏膜下层复合上皮细胞及成肌细胞构建组织工程食管的初步研究

目的初步探索利用小肠黏膜下层(smallintestinalsubmucosa,SIS)作为支架材料,复合食管鳞状上皮细胞与成肌细胞构建组织工程食管的可行性。方法4周龄无胸腺小鼠20只,体重20.0±2.5g,雌雄不限。体外分离、培养人胚胎食管鳞状上皮细胞、成肌细胞,并行5-BrdU标记;制备SIS材料并切割成1cm×1cm大小,在SIS材料同一表面接种两种细胞,待细胞在材料表面贴附后将其植入裸鼠体内深筋膜下,于术后第3天及1、2、3周取材行组织学和抗角蛋白、平滑肌肌动蛋白(smoothmuscleactin,SMA)免疫组织化学观察,以了解食管鳞状上皮细胞、成肌细胞在SIS材料上的增殖、分化情况和复合物在裸鼠体内的血管化情况。结果人胚胎食管鳞状上皮细胞、成肌细胞能够渗透、生长于SIS材料中,并形成数层结构。植入体内第3天可见细胞增殖为多层覆盖于材料表面,并分泌大量细胞间基质。第2周时已经形成7~8层细胞,并伴有血管长入。3周时细胞增殖为十几层,大量血管长入。通过5-BrdU标记抗体染色观察,示SIS支架材料上生长的细胞多为所植入细胞。抗角蛋白,SMA免疫组织化学染色示移植细胞能够在体内分化。结论成肌细胞与鳞状上皮细胞在SIS材料上的复合培养物,在体内能继续增殖分化形成多层细胞结构,并能快速血管化,可用于组织工程化食管的构建。     

兔椎间盘髓核细胞体外生物学特性的实验研究

目的 对兔椎间盘髓核细胞进行体外培养,观察细胞的形态、表型及超微结构改变,研究其体外生物学特性.方法 取2周龄健康新西兰白兔椎间盘髓核组织,在含有15%灭活FBS的DMEM/F12培养液中培养,倒置相差显微镜下观察原代和传代细胞形态.分别在取材后、原代、第1代、第2代细胞培养期间,进行髓核细胞活力测定;爬片培养后进行甲苯胺蓝、HE、聚集蛋白聚糖番红O、Ⅰ型及Ⅱ型胶原免疫组织化学染色观察;MTT法绘制髓核细胞生长曲线,并行原代及第2代细胞透射电镜观察,对体外细胞的生物学特性进行研究.结果 倒置相差显微镜见原代髓核细胞呈类圆形,折光性较强;5 d开始有细胞贴壁,细胞呈多角形或短梭形;6～8 d细胞生长进入指数生长期;约17 d时,细胞长满瓶壁,可进行传代;随传代次数增加,细胞形态逐渐由多角形、短梭形向长梭形改变.髓核细胞活力测定在刚分离完成后细胞活力为95%～97%,原代培养期间为98%～100%,第1代培养期间仍能维持为100%,第2代细胞活力下降较为明显,为75%～80%.髓核细胞甲苯胺蓝染色呈强阳性:HE染色见细胞核、细胞质着色明显.第1代髓核细胞Ⅰ型胶原免疫组织化学染色呈阴性,Ⅱ型胶原免疫组织化学染色呈阳性,聚集蛋白聚糖番红O染色呈阳性;第2代细胞Ⅰ型胶原免疫组织化学染色呈阳性,Ⅱ型胶原免疫组织化学染色呈弱阳性,聚集蛋白多糖番红O染色着色较浅.MTT生长曲线与体外细胞培养时生长过程相符.透射电镜显示原代髓核细胞内线粒体少,胞质内有大量糖原颗粒,随传代次数增加,糖原颗粒减少,线粒体数量增多,细胞器开始肿胀.结论 明确了兔髓核细胞体外生物学特性变迁,为组织工程髓核的种子细胞研究提供了实验依据.     

快速培养纯化猪角朊细胞及复合羊膜体外培养实验研究

目的研究快速培养和纯化猪角朊细胞的方法及观察角朊细胞在脱细胞羊膜上的生长状况,为组织工程皮肤研究提供实验依据.方法采用加10%胎牛血清的人无血清角朊细胞培养基(defined keratinocyte-SFM,DKSFM)培养原代猪角朊细胞,分别用DKSFM(A组)、加5%胎牛血清的DKSFM(B组)、加10%胎牛血清的DKSFM(C组)培养传代猪角朊细胞,于接种后1、3、5和7 d观察猪角朊细胞的形态及生长曲线.利用猪角朊细胞与培养瓶黏附牢固的特点,用0.02%乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)和0.05%胰蛋白酶分步消化,纯化细胞.将第2代猪角朊细胞接种在冻干脱细胞羊膜上,直接苏木素染色、石蜡切片、免疫组织化学染色等方法观察猪角朊细胞在脱细胞羊膜上的生长状况.结果采用加10%胎牛血清的DKSFM培养原代猪角朊细胞,细胞生长速度快,形态好,培养5 d铺满培养瓶底60%～70%.B组培养的传代猪角朊细胞生长速度较C组培养猪角朊细胞生长速度快.A组培养传代的角朊细胞,细胞生长缓慢.用0.02?TA和0.05%胰蛋白酶分步消化的方法纯化猪角朊细胞,可获得纯度为95%以上的猪角朊细胞.将第2代猪角朊细胞接种在脱细胞羊膜后12 d,可形成单层细胞,呈多角形、铺路石样排列;14 d和16 d细胞进一步密集,16 d细胞出现老化.结论 10%胎牛血清的DKSFM培养原代猪角朊细胞,5%胎牛血清的DKSFM培养传代猪角朊细胞,细胞生长速度快.用0.02?TA和0.05%胰蛋白酶分步消化的方法纯化猪角朊细胞,可以获得高纯度猪角朊细胞.脱细胞羊膜为猪角朊细胞提供良好的支架,接种培养后12 d,细胞形态最好.     

地塞米松对人牙髓细胞增殖分化影响的研究

目的观察地塞米松对体外培养的人牙髓细胞增殖和分化的影响。方法收集拔除的无龋坏、无牙周疾病的健康前磨牙及第三磨牙,获得牙髓,酶消化联合组织块法体外培养人牙髓细胞(Human dental pulp cells,hDPCs),扩增后取第4代生长状态良好的细胞用于实验。分为两组,实验组hDPCs在含2%胎牛血清(Fetal bovine serum,FBS)的αMEM培养基中加入10-8mol/L地塞米松(Dexamethasone,Dex)培养,对照组单纯使用含2%FBS的αMEM培养基培养。在细胞培养第1、3、5天检测细胞增殖情况;细胞培养的第1、5、10天分别进行ALP染色及ALP定量分析检测细胞分化情况;细胞培养第10天进行茜素红染色观察钙化结节形成情况。结果细胞增殖活性检测显示,实验组培养第3天及第5天可见hDPCs增殖活性得到显著抑制,与对照组相比有统计学差异;ALP染色及定量测定:培养10 d后,地塞米松实验组ALP活性明显高于对照组;茜素红染色结果:培养10 d后两组细胞茜素红染色均为阳性,表明实验组与对照组均有钙化结节形成,但是实验组钙化结节形成数量较多。结论酶消化联合组织块法可以成功体外培养hDPCs。10-8mol/L地塞米松可显著抑制hDPCs的增殖活性,提高hDPCs的ALP活性及矿化能力。     

脐血CD34+细胞体外诱导肝样细胞的研究

目的 探讨通过细胞因子及其组合体外诱导脐血CD34^＋细胞转分化成肝样细胞的效果。方法 采用密度梯度离心法分离脐血单个核细胞（mononuclear cell，MNC），从MNC中获得富集CD34^＋细胞。选用人白血病抑制因子、制瘤素M、bFGF、aFGF、肝细胞生长因子、EGF及干细胞生长因子7种细胞因子，浓度分别为10、10、10、10、20、20和50ng／mL，设计了49种细胞因子组合，分别采用这些细胞因子组合体外培养脐血CD34^＋细胞，培养周期为28d。以新鲜脐血CD34^＋细胞作为对照。每7天检测诱导后细胞中细胞角蛋白19（cytokemtin19，CK-19）、CK-18、谷氨酰胺合成酶（glutamme synthetase，GS）、人血清白蛋白（albumin，ALB）以及甲胎蛋白（a-fetoprotem，AFP）的mRNA转录情况，并应用免疫荧光法、过碘酸-雪夫（periodic acid-schiff，PAS）染色与吲哚菁绿（indocyanine green，ICG）染色法检测细胞分泌ALB、合成糖原以及解毒能力，以此判断是否存在脐血CD34^＋细胞体外向肝样细胞的转分化。结果 在经细胞因子诱导后的CD34^＋细胞中均可检测到人肝细胞所能表达的CK-19、CK-18和GS的mRNA条带，未能检测出肝细胞特征性的ALB与AFP的mRNA条带；而新鲜脐血CD34^＋细胞中以上5种蛋白的mRNA均未能检出。免疫荧光染色观察示诱导前后的细胞中均未能检测到ALB的表达，且均不能有效吞噬ICG染料。PAS反应检测结果显示，经细胞因子诱导后的细胞紫红色糖原沉积区域较新鲜脐血CD34^＋细胞增大，出现紫红色区域的细胞增多。结论 脐血CD34^＋细胞体外经细胞因子组合诱导后，虽有肝细胞相关蛋白mRNA表达，但未能转分化为肝样细胞。     

Growth of bone marrow stromal cells on small intestinal submucosa: an alternative cell source for tissue engineered bladder

OBJECTIVE: To assess the potential use of bone marrow stromal cell (BMSC)-seeded biodegradable scaffold for bladder regeneration in a canine model, by characterizing BMSCs and comparing them to bladder smooth muscle cells (SMCs) by immunohistochemistry, growth capability, and contractility. MATERIALS AND METHODS: Bone marrow was taken by direct needle aspiration from the femurs of five beagle dogs for the in vitro study. Mononuclear cells were isolated by Ficoll-Paque density gradient centrifugation and cultivated in medium 199 with 10% fetal bovine serum. BMSCs were characterized by cell proliferation, in vitro contractility, immunohistochemical analysis, and the growth pattern on small intestinal submucosa (SIS) scaffolds compared to bladder SMC cultures from the same dogs. Another six dogs had a hemicystectomy and bladder augmentation with BMSC-seeded (two), bladder cells including urothelial cells plus SMC-seeded SIS (two) and unseeded SIS scaffolds (two). The six dogs were followed for 10 weeks after augmentation. RESULTS: In vitro BMSCs had a significant contractile response to calcium-ionophore, with a mean (sem) 36 (2)%, relative contraction (P < 0.01), which was similar to bladder SMCs but markedly different from fibroblasts. BMSCs also expressed alpha-smooth muscle actin by immunohistochemical staining and Western blotting, but did not express desmin or myosin. In vivo, both BMSC-seeded and bladder cell-seeded SIS grafts had solid smooth-muscle bundle formation throughout the graft. CONCLUSIONS: BMSCs had a similar cell proliferation, histological appearance and contractile phenotype as primary cultured bladder SMCs. SIS supported three-dimensional growth of BMSCs in vitro, and BMSC-seeded SIS scaffold promoted bladder regeneration in a canine model. BMSCs may serve as an alternative cell source in urological tissue engineering.     

Isolation and Culture of β-Like Cells From Porcine Wirsung Duct

We sought to develop a protocol to isolate and culture porcine Wirsung duct cells in order to determine their potency to differentiate into insulin-expressing β-like cells. The porcine Wirsung duct isolated by a surgical microdissection was digested with collagenase P and trypsin to dissociate ductal cells. These elements were cultured in serum-free supplemented media: for 2 weeks. Thereafter the cells were exposed to varying concentrations of glucose (0, 5.6, 17.8, and 25 mmol/L) to induce a β-like phenotype, as identified by immunohistochemical staining. Cell growth proceeded slowly for the first 2 weeks of culture. After glucose induction for 2 weeks, they formed pancreatic islet-like structures. These cells were stained for the pancreatic ductal cell marker cytokeratin-19 (CK-19) and the pancreatic endocrine markers insulin and glucagon. After the second week, 90% of cells were positive for CK-19. Up to 20.1% of the cells in pancreatic 3-dimensional structures induced by 17.8 mmol/L glucose were positive for insulin, and <3.2%, for glucagon. The positive ratio of immunoreactive staining was dependent on the glucose concentration; 17.8 mmol/L glucose effectively stimulated insulin- and glucagon-secreting cells. We concluded that porcine Wirsung duct cells were capable of proliferation with the potential to differentiate toward β cells upon glucose induction in vitro.     

Hepatocyte differentiation from embryonic stem cells and umbilical cord blood cells

With the development of regeneration medicine, many researchers have attempted hepatic differentiation from nonhepatic-origin cell sources. The differentiation of embryonic stem (ES) cells into hepatocyte-like cells has been reported in several papers. Mouse ES cells have shown a potential to develop into hepatocyte-like cells in vitro on the basis of hepatic gene expression after adding several growth factors. We transplanted cultured embryoid body (EB) cells (male) into female mice. A liver specimen of the recipient was examined by immunohistochemical staining for albumin and fluorescence in situ hybridization for the Y chromosome after transplantation. Both Y chromosome- and albumin-positive cells were recognized in the recipient female liver, and were considered to be hepatocyte-like cells derived from ES cells containing the Y chromosome. Many groups, including ourselves, have studied hepatocyte-like cell differentiation from umbilical cord blood cells (UBCs). We cultured nucleated cells isolated from UBCs. Using immunostaining, ALB-positive and CK-19-positive cells were recognized in the culture. Dual staining of ALB and CK-19 demonstrated that ALB was coexpresed with CK-19, suggesting the existence of hepatic progenitors. In this review, we consider recent studies of the differentiation of hepatocytes from nonhepatic origins, especially ES cells and umbilical cord blood.