PNH患者骨髓CD34^＋CD59^＋细胞体外扩增及植入体内重建造血的活性研究

本研究应用BALB／c裸鼠为移植模型探讨阵发性睡眠性血红蛋白尿症（paroxysmal nocturnal hemoglobin—uria，PNH）患者CD34^＋CD59^＋的增殖和重建造血的能力，为实现PNH患者自体骨髓移植或自体外周血造血干细胞移植提供实验依据。利用免疫磁珠双阳性分选法，从正常人及PNH患者骨髓中分离出两组CD34^＋CD59^＋细胞，分别进行体外扩增，并将体外扩增的正常人和PNH患者骨髓CD34^＋CD59^＋细胞分别输注给接受亚致死剂量照射的BALB／c裸鼠。应用流式细胞技术和DNA检测技术检测受鼠骨髓、脾脏和外周血中人CD45^＋细胞。结果表明：PNH组的CD34^＋CD59^＋细胞在体外生存、扩增能力似弱于正常人对照组。但CD34^＋CD59^＋细胞输注给受鼠后6周，在受鼠骨髓、脾脏和外周血中可检测到人CD45^＋细胞，PNH组受鼠CD45^＋细胞水平与正常人对照组相比，无统计学差异。结论：PNH患者CD34^＋CD59^＋细胞仍具有同正常人CD34^＋CD59^＋细胞相同的生物特性，能体外扩增并能保持正常干／祖细胞的特性。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓造血干/祖细胞体外单个细胞培养

目的 研究阵发性睡眠性血红蛋白尿症（PNH）患者单个不同表型骨髓造血干／祖细胞体外生长特性。方法 用免疫磁珠富集C34^ 细胞，用流式细胞仪自动分选系统将患者CD34^ CD59^ 和CD34^ CD59^-造血干／祖细胞单个分选入96孔培养板，进行单个细胞培养，观察不同细胞各个生长指标，并与正常对照细胞比较。结果 ①单个细胞培养条件下，患者CD34^ CD59^-细胞在细胞发生分裂（细胞数≥2个）的比率、形成集落（细胞数≥50）的比率及扩增的总数（所有细胞发生分裂的孔的细胞数的总和）都超过了其CD34^ CD59^ 细胞（P＜0．05）。②PNH CD34^ CD59^-细胞单个细胞扩增的数目及细胞扩增的总数代于正常对照（P＜0．05）。③PNH CD34^ CD59^ 细胞在较大集落（细胞数≥500）形成、单个细胞扩增的数目及细胞扩增总数均低于正常对照（P＜0．01）。④患者异常与正常表型细胞单个细胞次级集落的形成能力差异无显著性（P＞0．05），但都明显低于正常对照。（P＜0．001）。结论 在单个细胞培养条件下，患者异常表型的造血干／祖细胞较其正常表型的造血干／祖细胞具有一定的生长优势。但它们与正常骨髓细胞相比，都存在一定的生长缺陷，正常表型细胞的缺陷尤为明显。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者外周血T淋巴细胞亚群及活化分子表达的研究

目的　探讨阵发性睡眠性血红蛋白尿症 (PNH)患者T淋巴细胞的功能及活化状态与PNH临床的关系。方法　应用流式细胞术及免疫磁珠分选术 ,测定了 18例PNH患者外周血单个核细胞 (PBMNC)及CD59+ 和CD59-PBMNC中CD3 + 、CD4+ 及CD8+ 细胞表型 ,并测定了新诊断的未经治疗的 6例PNH患者外周血中NK细胞及CD4+ CD2 8+ /CD4+ 、CD8+ CD2 8+ /CD8+ 、CD4+ HLR DR+ /CD4+ 、CD8+HLR DR+ /CD8+ 及CD8+ CD3 8+ /CD8+ 淋巴细胞表面分子表达比值。结果　PNH患者PBMNC中CD3 +CD8+ /CD3 + CD4+ 细胞比值增加 ,为 1.2 2± 0 .5 1,对照组为 0 .86± 0 .2 7,两者比较 ,差异有显著性 (P <0 .0 5 )。分选后PNH患者CD59-PBMNC中CD3 + CD8+ /CD3 + CD4+ 细胞比值增加 ,为 2 .31± 1.5 6 ,CD59+PBMNC为 0 .6 2± 0 .2 7,两者比较 ,差异有统计学意义 (P <0 .0 1)。CD3 + CD8+ /CD3 + CD4+ 细胞比值与骨髓衰竭 (BMF)的级差相关分析呈正相关。PNH患者CD4+ CD2 8+ /CD4+ 细胞比值明显减少 ,为 0 .5 2±0 .11(对照为 1.0 0± 0 .0 6 ) ,而CD8+ HLR DR+ /CD8+ 增加 ,为 0 .4 5± 0 .2 6 (对照为 0 .10± 0 .0 6 )。结论　PNH患者CD3 + CD8+ /CD3 + CD4+ 细胞比值增加 ,病变表型细胞更易发生在CD8+ 细胞群中。CD4+ 细胞中CD2 8+ 辅助刺激因     

评估骨髓、外周血红细胞和粒细胞CD55、CD59检测在PNH诊断中的应用

目的评估骨髓红细胞、粒细胞CD55、CD59检测对阵发性睡眠性血红蛋白尿（paroxys—realnoturnal hemoglobinura,PNH）的诊断价值。方法收集107例PNH及其他-系至三系血细胞减少患者骨髓及外周血标本,采用流式细胞仪检测其红细胞、粒细胞CD55、CD59表达缺失情况。通过受试者工作特征（receiverOperatingcharacteristic,ROC）曲线评价各指标对PNH的诊断效能,并采用线性内插法计算其诊断PNH的诊断点。结果除PNH外,骨髓增生异常综合征、再生障碍性贫血、白血病及各类贫血患者的骨髓、外周血CD55-、CD59-红细胞、粒细胞比例,大多数均在5％以下。各疾病组间各指标比例差异均有统计学意义（P均〈0．05）。PNH患者各指标比例均较其他疾病患者高,且差异均有统计学意义（P均〈0．05）。造血干细胞疾病组与非造血干细胞疾病组的骨髓CD55-粒细胞比例差异无统计学意义（P〉0．05）。骨髓CD55-、CD59-红细胞、粒细胞比例诊断PNH的ROC曲线下面积均达0．700以上。各指标对PNH的诊断点分别为骨髓CD55红细胞4．81％,骨髓CD59-红细胞4．25％,骨髓CD55-粒细胞49．43％,骨髓CD59粒细胞4．63％,外周血CD55-红细胞3．99％,外周血CD59红细胞3．25％,外周血CD55-粒细胞4．17％,外周血CD59-粒细胞4．71％。结论骨髓红细胞、粒细胞CD55、CD59的诊断价值优于外周血,可以作为诊断PNH的辅助手段。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者血清对CD34+细胞生长的影响

为探讨阵发性睡眠性血红蛋白尿症（PNH）患血清对造血干／祖细胞增殖的影响，应用单个细胞培养及液体、半固体群体细胞培养方法，将病人血清与正常人血清分别加入培养体系中，观察不同血清对正常人及病人正常及异常表型的CD34^ 细胞的直接影响。发现在单个细胞培养条件下，加入PNH血清与加入正常人血清时，正常人及PNH两种表型的CD34^ 细胞在细胞分裂、集落形成、较大集落形成的比例、单个细胞扩增能力及细胞总数诸方面均无明显差别（P＞0．05）。在半固体集落培养时，加入病人或正常人血清，对正常人及病人正常表型CD34^ 细胞的集落形成能力的影响无显差异（P＞0．05），而病人CD34^ CD59^-造血干／祖细胞的集落形成率在加入病人血清组高于加入正常人血清组（P＜0．05）。结果说明，在单个细胞及群体细胞液体培养条件下，加入病人血清与加入正常人血清，对正常人以及病人正常或异常表型造血干／祖细胞和长的影响无显差别，而在半固体培养条件下，则显示病人血清更有利于患的异常表型CD34^ 细胞的集落生成。     

裸鼠腹腔输注体外扩增的阵发性睡眠性血红蛋白尿症病人骨髓CD34+CD59+细胞的研究

应用BALB／c裸鼠为移植模型，将在体外扩增的阵发性睡眠性血红蛋白尿症（paroxysmal nocturnal hemoglobinuria，PNH）病人的CD34^＋CD59^＋细胞进行移植。研究其增殖能力和重建造血的情况，为实现PNH患者进行临床自体骨髓移植（ABMT）或自体外周血干细胞移植（APBSCT）奠定基础。本研究利用免疫磁珠双阳性分选法。从PNH患者骨髓中分离出足够数量的CD34^＋CD59^＋细胞进行体外扩增，并将体外扩增的细胞输注给接受亚致死剂量照射的BALB／c裸鼠。结果显示：移植6周后，用流式细胞术和DNA检测方法均检测到裸鼠骨髓、脾脏和外周血中人的CD45^＋细胞，而接受PNH病人CD34^＋CD59^＋细胞移植后的裸鼠，其血常规指标有一定恢复，但并未完全恢复。结论：PNH病人骨髓CD34^＋CD59^＋细胞体外扩增后仍能保持造血祖细胞的生物特性，在照射的裸鼠中能重建造血。     

脐血造血干/祖细胞研究进展

脐血和骨髓均富含造血干/祖细胞,但二者在造血干/祖细胞的含量上存在差别。脐血中各CD34~+细胞亚群有着独特的免疫表型。脐血造血干/祖细胞能在体外扩增,扩增后的CD34~+细胞能在SCID小鼠体内重建造血。由脐血CD34~+细胞可以生成淋巴细胞和内皮细胞。脐血造血干/祖细胞移植与骨髓造血干/祖细胞移植在患者的生存率、复发率及移植免疫排斥等方面均具有可比性,有着极大的潜在价值。     

脐血造血干/祖细胞部分归巢受体功能缺陷的研究

本研究旨在了解来源于脐血造血干细胞表面部分归巢受体(homing receptor)的功能缺陷并探讨体外干预的效果和可行性。用流式细胞术对来源于脐血的CD34+造血干/祖细胞表面的P、E选择蛋白配体活性基团表达、CD26的表达及活性进行检测,同时检测骨髓和外周血作为对照。采用岩藻糖基转移酶体外处理脐血CD34+造血干/祖细胞并检测其表面选择蛋白配体活性基团的表达水平。结果表明,CD26在脐血、骨髓及外周血的CD34+造血干/祖细胞表面的表达率分别为:(7.62±0.63)%,(6.35±0.89)%和(6.18±0.91)%(p0.05),其活性分别为:67.15U/1 000个细胞(1U=1pmol/min),26.85U/1 000个细胞和20.95U/1 000个细胞,脐血CD34+造血干/祖细胞表面CD26的活性明显高于其它两者(p0.001)。P选择蛋白配体活性基团在脐血、骨髓和外周血CD34+造血干/祖细胞表面的表达率分别为:(83.46±6.33)%,(15.65±0.89)%和(80.17±6.85)%;E选择蛋白配体活性基团的表达率为:(25.31±1.03)%,(26.34±0.89)%和(29.79±1.78)%(p0.05)。脐血CD34+细胞体外行岩藻糖基化工程后,E选择蛋白配体活性基团表达率由(25.31±1.03)%提高至(63.23±1.08)%。结论:3种不同来源CD34+造血干/祖细胞表面的CD26分子表达无明显差别,但其活性不一,脐血的CD34+造血干/祖细胞CD26活性最高,骨髓的次之,外周血的最低。P选择蛋白配体活性基团在脐血及外周血CD34+造血干/祖细胞表面的表达无明显差别,但在骨髓干细胞表面表达偏低。体外经岩藻糖基化工程处理的脐血CD34+造血干/祖细胞可明显上调其表面E选择蛋白配体活性基团的表达。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞的体外扩增

目的研究阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)患者CD34+CD59+细胞的分离、纯化及其体外扩增的条件和性能,为探索PNH新的治疗途径提供实验依据.方法利用免疫磁珠-流式细胞仪二步分选法,从PNH患者骨髓中分选出CD34+CD59+细胞,然后对CD34+CD59+细胞在不同造血生长因子组合条件下,进行体外扩增培养2周.结果体外扩增的最适宜的生长因子组合为SCF+IL-3+IL-6+FL+Tpo+Epo,最适宜的扩增时机为第7天,在此条件下,CD34+CD59+细胞的扩增倍数为22.42±3.73倍.CD34+CD59+细胞在扩增以后,仍保持较好的形成集落形成单位的能力,但是其向多系分化的潜能有所下降.结论 PNH患者CD34+CD59+细胞能够进行体外扩增.按照最佳扩增条件,在对PNH患者进行自体骨髓移植或自体外周血干细胞移植时有一定的应用价值.     

磁珠双阳性分选法在阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞体外扩增的应用

应用磁珠双阳性分选法在体外扩增阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)患的CD34 CD59 细胞，为实现PNH患进行临床自体骨髓移植(ABMT)或自体外周血干细胞移植(APBSCT)奠定基础。流式细胞术分选虽然经常用于细胞纯化，但难于满足大规模临床细胞分选的需要。本研究利用免疫磁珠系统，应用隔夜孵育法去除第一次分选时CD34 细胞吸附的磁珠，经过两次磁珠双阳性分选，从PNH患骨髓中分离出足够数量的CD34 CD59 细胞，用于体外培养扩增。结果显示：磁珠双阳性法分选的CD34 CD59 细胞与磁珠—流式细胞术二步分选法比较，在细胞生存、增殖、扩增及形成造血集落形成单位(CFU)的能力上均无显性差异。结论：磁珠双阳性分选法可能推广应用于其它双阳性或多阳性细胞的分离纯化，尤其是造血干／祖细胞的分离纯化。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症临床缓解患者仍可查出异常血细胞

目的观察临床完全缓解的阵发性睡眠性血红蛋白尿症（ＰＮＨ）患者体内是否仍有异常造血细胞并探讨其临床意义。方法用免疫荧光标记及流式细胞术检测患者骨髓有核细胞、外周血红细胞ＣＤ５９抗原表达及骨髓ＣＤ３４＋造血干／祖细胞数。结果２例临床完全缓解的ＰＮＨ患者体内仍呈正常造血细胞与异常克隆并存状态,但与未缓解ＰＮＨ患者相比,完全缓解患者外周血红细胞、骨髓单个核细胞及ＣＤ３４＋细胞中均以正常的ＣＤ５９＋细胞为主,表明体内异常克隆造血优势已经消失。结论临床完全缓解的ＰＮＨ患者仍可有残存的异常克隆;ＰＮＨ达到临床完全缓解并不一定需要体内异常克隆的彻底消灭;ＰＮＨ患者体内异常克隆的造血优势在一定条件下是可以消失的。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者外周血淋巴细胞增殖、杀瘤活性及其对正常表型骨髓造血细胞的影响

阵发性睡眠性血红蛋白尿症 (PNH)克隆可能由于缺乏GPI锚连蛋白而逃脱免疫攻击 ,形成生长优势。本研究测定PNH患者淋巴细胞增殖反应及对K5 6 2细胞的杀伤作用 ,并与正常对照比较 ,观察其淋巴细胞功能。采用体外液体培养体系 ,应用免疫磁珠技术分选PNH患者骨髓CD34+ 及CD34- 细胞 ,分别向 2组细胞及对照细胞加入自身CD5 9+ 或CD5 9- 淋巴细胞及其培养上清液、外源性IFN γ及IL 2。培养 10天后 ,测定骨髓细胞中PNH细胞 (CD5 9- )百分数 ,观察淋巴细胞对骨髓中CD34+ 及CD34- 细胞中PNH细胞含量的影响。研究结果表明 ,对PHA的增殖反应 ,PNH患者未分选的淋巴细胞与健康对照比较、PNH患者自身CD5 9+ 与CD5 9- 淋巴细胞之间比较均无统计学差异 ,但对K5 6 2细胞的杀伤作用PNH患者未分选的淋巴细胞明显低于健康对照组 ,分别为 (5 0 .0 0± 2 8.6 7) %及 (76 .13± 10 .15 ) % (P <0 .0 5 ) ,而PNH患者CD5 9- 淋巴细胞与CD5 9+ 淋巴细胞之间无显著性差异。PNH患者骨髓细胞中加入自身CD5 9- 淋巴细胞或其培养上清液、CD5 9+ 淋巴细胞或其培养上清液、外源性IFN γ和IL 2培养后 ,CD5 9+ 细胞均有不同程度下降 ,除CD5 9+ 淋巴细胞组外 ,其他各组CD5 9+ 细胞下降与培养前比较有显著性差异 (P <0 .0 5 ) ,IFN γ及IL 2组     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓CD34+CD59+细胞与CD34+CD59-细胞生物学性能的研究

目的 探讨阵发性睡眠性血红蛋白尿症(PNH)患CD34^ CD59^ 细胞的特性及PNH克隆呈优势造血的可能原因，以探索PNH发病的内在机制。方法 用免疫磁珠吸附法富集纯化CD34^ 细胞，再用流式细胞仪分选出PNH患的CD34^ CD59^ 细胞、CD34^ CD59^ 细胞及正常对照CD34^ 细胞。分别进行体外扩增液体培养2周，并对扩增前、后的细胞进行半固体培养。结果 ①PNH患CD34^ CD59^ 细胞与正常对照CD34^ 细胞形成集落形成单位(CFU)均在第7天达到扩增高峰，并且扩增后的细胞仍能保持CD59抗原，无GPI锚连蛋白的丢失。②正常对照的CD34^ 细胞在生存、增殖、形成CFU及扩增能力上均明显强于FHN患的CD34^ CD59^ 细胞及CD34^ CD59^-细胞.③PNH患CD34^ CD59^ 细胞及CD34^ CD59^ 细胞体外半固体培养，其形成CFU的能力无明显差异。④PNH患CD34^ CD59^ 细胞及CD34^ CD59^ 细胞在SCF IL3 IL6 FL Tpo及SCF IL3 IL6 FL Tpo Epo组合下液体培养，其生存、增殖、扩增等能力上均无明显差异。但在SCF IL3 IL6 FL Tpo Epo GM-CSF组合下液体培养，CD34^ CD59^ 细胞的生存、增殖、扩增能力均明显强于CD34^ CD59^ 细胞。结论 ①正常对照的CD34^ 细胞在生存、增殖、形成CFU及扩增能力上均明显强于PNH患的CD34^ CD59^ 细胞。②PNH患CD34^ CD59^ 细胞及CD34^ CD59^ 细胞体外半固体培养，以及在SCF IL3 IL6 LF Tpo及SCF IL3 IL6 FL Tpo Ep组合下液体培养，其生存、增殖、扩增等能力上均无明显差异，说明CD34^ CD59^ 细胞在造血能力上并无内在的优势。GM—CSF或许是使PNH克隆呈造血优势的原因之一。     

阵发性睡眠性血红蛋白尿症患者骨髓中正常及异常造血干/祖细胞含量分析

OBJECTIVE: To explore the contributive role of CD34+ cell amount in pathogenesis of clonal dominance in paroxysmal nocturnal hemoglobinuria (PNH). METHODS: Bone marrow nuclear cells (BMNCs) were doubly labeled by PE-conjugated anti-CD59 monoclonal antibody (McAb) and FITC-conjugated anti-CD34 McAb, and CD34+ cells contained in different cell populations were determined by flow cytometry. RESULTS: 1. CD34+ cells mainly appeared in window A (containing mainly of lymphocytes) and window D (composed of blasts, other immature cells and monocytes) in both normal controls and PNH patients. 2. The numbers of CD34+ cells in normal controls were (3,701 +/- 896)/10(5) cells and (11,373 +/- 1,574)/10(5) cells in window A and window D, respectively. Compared with normal controls, PNH patients possessed significantly decreased number of CD34+ cells [(1,215 +/- 749)/10(5) cells and (6,420 +/- 2,337)/10(5) cells in window A and window D, respectively]. 3. In normal controls, nearly all CD34+ cells in windows A and D expressed CD59 antigen (99.2% +/- 1.0% in A and 98.7% +/- 0.8% in D), whereas in PNH patients, the CD34+ cells clearly showed two immunophenotypes of CD34+CD59+ and CD34+CD59- with the latter being predominant in both window A and window D(CD59- cells constituting 79.3% +/- 15.5% and 85.9% +/- 7.8% of CD34+ cells, respectively). 4. The amounts of CD34+ cells in CD59+ populations [(463 +/- 276)/10(5) cells in window A and (3,841 +/- 1,188)/10(5) cells in window D] reduced to a greater extent than that in CD59- population [(2,603 +/- 2,084)/10(5) cells in window A and (7,105 +/- 2,739)/10(5) cells in window D]. CONCLUSION: Hematopoietic stem/progenitor cells in BMNCs of PNH patients are markedly decreased. Reduction of CD34+ cells in CD59+ cell population is even more obvious than that in CD59- population. The dominance of the abnormal clone in hematopoiesis might be a relative one in the setting of severely impaired normal hematopoiesis.     

No discrepancy between in vivo gene marking efficiency assessed in peripheral blood populations compared with bone marrow progenitors or CD34+ cells

Reports of 1- to 2-log higher gene transfer levels in purified CD34+ cells or marrow CFU compared with levels in mature circulating blood cells after transplantation of retrovirally transduced primitive human hematopoietic cells have resulted in concern that transduced progenitors do not contribute proportionally to ongoing hematopoiesis (Kohn et al., 1995; Brenner, 1996). To study the issue in a relevant large animal, we analyzed samples of mature blood cells, marrow CD34-enriched cells and marrow CD34-depleted cells, and marrow CFU from a cohort of 11 rhesus transplanted with retrovirally transduced cells and followed for up to 5.5 years. They were transplanted with CD34-enriched bone marrow (BM) or G-CSF/SCF-mobilized peripheral blood (PB) cells transduced with vectors containing either neo, human glucocerebrosidase, or murine adenosine deaminase genes. There were no significant differences between the levels of vector sequences found in BM CD34+ cells, BM CD34- cells, PB granulocytes, or PB mononuclear cells (MNCs) in any animal. In four animals transplanted with SCF/G-CSF-primed BM cells and analyzed 3-6 months posttransplantation, the percentage of CFU containing the neo vector appeared to be 1 log higher than the representation of marked cells in the PB of these animals, but this discrepancy did not persist at time points greater than 6 months posttransplantation. The level of CFU marking was no higher than PB granulocyte or MNC marking at any time points in the other animals. Low levels of mature gene-modified cells probably reflect poor transduction of repopulating stem cells, not a block in differentiation or specific immune rejection of mature cells. This study represents the longest follow-up of primates transplanted with transduced hematopoietic cells, and it is encouraging that the levels of vector-containing cells appear stable for up to 5 years.