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相似文献
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1.
感染金色地鼠的杜氏利什曼原虫是从苏丹上尼罗河省黑热病病人体内分离出来的虫株。地鼠感染后,取出其脾脏用注理盐水制成匀浆,每0.1毫升含原虫10,000,000个,同时将阳性脾脏用液体培养基培养鞭毛体,供试验接种用。第1批试验用48只雄鼠,体重为50~70克,分为6组,每鼠从心脏接种原虫10,000,000个。在接种后15天腹腔注射药物(剂量按锑计算)。第1组给药1剂,500毫克/公斤;第2组在注射500毫克/公斤后1周,再注射100毫克/公斤;第3组注射300毫克/公斤两次,第1次注射后1周给第  相似文献   

2.
本文作者观察了免疫抑制剂氢化考的松、地塞米松和强的松龙对宫崎并殖吸虫在大鼠体内生长的影响。实验动物分为5组:第1组,地塞米松(每5天2毫克/鼠);第2组,强的松龙和地塞米松(每5天10毫克和2毫克/鼠);第3组,氢化考的松和地塞米松(每5天10毫克和2毫克/鼠);第4组,强的松龙(每5天10毫克/鼠);第5组,未给药对照组,每组用鼠6~7只,均为200克左右的成年鼠。每鼠经口感染宫崎并殖吸虫囊蚴20只。在接种囊蚴前一天开始于鼠的腿部交替肌肉注射氢化考的松、地塞米松和强的松龙,每5天给药1次,直到解剖为止。在感染后30天,各组杀死一部分鼠,其余在63天时解剖。  相似文献   

3.
用体重20克的健康雌性小白鼠作实验,每鼠腹腔接种弓浆虫滋养体10~4个后分组,治疗组喂以拌有药物的饲料,对照组喂以无药的饲料。各药物组又有5只未接种弓浆虫的小白鼠同样喂以拌有药物的饲料,观察药物的毒性。第1批实验:包括3个药物组和1个对照组,对甲氧苄氨嘧啶(TMP)、磺胺甲基异(口恶)唑(SMZ)单独用药及两药合用(TMP/SMZ)的治疗效果进行了比较,每个药物组分为2个剂量。每鼠每天喂药剂量:TMP组为4毫克和2毫克;SMZ组为10毫克和5毫克;TMP/SMZ组为10毫克/2毫克及5毫  相似文献   

4.
本文首次报告了在醋酸氢化考的松作用下,锡兰钩虫在小白鼠体内可发育到性成熟和产卵,此虫卵能孵出幼虫及重新感染小白鼠。用感染锡兰钩虫的田鼠粪便培养获得的幼虫,径口感染同年龄、体重为25~30克的成年小白鼠。实验分3组:第1组为处理组;第2组为对照组。两组各有50只小白鼠组成(雌雄各半)。每鼠径口感染0.5毫升含  相似文献   

5.
作者试用海蒽酮1次肌肉注射治疗感染曼氏血吸虫病的小白鼠,企图在治疗后24小时左右获得促使虫体肝移的结果,但没有成功。实验鼠,每鼠经皮肤感染100条左右尾蚴,6周后分成2组,第1组用甲烷磺酸盐80毫克(基质)/公斤剂量,1次肌肉注射,药物溶解于含有25%Cremopher EL的0.85%盐水中。第2组小白鼠仅用溶媒治疗作为对照。从每组中各剖杀2~4只小鼠,用灌冲法  相似文献   

6.
作者在喀麦隆选择10岁以上盘尾丝虫重感染者182例作为观察对象,其中100例接体重每周注射苏拉明0.5~1.0克,连续注射2~5周以上。57例口服海群生,剂量为:第一天25毫克,第二天50毫克,第三天100毫克,第4~9天200毫克,均为每天2次。在头3~5天同时给予betamethasone 0.5~1.0毫克。另25例作对照。治疗前、后收集清晨小便10毫升,用手摇离心机离心,1,500转/每3分钟,吸取50立方毫米沉淀液,镜检微丝蚴;尿中查见微丝蚴者用Albustix法作蛋白尿试验。  相似文献   

7.
Oxamniquine(UK_(4271))(6-羟甲基-2-异丙胺甲基-7-硝基-1,2,3,4-四喹啉)是抗血吸虫药物UK_(3883)的有效代谢产物。本文报道Oxamniquine对小白鼠、田鼠和卷尾猴实验治疗血吸虫感染的效果。取体重18~20克小白鼠,每鼠经尾部感染曼氏血吸虫尾蚴120±10条;成年田鼠每鼠经颊囊感染60±10条尾蚴;另用尾蚴经皮肤感染4只成年卷尾猴。所有感染动物均用Oxamniquine肌肉注射1次治疗。剂量:小白鼠为25~100毫克/公斤,田鼠为50~200毫克/公斤,卷尾猴  相似文献   

8.
新近研究提出,皮肤涂抹海群生为捉高疗效,减轻副作用的有利途径。鉴于海群生对蛔虫成虫的杀灭作用,而验证皮肤给药后,药物在血液中是否宜于直接作用于移行期幼虫的设想。本实验以健康成年小白鼠为实验对象,实验组鼠25只,对照组鼠22只,人工感染猪蛔虫卵后,实  相似文献   

9.
作者对感染棉鼠丝虫的纳塔尔多乳鼠观察了经海群生治疗后淋巴细胞对丝虫抗原刺激应答的变化。通过巴氏禽刺螨的感染性叮咬使纳塔尔多乳鼠‘GRA’Giessen株感染棉鼠丝虫。当微丝蚴密度超过每微升200条时将动物分成4组。Ⅰ组与Ⅲ组各6鼠作为对照组。Ⅱ组含鼠9只,给予一个海群生疗程(150mg口服×5天)。第6天计数微丝蚴  相似文献   

10.
本文目的在于观察一次剂量海蒽酮对实验感染曼氏血吸虫小白鼠肝脏的远期影响。实验用5~6周的雌性小白鼠,每鼠感染曼氏血吸虫尾蚴20条,感染后56天分组进行治疗。1.海蒽酮按60毫克/公斤肌注1次,共160鼠。2.海蒽酮按3毫克/公斤肌注1次,共20鼠。  相似文献   

11.
作者以20~25克重的雌鼠作实验。每只小鼠用胃管给予感染3~5个肝片吸虫后囊坳,而后随机分组,用杀结核菌素即嗓吟核腺昔抗菌素(Tubereidin,简称Tu)治疗。l在用前,将Tu溶于0.9%的无菌盐水中,每毫升含Tul毫克。给药的方案是:(l)在感染后囊坳的第7、或第14、21、28天给药i次。第1组在鼠尾静脉直接注射rru 25毫克/公斤,第2组,穿刺小鼠的眶后取血,使Tu吸附于红细  相似文献   

12.
本文作者为了观察甲苯咪唑和苯硫咪唑(芬苯咪唑Fenbendazole)对小鼠旋毛虫感染各阶段的作用,用3~4周龄的小鼠进行了下述的5批实验。两种药物的剂量均为每公斤体重50毫克,每次以胃管投药。实验一:15只小鼠,每鼠经口感染400条旋毛虫幼虫。分为3组,每组5只小鼠。第1组不给药作对照,第2组在感染后7小时  相似文献   

13.
25毫升的尾蚴悬浮液用γ射线6,000仑琴照射,进行下列3个实验。每个实验分实验组和对照组:(1)按Clegg和Smithers的方法(1968),观察经照射和未经照射的尾蚴侵入小白鼠皮肤时的死亡情况;(2)按Clegg(1965)的方法,用20只小白鼠,每鼠分别感染400~500条经照射和未照射的尾蚴,感染5天和7天后观察其移行至肺部的情  相似文献   

14.
作者等观察自放线菌Streptomyces avermitilis分离出的大环内酯Avermectin类药物对犬体内犬恶丝虫的未成熟幼虫、成虫和微丝蚴的效果。1.对心前期幼虫的作用:先在实验感染犬恶丝虫的埃及伊蚊体内收集第3期幼虫,然后给每只年轻的小猎兔犬皮下接种100条幼虫,感染后2个月(幼虫尚未到达心脏前)用Avermectin B_(1a)口服治疗,药物溶于丙烯L-醇,药液浓度均配成每公斤体重给0.1毫升。9只实验犬均分为3组,  相似文献   

15.
作者等在印度咯拉拉邦的卡利卡特观察了左旋咪唑和甲苯咪唑治疗班氏丝虫感染的效果。治疗方法为:第1组25例,左旋咪唑3毫克/公斤/日×8天(总量24毫克/公斤);第2组27例,先给服左旋咪唑上述剂量一个疗程,再续服甲苯咪唑6毫克/公斤/日×10天(总量60毫克/公斤);第3组98例,海群生6毫克/公斤/日×12天(总量72毫克/公斤);对照组50例,仅给以安慰剂。各组治前  相似文献   

16.
将马来丝虫微丝蚴注入实验鼠静脉,能产生持续的微丝蚴血症,从而提供了一种可用以评价杀微丝蚴药物的模型。本文报导海群生对注入鼠体内马来丝虫微丝蚴的作用。从感染的蒙古沙鼠获得微丝蚴。将动物麻醉,取20毫升 Dulbecco 磷酸缓冲液,经18号标准塑料导管注入腹腔,按摩腹腔后,回收含微丝蚴液。洗涤3次,浓缩至1毫升 pH7. 2磷酸缓冲盐液含2×10~5微丝蚴悬液。体重18~20克的雌性CF_1鼠,每只静脉内注射0. 5毫升悬液间隔一定时间,从每只鼠眶后静脉窦  相似文献   

17.
作者用旋毛虫幼虫感染小鼠,每鼠约200条。实验分5组,第1组于感染后24小时给予 Avermectin B_2a0. 3毫克/公斤,一次口服。第2组在服药前1小时腹膜内注射阿托品3毫克/公斤。其余3组分别为只给阿托品组、溶解药物的溶剂组和不作任何处理的对照组。各组均于感染后3天剖检肠内虫数。结果服药组减虫率分别为85%和71%,两组无显著差异。后3组虫数均十分接近。  相似文献   

18.
试验用的药液有乙胺嘧啶和磺胺嘧啶两种,前者系将100毫克药溶在2毫升乳酸中,再以Melnick A培养基烯释至100毫升,继以培养基烯释至所需用的浓度;后者也以Melnick A培养基配制成不同浓度的药液。试验方法是在猴肾细胞的培养物中,接种从小白鼠腹腔渗出液中取得的弓浆虫1×10~7个,4小时后取去培养基,培养物用新鲜培养基漂洗后,加入含有药物的培养基,在37C内孵育24小时后,将粘有感染弓浆虫的细胞  相似文献   

19.
2~3个月龄的雌雄金色田鼠各28只,平均分组。每鼠心内接种肯尼亚株杜氏利什曼原虫原鞭毛体约100万个。其中40鼠在接种后,用巴斯德毛细吸管穿刺鼠的眼眶后血管取血1滴(±0.05毫升),用NNN培养基(每毫升加青霉素±500单位和链霉素±500微克)。在鼠接种原鞭毛体后的第一个月隔日取血1次,第二个月每周取血2次,第三个  相似文献   

20.
为了探索短膜壳绦虫病人在治疗后引起复发的原因,作者用含成熟卵的短膜壳绦虫节片饲喂724只小白鼠,进行实验感染,其中574只于感染成功粪便中有虫卵排出后1~5天开始用氯硝柳胺连续治疗2天,按治疗剂量分成3个实验组,第1组434只小自鼠,剂量为0.0125克/公斤体重;第2组40只鼠,剂量0.1克/公斤;第3组100只鼠,剂量1.0  相似文献   

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