表达幽门螺杆菌尿素酶B亚单位基因减毒鼠伤寒沙门疫苗菌的构建和鉴定

目的构建表达幽门螺杆菌(Helicobacter     

携带幽门螺杆菌hpaA基因减毒鼠伤寒沙门疫苗菌的构建

构建携带幽门螺杆菌（H.pylori)hpaA基因的重组活减毒鼠伤沙门疫苗菌。方法：用分子生物学方法将hpaA基因克隆入原核表达质粒pTrc99A,并进行核苷酸测序,重组质粒经再导入活减毒鼠伤寒沙门菌SL3261,提取重组菌苗质粒,聚合酶链反应（PCR）和酶切鉴定,筛选目的克隆。结果：经PCR和酶切证实,构建了携带hpaA基因（560bp)的重组核表达质粒pTrc99A-hpaA,并将后者成功转化活减毒鼠伤寒沙门菌SL3261。结论：S我建并鉴定了携带H.pylorihpaA基因的重组活减毒鼠伤寒沙门疫苗菌,为探索制备H.ylori口服份活疫苗奠定了基础。     

多组分重组减毒沙门疫苗菌对幽门螺杆菌感染的免疫保护作用

目的　利用人类幽门螺杆菌 (Helicobacterpylori,Hp)感染的小鼠模型研究多组分重组减毒沙门疫苗菌对幽门螺杆菌感染的免疫保护作用。方法　将二级C5 7BL/ 6小鼠随机分成 6组 ,通过灌胃方法分别给予生理盐水 (A组 )、PBS(B组 )、减毒鼠伤寒沙门菌SL32 6 1(C组 )、重组减毒鼠伤寒沙门菌pTrc99A -ureB +pGSTag -katA(D组 )、重组减毒鼠伤寒沙门菌pTrc99A -ureB +pTrc99A -HPaA(F组 )及重组减毒鼠伤寒沙门菌 pTrc99A -ureB +pGSTag -katA +pTrc99A -HPaA(F组 )。免疫后 4周 ,予Hp进行攻击 (A组不攻击 )。攻击菌量 10 7CFU/只 ,灌胃 2次 ,每日 1。再 4周后处死动物 ,取胃组织分别行尿素酶试验、改良Giemsa染色及定量细菌培养 ,观察Hp定植情况。行HE染色观察胃粘膜组织炎症情况。取脾组织行淋巴细胞增殖试验。结果　A组小鼠Hp定植密度为 0 ,B组为 9 4 9× 10 6CFU/ g胃组织 ,C组为 1 4 2× 10 6CFU/ g胃组织 ,D组、E组和F组小鼠分别为 2 92× 10 5CFU/g、5 5 1× 10 5CFU/g和 2 16× 10 5CFU/g胃组织 ,C组、D组、E组和F组与A组和B组相比定植密度均明显降低 (P <0 0 5 )。免疫组与对照组胃粘膜均无明显炎症反应。免疫组脾淋巴细胞增殖试验阳性。结论　口服多组分重组减毒沙门疫苗菌对小鼠Hp感染具有一定免     

重组减毒沙门菌尿素酶B亚单位和过氧化氢酶疫苗治疗幽门螺杆菌感染的实验研究

目的　利用人类幽门螺杆菌 (Hp)感染的小鼠模型研究重组减毒沙门菌尿素酶B亚单位和过氧化氢酶疫苗在治疗Hp感染中的作用。 方法　将 30只二级C5 7BL/ 6小鼠随机分成 3组 ,通过灌胃方法每只小鼠均用活力良好的Hp菌株隔日攻击 2次。在第二次Hp攻击后 4周 ,分别给予重组减毒沙门菌尿素酶B亚单位疫苗 (A组 )、过氧化氢酶疫苗 (B组 )和生理盐水 (C组 )灌胃 1次 ,4周后处死动物 ,取胃组织分别行尿素酶试验、改良Giemsa染色及定量细菌培养 ,观察Hp定植情况。行HE染色观察胃黏膜组织炎症情况。取脾组织行淋巴细胞增殖试验。结果　C组小鼠Hp定植密度为 1.92× 10 6CFU/g胃组织 ,A组和B组小鼠分别为 1.5 8× 10 5CFU/g和 4 .88× 10 5CFU/g胃组织 ,两个治疗组的定植密度明显降低 (P <0 .0 5 )。治疗组与对照组胃黏膜均无明显炎症反应。治疗组脾淋巴细胞增殖试验阳性。结论　重组减毒沙门菌尿素酶B亚单位疫苗和过氧化氢酶疫苗对Hp感染有治疗作用。     

幽门螺杆菌热休克蛋白的致病机理研究

幽门螺杆菌(H．pylori)与胃部疾患关系密切并可能与许多胃外疾病有关。热休克蛋白(HSP)是一类广泛分布于生物界、具有高度保守性的蛋白。H．pylori能产生多种HSP。本就H．pylori表达的HSP的致病机理作一简要综述。     

表达幽门螺杆菌NAP蛋白的减毒沙门疫苗菌株预防幽门螺杆菌感染

目的建立表达幽门螺杆菌(Helicobacterpylori,Hp)中性粒细胞活化蛋白(Hp-NAP)的减毒沙门疫苗菌,并利用人类幽门螺杆菌感染的小鼠模型研究疫苗菌对Hp感染的免疫保护作用。方法利用分子克隆技术构建携带Hp-NAP基因的重组原核表达质粒pTrc99A-NAP,经PCR及酶切鉴定后测定其基因序列,并与美国国立医学图书馆基因文库中相关序列的同源性进行比较。重组质粒pTrc99A-NAP转化减毒伤寒沙门菌SL3261,培养后筛选阳性菌落,抽提质粒进行PCR及酶切鉴定。表达的Hp-NAP蛋白用SDS-PAGE和West-blotting进行鉴定,用薄层扫描分析蛋白含量。C57BL/6小鼠随机分成4组,分别灌胃给予生理盐水(A组)、减毒鼠伤寒沙门菌SL3261(B组)、携带pTrc99A的SL326组(C组)、携带pTrc99A-NAP的SL326组重(D组)。免疫后4周,予Hp攻击,攻击菌量107CFU/只,灌胃2次,每日1次。攻击4周后处死动物,取胃组织分别行改良Giemsa染色及定量细菌培养,观察Hp定植情况。结果核苷酸序列测定及同源性分析证实,克隆的Hp-NAP基因与GenBank中相关序列的同源性为98%(397/402),氨基酸序列的同源性为98%(131/133)。pTrc99A-NAP转化的减毒沙门菌,可表达Mr约15000的Hp-NAP蛋白,表达量约占菌体蛋白量的37·5%;表达的新生蛋白能与小鼠抗Hp血清特异性反应,具有良好的免疫原性。同空白对照组、SL3261组和SL3261(pTrc99A)组相比,表达Hp-NAP的疫苗株组实验动物的胃组织Hp定植密度明显下降(P<0·05)。结论成功构建表达Hp-NAP的减毒沙门疫苗菌;重组疫苗菌对小鼠Hp感染具有一定免疫预防作用,可作为未来多组分重组减毒沙门疫苗菌的侯选菌株之一。     

重组幽门螺杆菌疫苗免疫保护机制的研究

目的 研究以减毒鼠伤寒沙门菌为载体构建的重组幽门螺杆菌（Hp)疫苗诱导小鼠产生保护性免疫应答的机制。方法 将表达Hp尿素酶B亚单位（UreB)，黏附素（HpaA)及尿素酶B亚单位/黏附素融合蛋白（UreB/HpaA)的减毒鼠伤寒沙门菌（Salmonella typhimurium)给小鼠分别灌胃，另设单纯减毒鼠伤寒沙门菌和生理盐水免疫鼠为对照，免疫4周后以Hp活菌攻击，观察各组小鼠的免疫保护率，攻击前后血清中抗Hp抗体IgC1,IgG2a和IgA的变化。小鼠脾脏和胃黏膜中γ干扰素（IFN-γ）和白介素-4（IL-4）mRNA表达变化。结果 UreB,HpaA及UreB/HpaA组的免疫保护率分别为50%，41%和77%，和生理盐水组相比，攻击前各鼠伤寒沙门菌免疫组IgG1,IgG2a均轻度升高而IgA无变化，攻击后各鼠伤寒沙门菌免疫组IgG2a升高显著并以UreB/HpaA组为最，而IgG1和IgA的升高无统计学差异。胃黏膜攻击前生理盐水组无IFN-γ表达，其余各组均100%表达；攻击后生理盐水组IFN-γ轻度表达，但仍明显低于各鼠伤寒沙门菌免疫组，IL-4在攻击前后各组均无表达，脾IFN-γ和IL-4在所有组攻击前后均全部表达。结论 以减毒鼠伤寒沙门菌为载体构建的Hp疫苗在小鼠体内诱导出以TH1反应为主的保护性免疫应答。     

幽门螺杆菌热休克蛋白A亚单位编码基因的克隆与序列分析

目的 幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)热休克蛋白A亚单位的编码基因(hspA)克隆和序列分析，为H.pyiori基因工程疫苗的研究奠定基础。方法 应用PCR方法获得国内分离H.pylori菌株MEI，HP27和国际标准参考株H.pylori的hspA基因，通过定向克隆的方法分别插入克隆载体pNEB193中，用质粒酶切电泳和特异PCR方法鉴定重组质粒。克隆基因经测序后进行核苷酸和氨基酸的同源性比较。结果 重组质粒经双酶切后得到0．35kb的hspA基因片段，特异PCR可扩增出hspA基因片段，证实H.pylori hspA基因的重组克隆质粒构建成功。经测序，国内分离HpMEL-HP27的hspA基因全长357bp(Genbank收录号：AY295084)，编码由118个氨基酸残基组成的肽链，hspA基因序列与GenBank公布的H.pylorl相应基因同源性高达95．20％～97．48％，氨基酸序列同源性在95．76％～97．46％之间。结论 克隆了H．pylori菌株MEL-HP27的hspA基因，其核酸序列与国际参考株NCTC11637同源性为97．48％。     

幽门螺杆菌热休克蛋白60核酸疫苗的构建和免疫原性鉴定

背景:核酸疫苗是新兴的第三代疫苗。目前幽门螺杆菌(H.pylori)疫苗的研究主要集中在减毒、灭活和亚单位疫苗方面,有关H.pylori核酸疫苗的研究罕见报道。目的:构建含H.pylori热休克蛋白60(hsp60)基因的核酸疫苗,并鉴定其表达蛋白的免疫原性。方法:抽提H.pylori标准菌株CCUG17874基因组DNA为模板,应用聚合酶链反应(PCR)扩增hsp60基因并插入测序载体pUCmT,测定插入的hsp60基因的核苷酸序列。通过一系列酶切、连接反应将hsp60基因克隆入真核表达载体pIRES,然后转化入感受态大肠杆菌DH5α,筛选阳性克隆,行酶切和PCR鉴定。采用脂质体法将所构建的重组载体pIRES鄄hsp60转染真核细胞COS鄄7,蛋白质印迹法(Western blotting)检测pIRES鄄hsp60表达蛋白的免疫原性。结果:以H.pylori基因组DNA为模板,PCR扩增出约1 640 bp的hsp60基因片断,测序结果表明其与GenBank中H.pylorihsp60原序列的同源性达98%。酶切和PCR鉴定结果证实hsp60基因已克隆入真核表达载体pIRES,成功构建了含hsp60基因的H.pylori核酸疫苗pIRES鄄hsp60。蛋白质印迹法检测显示经pIRES鄄hsp60转染的COS鄄7细胞在约60 kDa(1 Da=0.992 1 u)处出现特异性蛋白条带。结论:成功构建了具有免疫原性的含hsp60基因的H.pylori核酸疫苗,为进一步探索其免疫作用奠定了     

人幽门螺杆菌热休克蛋白A亚单位的基因克隆及序列分析

新近研究表明:幽门螺杆菌(Ｈｐ)的尿素酶Ｂ亚单位(ＵｒｅＢ)、热休克蛋白Ａ亚单位(ＨｓｐＡ)和空泡细胞毒素(ＶａｃＡ)均是有效的抗原成分。由于Ｈｐ属微需氧菌,培养条件要求高,难以获得大量天然来源的ＵｒｅＢ,ＨｓｐＡ,ＶａｃＡ等成分。我们运用ＰＣＲ技术克隆ＨｐｈｓｐＡ基因,并构建载体对其进行序列分析。材料与方法一、材料质粒ＰｉｎＰｏｉｎｔＴＭＸａ3购自Ｐｒｏｍｅｇａ公司。大肠杆菌ＪＭ109及Ｈｐ菌株系本室保存菌种。ＥｃｏＲＶ、ＨｉｎｄⅢ(宝灵曼公司),Ｔ4连接酶,ＴａｑＤＮＡ聚合酶和ＰＣＲ分子量标准(华美生物工程公司)。…     

表达幽门螺杆菌尿素酶B亚单位的减毒鼠伤寒杆菌口服疫苗的制备

目的制备抗幽门螺杆菌(Hp)尿素酶B亚单位(UreB)减毒鼠伤寒杆菌活菌疫苗,观察其免疫效果.方法构建表达UreB的原核表达载体PTc01-UreB并转化减毒鼠伤寒杆菌SL3261,得到重组菌SL3261/PTc01-UreB.应用抗Hp菌体蛋白兔血清行Western-blot检测UreB在SL3261中的表达.将SL3261/PTc01-UreB口服免疫Balb/c小鼠,12周后应用ELISA检测肠液和血清中的特异性抗体反应.SL3261/PTc01-UreB在Luria-Bertani培养液中连续传代60代以确定其稳定性.结果成功构建PTc01-UreB原核表达载体.Western-blot显示,其转化减毒鼠伤寒杆菌SL3261后能表达相对分子质量约61×103的蛋白,与HpUreB亚单位相符,具有抗原性.口服免疫小鼠后,在肠液和血清中可分别检测到针对UreB的特异性IgA和IgG抗体.体外连续培养60代未见PTc01-UreB质粒丢失及对宿主细胞毒性.结论表达HpUreB的减毒鼠伤寒杆菌SL3261/PTc01-UreB可用作抗Hp感染口服疫苗.     

以白细胞介素-2为免疫佐剂的幽门螺杆菌尿素酶B亚单位核酸疫苗的构建及其免疫保护作用

背景：细胞因子具有免疫佐剂效应，但将其用作幽门螺杆菌（H．pylori）核酸疫苗佐剂的研究报道尚少。目的：构建同时含H．pylori尿素酶B亚单位（ureB）基因和小鼠白细胞介素-2（IL-2）基因的重组活减毒鼠伤寒沙门菌核酸疫苗，体外鉴定其表达蛋白的免疫原性，体内检测其对H．priori感染的免疫保护作用。方法：以聚合酶链反应（PCR）扩增H．priori ureB基因和小鼠IL-2基因，分别插入pUCmT载体，测序，通过一系列酶切、连接反应分别克隆人真核表达载体pIRES，酶切、PCR鉴定；重组质粒pIRES-ureB和pIRES-ureB-IL-2分别转化减毒鼠伤寒沙门菌LB5000，抽提质粒，进一步转化终宿主菌SL7207，反复传代培养。以Lipofectamine^TM2000将重组质粒分别体外转染COS-7细胞，蛋白质印迹法检测表达蛋白的免疫原性。以疫苗菌经口接种小鼠，4周后予H．pylori攻击，攻击后4周鉴定H．pylori感染状况。结果：测序结果显示扩增出的ureB和IL-2基因序列与GenBank中的H．pylori ureB和小鼠IL-2序列一致，酶切、PCR鉴定证实ureB和IL-2基因已克隆人pIRES载体，并成功构建了稳定的含H．pylori ureB和小鼠IL-2基因的重组活减毒鼠伤寒沙门菌核酸疫苗。蛋白质印迹法显示，pIRES-ureB-IL-2转染的COS-7细胞表达特异性UreB和IL-2蛋白。体内实验显示，疫苗接种组小鼠的免疫保护率显著高于PBS对照组（P〈0．01），其中ureB-IL-2疫苗组又显著高于ureB疫苗组（87．5％对62．5％，P〈0．05）。结论：成功构建了编码H．pylori ureB和免疫佐剂IL-2基因的重组活减毒鼠伤寒沙门菌核酸疫苗，体外实验证实其可表达具有免疫原性的抗原蛋白和佐剂蛋白，体内实验证实其对小鼠H．pylori感染具有免疫保护性，免疫佐剂IL-2可提高核酸疫苗的免疫保护率。     

Construction and identification of a recombinant live attenuated Salmonella typhimurium vaccine strain carrying Helicobacter pylori heat shock protein subunit B gene

OBJECTIVE: Because Helicobacter pylori is the principal cause of chronic active gastritis and peptic ulcer disease, the present study explored the possibility of constructing a recombinant live attenuated S. typhimurium vaccine strain carrying H. pylori heat shock protein subunit B (HspB) gene. METHODS: A 1640‐bp HspB gene was cloned into a prokaryotic expression plasmid pTrc99A. After sequence analysis, the result was compared with the sequence of H. pylori‐HspB gene and protein provided by the Genebank using BLAST analysis. The identified recombinant plasmid was then introduced into a live attenuated S. typhimurium strain SL3261. RESULTS: Using polymerase chain reaction (PCR) and restriction enzyme digestion, a recombinant pro­karyotic expression plasmid pTrc99A‐HspB harboring the HspB gene was constructed and successfully introduced into a live attenuated S. typhimurium strain SL3261. Most of the H. pylori‐HspB in the recombinant plasmid pTrc99A‐HspB was consistent with the H. pylori‐HspB sequence provided by the Genebank. The exchange of A/T or C/G in the cloned sequence hardly changed the encoded amino acids; the homology for both the genes and proteins of H. pylori SS1 strain was 97%; the homology with other common H. pylori strains J99 and 26695 was 96% for both. CONCLUSION: A recombinant live attenuated S. typhimurium vaccine strain harboring H. pylori‐HspB gene was successfully constructed and verified, which may help in the development of an oral vaccine against H. pylori infection.     

表达幽门螺杆菌hpaA基因的减毒鼠伤寒沙门氏菌对小鼠的免疫保护作用

目的　克隆幽门螺杆菌 (H pylori)全长hpaA基因 ,构建表达HpaA蛋白的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌 ,并研究其对小鼠的免疫保护作用。方法　用PCR扩增全长hpaA基因 ,经适当的酶切 -连接反应将其连入原核表达质粒 pTrc99A ,并进行了基因测序。重组质粒经鉴定后再导入减毒鼠伤寒沙门氏菌SL32 6 1,提取重组菌质粒 ,PCR和酶切鉴定 ,筛选阳性克隆。用SDS -PAGE电泳和Westernblot进行HpaA表达分析和鉴定 ,用薄层扫描分析HpaA含量。重组菌 3× 10 8CFU/ 0 4ml/只免疫C5 7BL/ 6小鼠 ,4周后H pyloriSS110 5CFU/只攻击小鼠 ,再 5周后处死小鼠 ,取腺胃做快速尿素酶试验和Giemsa染色 ,以明确H pylori定植情况 ,对照观察免疫保护效果。 结果　经PCR和酶切证实 ,构建了含 783bphpaA基因的重组原核表达质粒 pTrc99A -hpaA ,并将后者成功转化了减毒鼠伤寒沙门氏菌。重组菌能表达约 30kDaHpaA蛋白 ,重组HpaA量约占全菌体蛋白量的 38 9% ,Westernblot证实其有免疫反应性。重组菌对小鼠免疫保护率为 4 3 4 8% (10 / 2 3) ,与空白对照组比统计差异显著 (P =0 0 1)。结论　构建了表达H pyloriHpaA的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌 ,该菌株对C5 7BL/ 6小鼠有免疫保护作用。     

Systemic immune responses to oral administration of recombinant attenuated Salmonella typhimurium expressing Helicobacter pylori urease in mice

AIM: To evaluate whether attenuated Salmonella typhimurium producing Helicobacter pylori(H pylori) urease subunit B (UreB) could induce systemic immune responses against Hpylori infection. METHODS: Attenuated 5. typhimurium SL3261 was used as a live carrier of plasmid pTC01-UreB, which encodes recombinant H pylori UreB protein. Balb/c mice were given oral immunization with two doses of SL3261/pTC01-UreB at a 3-wk interval. Twelve weeks after oral immunization of mice, serum IgG antibodies were evaluated by ELISA assay. Gamma interferon (IFN-γ) and interleukin 10 (IL-10) in the supernatant of spleen cell culture were also assessed by ELISA. RESULTS: After oral immunization of mice, serum specific IgG antibodies against UreB in vaccine group were much higher than that in PBS and native Salmonella SL3261 control groups (A450, 0.373±0.100 vs 0.053±0.022, 0.142±0.039, respectively, P<0.01). Moreover, IFN-γ in vaccine group was on average 167.53±29.93 pg/mL, which showed a significant increase vs that of PBS control group (35.68±3.55 pg/mL, P<0.01). There was also a tremendous increase of IL-10 in vaccine group compared to PBS and SL3261 control groups (275.13±27.65 pg/mL vs 56.00±7.15 pg/mL, 68.02±15.03 pg/mL, respectively, P<0.01). In addition, no obvious side effects in mice and no change in gastric inflammation were observed. CONCLUSION: The multiple oral immunizations with the attenuated 5. typhimurium expressing Hpylori UreB could induce significant systemic immune responses, suggesting it may be used as oral vaccine against H pylori infection.     

Construction of an attenuated Salmonella typhimurium vaccine carrying the Helicobacter pylori hpaA gene

OBJECTIVE : Helicobacter pylori is documented to have infected more than half of the world’s population. It colonizes the human stomach and is associated with the development of chronic active gastritis, peptic ulcer disease, gastric adenocarcinoma and gastric mucosa‐associated lymphoid tissue (MALT) lymphoma. Immunization against this bacterium represents a cost‐effective strategy to reduce global gastric cancer rates and would have a major impact on H. pylori‐related peptic ulcer disease. HpaA, a subunit protein of H. pylori adhesin, is known to be the pathogenic factor and attenuated Salmonella typhimurium is a live vaccine vector. The present study aimed at constructing and identifying a live attenuated S. typhimurium vaccine carrying the hpaA gene of H. pylori. METHODS : The hpaA gene was amplified from H. pylori genomic DNA by polymerase chain reaction (PCR) and cloned into the NcoI‐SalI site of the prokaryotic expression plasmid pTrc99A. After sequence analysis of the hpaA gene, the identified recombinant plasmid was then used to transform a live attenuated S. typhimurium, namely SL3261, and positive clones were screened by PCR and restriction enzyme digestion. RESULTS : Confirmed by PCR, restriction enzyme digestion and sequence analysis, a recombinant prokaryotic expression plasmid, namely pTrc99A‐hpaA, harboring approximately 560 bp hpaA was constructed and the recombinant plasmid was then successfully introduced into a live attenuated S. typhimurium SL3261. CONCLUSION : A recombinant live attenuated S. typhimurium vaccine harboring the H. pylori hpaA gene was constructed and identified. This work will help develop an oral recombinant live vaccine against H. pylori infection.