脐带血CD34+细胞免疫磁珠分选及其意义

【目的】探讨免疫磁珠分选CD34 细胞及脐血中CD34 细胞含量的意义。【方法】脐血中分离单核细胞后,采用EasySep正选人CD34 免疫磁珠分选CD34 细胞,流式细胞仪检测分选前后CD34细胞的纯度。【结果】分选前MNC中CD34 细胞纯度为(1.14±0.71)%,分选后CD34 细胞纯度达到(91.55±4.11)%。【结论】脐血作为CD34 造血干/祖细胞的来源以及免疫磁珠方法在获得高纯度CD34 细胞中有重要的意义。     

影响外周血CD34+细胞纯化的相关因素

背景:造血干细胞具有良好的自我复制和更新的能力,CD34+细胞具备有造血干细胞的标志.目的:分析影响外周血CD34+细胞纯化的因素.方法:90例患者,经粒细胞集落刺激因子5 μg/(kg·d)动员1～3 d后,应用COBE血细胞分离机采集外周血单个核细胞液80～100 mL,经Clini MACS免疫磁珠分选技术纯化CD34+细胞.结果与结论:90例CD34+细胞平均数为(1.73±1.15)×107,经流式细胞仪分析,CD34+细胞阳性率大于80%.COBE血细胞分离机单次收集的循环血量在980～1 100 mL时,利于CD34+细胞收集(P=0.005);动员后白细胞浓度在(16～21)×109 L-1时,利于CD34+细胞收集(P < 0.05);中间细胞和淋巴细胞总比例超11%时,利于CD34+细胞收集(P < 0.05);单个核细胞液血小板小于2 100×109 L-1时,利于CD34+细胞的收集(P < 0.05);年龄小于16岁,CD34+细胞数高(P=0.003);CD34+细胞抗体的温度、磁性标记及细胞处理时离心力的大小,均有影响.结果提示,经Clini MACS免疫磁珠细胞分选技术纯化的CD34+细胞能满足临床需要,实验稳定性好,重复性好;注重相关因素的影响,可提高纯化的CD34+细胞数量.     

胎儿骨髓间质干细胞与细胞因子对脐血CD34+细胞扩增作用

目的　探讨胎儿骨髓间质干细胞对CD34 细胞体外扩增的造血支持作用。方法　体外分离、纯化胎儿骨髓间质干细胞 ;Mini MACS免疫磁珠分选 3份脐血CD34 细胞 ;建立胎儿骨髓间质干细胞与CD34 细胞共培养体系 :第 1组为单独CD34 细胞培养 ,第 2组为胎儿骨髓间质干细胞 CD34 细胞共培养 ,第 3组为细胞因子 (干细胞因子 ,白细胞介素 3,Flt3配体 ,血小板生成素 ) CD34 细胞共培养 ,第 4组为胎儿骨髓间质干细胞 细胞因子 CD34 细胞共培养。用流式细胞仪检测不同培养时间的CD34 细胞。结果　胎儿骨髓间质干细胞表达CD2 9,CD4 4 ;免疫磁珠分选CD34 细胞的平均纯度为 97.4 % ;胎儿骨髓间质干细胞 CD34 细胞共培养 2 8d ,有核CD34 细胞仍占有核细胞的 6 .4 3% ;CD34 细胞在胎儿骨髓间质干细胞、细胞因子作用下培养 2 8d ,有核细胞总数、CD34 细胞数分别被扩增 1.6 5× 10 5倍、788倍。结论　胎儿骨髓间质干细胞可有效扩增脐血造血干 /祖细胞。     

影响外周血CD34^＋细胞纯化的相关因素

背景：造血干细胞具有良好的自我复制和更新的能力,CD34^＋细胞具备有造血干细胞的标志。目的：分析影响外周血CD34^＋细胞纯化的因素。方法：90例患者,经粒细胞集落刺激因子5μg/（kg·d）动员1～3d后,应用COBE血细胞分离机采集外周血单个核细胞液80～100mL,经CliniMACS免疫磁珠分选技术纯化CD34^＋细胞。结果与结论：90例CD34^＋细胞平均数为（1.73±1.15）×107,经流式细胞仪分析,CD34^＋细胞阳性率大于80%。COBE血细胞分离机单次收集的循环血量在980～1100mL时,利于CD34^＋细胞收集（P=0.005）;动员后白细胞浓度在（16～21）×109L-1时,利于CD34^＋细胞收集（P〈0.05）;中间细胞和淋巴细胞总比例超11%时,利于CD34^＋细胞收集（P〈0.05）;单个核细胞液血小板小于2100×10^9L^-1时,利于CD34^＋细胞的收集（P〈0.05）;年龄小于16岁,CD34^＋细胞数高（P=0.003）;CD34^＋细胞抗体的温度、磁性标记及细胞处理时离心力的大小,均有影响。结果提示,经CliniMACS免疫磁珠细胞分选技术纯化的CD34^＋细胞能满足临床需要,实验稳定性好,重复性好;注重相关因素的影响,可提高纯化的CD34^＋细胞数量。     

人体外周血CD3~+CD4~-CD8~-双阴性T细胞体外扩增的实验研究

目的探讨人体外周血CD3~+CD4~-CD8~-双阴性T细胞(DNT细胞)在体外进行分离和扩增的方法。方法取健康的成人外周血20ml,应用Rosettesep抗体吸附法去除CD4~+T细胞和CD8~+T细胞;再将DNT细胞放入anti-CD3mAb包被的培养板中,并加入rhIL-2、rhIL-4,共同培养,第10天和第14天计数细胞扩增倍数及记录扩增曲线;利用Easysep免疫磁珠法纯化,采用流式细胞仪检测其纯度。结果经分选、纯化后的DNT细胞,纯度可达94%以上;体外培养第10天和第14天,DNT细胞扩增倍数分别为53倍和41倍。结论通过Rosettesep抗体吸附法及Easysep免疫磁珠法分离及纯化DNT细胞是可行的,可获得大量高纯度的DNT细胞。     

免疫磁珠法分选骨髓CD34+细胞:纯度影响因素的分析

背景:免疫磁珠分选技术已成为分选CD34+细胞的主要方法之一,在长期实验中发现诸多因素影响其分离纯度,包括磁珠与细胞孵育时干冰与碎冰的使用、磁珠与细胞孵育及分离时摇床的摇摆方向、红细胞裂解液裂解单个核细胞的使用等.目的:在免疫磁珠分选CD34+细胞过程中分别对上述影响因素进行分析改进,以提高分选CD34+细胞的纯度.设计、时间及地点:细胞学体外对照观察,于2008-07/2009-03在太原市中心医院皮肤科实验室完成.材料:骨髓象筛选正常的人骨髓29份,由太原市中心医院血液科提供,取材均经患者同意.CD34+免疫磁珠为Dynal公司产品.方法:采用淋巴细胞分离液密度梯度离心法分离培养人骨髓单个核细胞,用免疫磁珠法分选骨髓CD34+细胞,对其分选过程中的主要环节如冰块与碎冰、摇床的种类以及红细胞裂解液的使用进行方法改进.方法1:按试剂盒提供方法进行磁珠常规分选CD34+细胞.方法2:在方法1基础上,用碎冰替代冰块进行磁珠与单个核细胞孵育.方法3:在方法2基础上,用万向摇床替代水平摇床.方法4:在方法3基础上,向单个核细胞中预先加入红细胞裂解液裂解残留红细胞.主要观察指标:通过流式细胞仪检测不同方法分选出的CD34+细胞纯度.结果:随着不同环节的逐渐改进,CD34+细胞纯度由(32.7±6.6)%升至(84.5±512)%,方法1,2,3,4所分选出的CD34+细胞纯度逐渐升高,组间方差分析差异显著(F=76.209,P<0.01),Bonferroni法两两比较差异亦有非常显著性意义(P<0.01).结论:碎冰、万向摇床及红细胞裂解液的使用能有效提高免疫磁珠法分选人骨髓CD34+细胞的纯度.     

磁珠双阳性分选法在阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞体外扩增的应用

应用磁珠双阳性分选法在体外扩增阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)患的CD34 CD59 细胞，为实现PNH患进行临床自体骨髓移植(ABMT)或自体外周血干细胞移植(APBSCT)奠定基础。流式细胞术分选虽然经常用于细胞纯化，但难于满足大规模临床细胞分选的需要。本研究利用免疫磁珠系统，应用隔夜孵育法去除第一次分选时CD34 细胞吸附的磁珠，经过两次磁珠双阳性分选，从PNH患骨髓中分离出足够数量的CD34 CD59 细胞，用于体外培养扩增。结果显示：磁珠双阳性法分选的CD34 CD59 细胞与磁珠—流式细胞术二步分选法比较，在细胞生存、增殖、扩增及形成造血集落形成单位(CFU)的能力上均无显性差异。结论：磁珠双阳性分选法可能推广应用于其它双阳性或多阳性细胞的分离纯化，尤其是造血干／祖细胞的分离纯化。     

免疫磁珠法分选骨髓CD34^＋细胞：纯度影响因素的分析

背景：免疫磁珠分选技术已成为分选CD34^＋细胞的主要方法之一,在长期实验中发现诸多因素影响其分离纯度,包括磁珠与细胞孵育时干冰与碎冰的使用、磁珠与细胞孵育及分离时摇床的摇摆方向、红细胞裂解液裂解单个核细胞的使用等。目的：在免疫磁珠分选CD34^＋细胞过程中分别对上述影响因素进行分析改进,以提高分选CD34^＋细胞的纯度。设计、时间及地点：细胞学体外对照观察,于2008-07/2009-03在太原市中心医院皮肤科实验室完成。材料：骨髓象筛选正常的人骨髓29份,由太原市中心医院血液科提供,取材均经患者同意。CD34^＋免疫磁珠为Dynal公司产品。方法：采用淋巴细胞分离液密度梯度离心法分离培养人骨髓单个核细胞,用免疫磁珠法分选骨髓CD34^＋细胞,对其分选过程中的主要环节如冰块与碎冰、摇床的种类以及红细胞裂解液的使用进行方法改进。方法1：按试剂盒提供方法进行磁珠常规分选CD34^＋细胞。方法2：在方法1基础上,用碎冰替代冰块进行磁珠与单个核细胞孵育。方法3：在方法2基础上,用万向摇床替代水平摇床。方法4：在方法3基础上,向单个核细胞中预先加入红细胞裂解液裂解残留红细胞。主要观察指标：通过流式细胞仪检测不同方法分选出的CD34^＋细胞纯度。结果：随着不同环节的逐渐改进,CD34^＋细胞纯度由（32.7±6.6）%升至（84.5±5.2）%,方法1,2,3,4所分选出的CD34^＋细胞纯度逐渐升高,组间方差分析差异显著（F=76.209,P〈0.01）,Bonferroni法两两比较差异亦有非常显著性意义（P〈0.01）。结论：碎冰、万向摇床及红细胞裂解液的使用能有效提高免疫磁珠法分选人骨髓CD34^＋细胞的纯度。     

肾癌细胞株786-O中CD133~＋细胞分选及基因表达谱研究

目的探讨应用免疫磁珠细胞分选方法分离肾癌细胞株786-O中CD133＋的可能性,并分析CD133＋细胞与CD133-细胞的基因表达谱差异。方法应用免疫磁珠细胞分选技术分选肾癌细胞株786-O中的CD133＋细胞,流式细胞仪分析CD133细胞含量,提取RNA用基因芯片技术分析其基因表达谱。结果 786-O细胞中CD133＋细胞占13.70%,磁珠分选收集的CD133＋细胞阳性率可达98.46%。免疫磁珠细胞分选技术可以有效分选肾癌CD133＋细胞,基因表达谱分析可见CD133＋细胞较CD133-细胞有8种基因表达上调2倍以上,23种基因下调2倍以上。结论免疫磁珠细胞分选技术可以有效分离肾癌CD133＋细胞,CD133＋细胞与CD133-细胞表达差异基因分析为后续研究提供了新的思路。     

免疫磁珠分选骨髓衍生肝干细胞亚群c-Kil^＋lin^-

目的:利用免疫磁性细胞分选系统分离纯化骨髓衍生肝干细胞亚群c-Kit lin-。方法:实验于2006-07/08在南方医科大学实验动物中心完成。6～8周龄的SPF级纯系BALB/C雄性小鼠10只,体质量18～20g。收集小鼠股骨骨髓细胞,利用免疫磁性细胞分选系统,通过两步法分选纯化c-Kit lin-:将获取的lin-细胞悬液8℃条件下1500r/min离心10min,弃上清,按80μL/107加入Buffer重悬细胞。按20μL/107加生物素抗体磁珠,混匀,4℃冰箱孵育15min,按1mL/107加入Buffer洗细胞1次,8℃条件下1500r/min离心10min,弃上清,按500μL/108加入Buffer重悬细胞。Buffer500μL润MS柱,悬液过柱后,Buffer500μL/次洗柱3次,柱子脱离磁场,加1mLBuffer,用配套柱塞推出柱中的c-Kit lin-细胞,收集到c-kit lin-细胞,细胞计数。取2.0×106个细胞分成10等份,流式细胞仪分析c-Kit lin-细胞纯度,计算回收率,评估纯化效率,苔盼兰染色检测纯化前后的细胞活力。计算活细胞的百分率。细胞纯度和细胞回收率的计算:细胞纯度=分离产物中的阳性细胞数/分离细胞的总细胞数×100%,细胞回收率=分离产物中的阳性细胞数/起始标本阳性细胞总数×100%。结果:10只小鼠均进入结果分析。利用免疫磁性细胞分选系统分选出的骨髓衍生肝干细胞亚群c-Kit lin-细胞纯度和回收率分别为(77.98±2.34)%,75.40%,纯化前后细胞活力不受影响。结论:免疫磁性细胞分选系统能有效分选骨髓衍生肝干细胞亚群c-Kit lin-,纯度和回收率高,且不影响细胞活力。     

突变的人DHFR肿瘤耐药基因转导脐血干细胞的体外实验研究

目的探讨突变的人二氢叶酸还原酶（ｍＤＨＦＲ）耐药基因在人造血干细胞中抗甲氨蝶呤（ＭＴＸ）的效应。方法应用免疫磁珠分选系统（ＭＡＣＳ）分离纯化脐血ＣＤ３４＋细胞后，用含ｍＤＨＦＲ的逆转录病毒上清转染脐血ＣＤ３４＋细胞，采用造血干细胞集落形成实验进行转导后细胞抗ＭＴＸ分析。结果应用ＭＡＣＳ能高度纯化人ＣＤ３４＋细胞，使分选后的脐血ＣＤ３４＋细胞的纯度平均达９０％，回收率为７１．１％。在ＭＴＸ浓度为２０ｎｍｏｌ／Ｌ的条件下培养１４天，转导ｍＤＨＦＲ耐药基因的脐血干细胞集落形成数明显高于对照组（Ｐ＜０．０１），同时对ＭＴＸ的抗性提高了约２倍。结论突变的人ＤＨＦＲ耐药基因能提高人的造血干细胞对化疗药物ＭＴＸ的抗性。     

自体纯化CD34~+细胞移植治疗中/高危淋巴细胞来源恶性肿瘤的临床研究

目的分析自体纯化CD34+细胞移植治疗中/高危淋巴细胞来源恶性肿瘤的临床疗效。方法 10名中/高危组淋巴细胞来源恶性肿瘤患者行自体纯化CD34+细胞移植治疗,细胞分选采用cliniMACS系统。计算并统计分选纯度和CD34+细胞回收率,观察移植相关并发症及患者生存情况。结果纯化后CD34+细胞纯度为(87.79±3.73)%,回收率达到(65.74±10.37)%。10名患者全部顺利造血重建,感染发生率50%(5/10例),复发率为20%(2/10例)。结论利用CliniMACS系统进行外周血CD34+细胞分选,CD34+细胞纯度、回收率均满意,自体移植后造血功能重建顺利,近期疗效满意。     

人胎盘组织造血干/祖细胞的分离富集

为了探索从胎盘组织中分离富集造血干/祖细胞(HSPC)的标化流程,采用机械法加胶原酶消化法制备人胎盘组织单个细胞悬液,用羟乙基淀粉(6%HES)法从中分离出单个核细胞(MNC),再经免疫磁珠分选法分选出CD34-、CD34+CD38-、CD34+CD38+3个细胞亚群,用流式细胞术对各阶段分选细胞进行表型分析并计算分选细胞的富集度和回收率。结果表明:机械法加胶原酶消化法制备的人胎盘组织单个细胞悬液中单个核细胞(MNC)数达(12.30±3.51)×108,与脐血初始样品所含的MNC数(8.86±5.38)×108比较差异无统计学意义,而其CD34+细胞所占百分率[(3.93±2.31)%]则明显高于脐血[(0.44±0.29)%]。胎盘组织单个细胞悬液经6%HES分离后MNC和CD34+细胞的回收率分别为(45.3±11.7)%和(51.1±9.8)%;MNC经免疫磁珠分选后,其CD34+细胞的纯度和回收率分别为(73.4±14.1)%和(52.7±11.7)%。结论:本实验所建立的"机械法加胶原酶消化法-HES分离MNC-MACS分选目标细胞"的分离纯化方法可从胎盘组织获得高丰度、高富集度、高活性的HSPC,为进一步研究胎盘HSPC提供了比较经济、效果较好的分离富集方案。     

Isolation of highly purified autologous and allogeneic peripheral CD34+ cells using the CliniMACS device.

The CliniMACS CD34+ selection device was used for positive selection of apheresis products for autologous transplantation from 10 patients with malignant diseases and for allogeneic transplantation from 26 healthy donors. A total of 71 separations were performed. In 1 allogeneic donor, CD34+ progenitors were also isolated from bone marrow. Between 0.27 and 8.9 x 10(10) nucleated cells (median 4.9 x 10(10)) containing 0.09%-10.8% (median 0.67%) CD34+ progenitor cells were separated. After separation, a median number of 227 x 10(6) mononuclear cells (MNC) (51-524) were recovered, with a median viability of 99% (22%-100%) and a median purity of 97.0% (68.3%-99.7%) CD34+ cells. Depletion of T cells was extensive, with a median of 0.04% residual CD3+ cells (range <0.01%-0.92%). Residual CD19+ cells were between <0.01% and 17%, including CD34+CD19+ cells. Recovery of CD34+ cells was calculated according to the ISHAGE guidelines and ranged from 24% to 105% (median 71%). We conclude that with the CliniMACS device CD34+ cells with high purity and recovery can be isolated with concomitant effective T cell depletion in the allogeneic setting and with a high purging efficacy in the autologous setting.     

脐血和骨髓来源的CD34^＋细胞体外扩增巨核祖细胞差异的研究

本研究探讨脐血（CB）和骨髓（BM）来源的CD34^＋细胞体外扩增巨核祖细胞的差异。采用Ficoll—Hypaque分离法分离人CB及BM单个核细胞，免疫磁珠法制备CD34^＋细胞，在含血小板生成素（TPO）、TPO＋白介素11（IL—11）或TPO＋IL11＋肝素的无血清液体培养体系中培养14天。流式细胞术检测扩增产物（CD34^＋、CD41a^＋及CD34^＋CD41a^＋细胞）免疫表型、巨核细胞凋亡率及DNA含量，并以集落形成单位测定法进行粒巨-噬细胞集落形成单位（CFU—GM）、红系爆式集落形成单位（BFU—E）及巨核细胞集落形成单位（CFU—Mk）计数。结果表明：14天培养中，CB来源细胞在总细胞数、CD41a^＋及CD34^＋CD41a^＋细胞扩增倍数上均高于BM（P均〈0．05）。0天CB及BM来源CD34^＋细胞在CFU—GM、BFU—E及总的CFU—Mk的形成能力上无显著性差异（P均〉0．05），但CB来源CD34^＋细胞形成的CFU—Mk以大集落为主，其数量高于BM（P〈0．05）；在培养7、10和14天，CB及BM来源细胞CFU—GM扩增倍数无显著性差异（P均〉0．05），但CB来源细胞的BFU—E及总的CFU—Mk扩增倍数均高于BM（P均〈0．05）。14天培养中CB和BM来源巨核细胞的凋亡率无显著性差异（P均〉0．05）。DNA含量检测发现，14天培养中CB来源巨核细胞始终以2N细胞为主（比例〉90％），而BM来源巨核细胞随着培养时间延长，4N、8N及以上倍体巨核细胞比例逐渐增加。结论：CB来源CD34^＋细胞体外扩增巨核祖细胞能力高于BM，它可能是巨核祖细胞体外扩增较好的来源。     

2型重组腺相关病毒对人脐血CD34+造血干/祖细胞的转导效率研究

为探讨 2型重组腺相关病毒 (rAAV 2 )载体能否有效地转导脐血CD34+造血干 /祖细胞 ,采用rAAV 2 /GFP感染经免疫磁珠法分离的脐血CD34+造血干 /祖细胞 ,在荧光显微镜下观察GFP的表达。结果显示 ,转导 19小时后感染复数 (MOI)为 2× 10 5时 ,CD34+细胞GFP基因的表达率为 4 3%。结论 :rAAV 2能有效地转导脐血CD34+造血干 /祖细胞。     

Flow cytometric analyses of CD34+ cells with inclusion of internal positive controls

BACKGROUND: Flow cytometric measurement of CD34+ events is used to ensure the quality of human progenitor cell grafts. This study was conducted to evaluate whether the spiking of routine samples from peripheral blood and apheresis products with CD34+ positive controls is feasible. STUDY DESIGN AND METHODS: A total of 42 samples from 32 patients and one healthy donor were stained in duplicate for CD34+ cells. Before flow cytometric analysis, one tube was spiked with stabilized CD34+ cells at a defined concentration. RESULTS: Median numbers of viable CD34+ cells/µL did not differ between unspiked and spiked tubes (median 37, range 0‐714; and median 34, range 0‐719, respectively). The 95% confidence interval (CI) of the mean showed a broad overlap between these samples (41.9‐119.1 and 41.4‐119.3, respectively). In addition, the 95% CI of the mean for CD45+ cells/µL overlapped broadly and median numbers did not differ. Median viability of all CD45+ cells was significantly lower in the spiked tubes (96.75, range 64‐98.8 vs. 99.25, range 97.5‐99.8) with no overlap of the 95% CI of the mean viability. CONCLUSION: The results of this study show that spiking of routine samples with internal positive controls does not affect CD34+ cell analyses, but does support the reliability of important clinical data. The inclusion of positive controls is expedient for laboratories that perform analyses with low CD34+ numbers and laboratories that use different flow cytometric analyzers and may also become a requirement to meet statutory regulations.     

P-Selectin coated microtube for enrichment of CD34+ hematopoietic stem and progenitor cells from human bone marrow

BACKGROUND: Enrichment and purification of hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs) is important in transplantation therapies for hematologic disorders and in basic stem cell research. Primitive CD34+ HSPCs have demonstrated stronger rolling adhesion on selectins than mature CD34- mononuclear cells (MNCs). We have exploited this differential rolling behavior to capture and purify HSPCs from bone marrow by perfusing MNCs through selectin-coated microtubes. METHODS: Bone marrow MNCs were perfused through the cell-capture microtubes coated with adhesion molecules. We washed the device lumen and visualized and estimated captured cells by video microscopy. Adherent cells were eluted by high shear, calcium-free buffer, and air embolism. We used immunofluorescence staining followed by flow cytometry to analyze CD34+ HSPCs. RESULTS: CD34+ HSPC purity of cells captured in adhesion molecule-coated devices was significantly higher than the fraction of CD34+ cells found in bone marrow MNCs [mean (SE) 2.5% (0.8%)]. P-selectin-coated surfaces yielded 16% to 20% CD34+ cell purity, whereas antibody-coated surfaces yielded 12% to 18%. Although CD34+ cell purity was comparable between selectin and antibody surfaces, the total number of CD34+ HSPCs captured was significantly higher in P-selectin devices (approximately 5.7 x 10(4) to 7.1 x 10(4)) than antibody devices (approximately 1.74 x 10(4) to 2.61 x 10(4)). CONCLUSIONS: P-selectin can be used in a compact flow device to capture HSPCs. Selectin-mediated capture of CD34+ HSPCs resulted in enrichment approximately 8-fold higher than the CD34+ cell population from bone marrow MNCs. This study supports the hypothesis that flow-based, adhesion molecule-mediated capture may be a viable alternative approach to the capture and purification of HSPCs.     

Direct volumetric flow cytometric quantitation of CD34+ stem and progenitor cells

Objectives: In this study, we compared a classic single‐platform (SP) method applying beads for enumeration of CD45+ or CD34+ cells with a new device allowing direct volumetric measurements of stem and progenitor cells. Background: Following apheresis and cyropreservation, the precise enumeration of CD34+ cells as key parameter of graft quality is mandatory for the clinical course after transplantation. Currently, flow cytometry with SP technique represents the ‘gold standard’ for such determinations. Methods/Materials: Fresh samples, 14 from mobilised peripheral blood (PB), 9 from apheresis products (AP) and 13 samples from frozen‐thawed (FT) haematopoietic progenitor cell grafts, were analysed for CD34+ cells, CD45+ cells, and in frozen‐thawed samples for viability by a bead‐based flow cytometric method and in parallel by a direct, volumetric flow cytometric method. Results: Comparison of CD34+ analyses revealed a significant correlation (P < 0·01) for each material between both techniques with r = 0·95 (PB), r = 0·933 (AP) and r = 0·929 (FT). Also, for analysis of CD45+ cells µL^?1, the measured numbers evaluated with the different techniques did not significantly differ for all three materials analysed. In frozen‐thawed samples, the analysis of viability was comparable for both techniques. Conclusions: The results of this study demonstrate that a direct volumetric analysis of CD34+ cells µL^?1 or CD45+ cells µL^?1 is feasible. This technique represents a simple and economical approach for standardisation of progenitor and stem cell analyses.