阴茎海绵体平滑肌细胞培养进展

阐述阴茎海绵体平滑肌细胞（CCSM）培养对目前研究勃起功能障碍的重要性。比较CCSM与其他平滑肌细胞培养的差异,同时比较两种不同的CCSM培养方法结果的异同,为研究勃起功能障碍培养CCSM方法的选择提供参考。     

新西兰兔尿道海绵体平滑肌细胞的原代培养及鉴定

目的 为构建新西兰兔组织工程尿道提供种子细胞。方法 取新西兰兔阴茎头，用含10％胎牛血清的高糖DMEM作体外原代培养，并行免疫组织化学法鉴定。结果经10～14d培养后，培养瓶底铺满梭状细胞，免疫组织化学法鉴定确认为兔尿道海绵体平滑肌细胞。结论兔阴茎头平滑肌细胞可在体外条件下生长传代、扩增，可作为构建组织工程尿道的种子细胞。     

兔阴茎海绵体平滑肌细胞的快速分离及鉴定

目的探讨兔阴茎海绵体平滑肌细胞快速分离方法,为应用膜片钳技术研究阴茎勃起机制提供实验材料.方法采用木瓜蛋白酶和胶原酶两步酶解消化法,快速分离出新西兰大白兔阴茎海绵体平滑肌细胞并应用免疫组化鉴定.结果分离的细胞成活率较高,贴壁呈长梭形,胞膜光滑完整,胞浆均匀,可用于膜片钳记录.免疫组化鉴定为兔阴茎海绵体平滑肌细胞.结论酶解消化快速分离兔阴茎海綿体平滑肌细胞为全细胞膜片钳技术研究阴茎勃起功能障碍的电生理机制提供了较好的实验材料.     

兔阴茎海绵体平滑肌细胞的体外培养及其生物学特性

目的；研究体外培养的新西兰白兔阴茎海绵体平滑纲细胞的生物学特性。方法：采用组织块培养法，对兔阴茎海绵体平滑肌细胞进行活细胞观察，并测定其细胞生长曲线，贴壁率，细胞分裂指数。结果：（1）兔阴茎海绵体平滑肌细胞为梭形，呈长轴平行排列，具有明显的方向性；（2）体外贴壁快，生长迅速，体外培养的阴茎海绵体平滑肌细胞在合适的传代条件和比例下能够生存并保持其稳定的生物学特性。结论：体外培养的兔阴茎海绵体平滑肌细胞模型可用于检测某些药物对阴茎勃起的影响。     

人阴茎海绵体平滑肌细胞三维培养模型的建立

目的 观察人阴茎海绵体平滑肌细胞(hCCMCs)在三维培养系统中的生物学特性.方法 体外分离hCCMCs,并用差速贴壁法进行纯化.免疫组化的方法检测α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA)的表达,进行hCCMCs的鉴定.在单层贴壁培养的基础上,将hCCMCs在胶原凝胶中培养,形成三维培养系统,并对hCCMCs的形态结构、增殖情况进行研究.结果 原代培养的hCCMCs细胞形态不均一,经过差速贴壁法纯化后,细胞形态均一,免疫组化显示大多数细胞α-SMA阳性表达.三维培养系统中,hCCMCs在不同层面上呈三维生长.hCCMCs在三维培养系统中培养10d后,细胞数量无明显增殖(P>O.05),明显低于贴壁培养条件下细胞增殖速率(P<0.01).结论 hCCMCs三维培养系统可以观察hCCMCs在三维条件下的生长、增殖状况,研究hCCMCs与微环境的相互作用关系,有望为相关研究找到一种更为简单、可控性更强的体内实验替代方法.     

阴茎海绵体平滑肌细胞间隙连接的研究进展

阴茎海绵体平滑肌的收缩能力在人类阴茎勃起中起重要作用。了解引发、维持和调节阴茎海绵体平滑肌张力的机制是进一步认识、诊断和治疗阴茎勃起功能障碍的前提。尽管如此 ,在生理学上 ,想认识内源性和外源性血管调节剂如何作用于个体阴茎海绵体平滑肌细胞的确切机制 ,以及在成对的阴茎海绵体中 ,这些信号如何在各个实质细胞中传递的过程仍较困难。本文目的 :①综述目前所了解的阴茎海绵体平滑肌张力在细胞和分子水平的调节机制 ;②综述各种方法在间隙通道研究中的应用     

阴茎海绵体平滑肌细胞的鉴定分析进展

勃起功能障碍(erectile dysfunction,ED)是一种多因素引起的男科难治性疾病[1],严重影响患者的整体健康和生活质量[2].阴茎海绵体平滑肌细胞(CSMC)是组成阴茎海绵体的主要功能成分,约占整个阴茎组织成分的40%～50%,是阴茎神经调控的主要效应器部位[3,4],因此也成为调节阴茎勃起及维持勃起的重要因素.从这意义上来讲,CSMC的研究显得尤为重要,而CSMC的培养和鉴定是这研究的基础,因此CSMC纯化鉴定在细胞水平上研究ED的机制颇受到关注,本文就体外培养的CMSC鉴定分析做一综述.     

家兔阴茎海绵体平滑肌细胞体外培养方法对比研究

目的　探索更好、更方便的家兔阴茎海绵体平滑肌细胞体外培养方法。方法　分别采用组织块法、酶消化法、组织块 酶消化法对家兔阴茎海绵体平滑肌细胞进行培养 ,在倒置显微镜下对培养过程的细胞分别作了生长情况及形态学观察。用HE染色、MTT法分别描绘原代培养细胞的生长曲线、细胞分裂指数曲线 ;用倒置显微镜观察活细胞的贴壁过程 ,计数法测定细胞贴壁率。结果　组织块法及酶消化法培养的细胞其生长状况和形态学各有自己的特点。组织块法的细胞生长慢 ,培养时间相对较长 ,纯度相对较高 ,原代培养细胞生长速度快 ,但由于该法消化时间不易掌握 ,常影响其成功率 ,多数细胞呈梭形 ,细胞的密度高 ,原代培养时间为 7～ 10d。结论　每种培养方法都有各自的优缺点。我们可根据实验的需要而选择不同的方法或联合培养     

成人及家兔阴茎海绵体平滑肌细胞培养和鉴定

目的 :探索阴茎海绵体平滑肌细胞 (CCSM)体外培养及鉴定方法。　方法 :采用勃起功能正常的成年男子及新西兰家兔的新鲜阴茎标本 ,经处理后采用原代细胞培养法 ,对阴茎海绵体组织块进行培养 ,获得CCSM后用光镜、透射电镜和免疫组化等多种方法从细胞形态学及CCSM生长特性等不同侧面对培养的人及新西兰家兔的CCSM进行鉴定 ,并测定CCSM在体外培养时的细胞增殖情况。　结果 :经 2 4h潜伏期 ,体外培养的CCSM进入指数增长期 ,维持约 96h后进入平台期 ;从接种组织块至长成单层细胞约需 15～ 2 0d ,传代后约 4～ 7d后长成单层 ;传代后的细胞增殖旺盛 ,成束状生长 ,并呈现层叠排列及“峰 谷”现象 ;CCSM在体外可稳定传 7～ 12代 ,传代期间其形态及增殖活性变化不明显 ;各种检测鉴定均证实所获细胞为CCSM。　结论 :CCSM原代细胞培养法简便、稳定、可靠 ,对研究阴茎的勃起机制及勃起功能障碍的发生、发展、调控及其治疗药物筛选有重要理论及现实意义。     

兔阴茎海绵体平滑肌细胞的体外培养及其生物学特性

目的 :研究体外培养的新西兰白兔阴茎海绵体平滑肌细胞的生物学特性。　方法 :采用组织块培养法 ,对兔阴茎海绵体平滑肌细胞进行活细胞观察 ,并测定其细胞生长曲线、贴壁率、细胞分裂指数。　结果 :①兔阴茎海绵体平滑肌细胞为梭形 ,呈长轴平行排列 ,具有明显的方向性 ;②体外贴壁快 ,生长迅速 ,体外培养的阴茎海绵体平滑肌细胞在合适的传代条件和比例下能够生存并保持其稳定的生物学特性。　结论 :体外培养的兔阴茎海绵体平滑肌细胞模型可用于检测某些药物对阴茎勃起的影响。     

尿路平滑肌细胞的培养和鉴定

目的 建立尿路(膀胱、输尿管、肾盂)平滑肌细胞分离、培养、扩增的常规方法。方法人肾盂及输尿管标本各1例、人膀胱标本3例，猪输尿管标本1例、猪膀胱标本5例，采用胶原酶消化法从中分离尿路平滑肌细胞，在含10％胎牛血清的DMEM中培养，观察细胞形态及扩增情况，用免疫组化方法鉴定细胞类型特异性蛋白质α—肌动蛋白(α—actin)。结果 尿路平滑肌细胞生长良好，呈现典型的平滑肌细胞形态。细胞经6次传代仍扩增迅速，免疫组化染色显示α—actin阳性。结论 此培养方法简单、可靠，短期内可获得大量纯净的尿路平滑肌细胞。     

低氧对SD大鼠阴茎海绵体平滑肌纤维化的影响

目的:探讨低氧对SD大鼠阴茎海绵体平滑肌纤维化的影响。方法:体外培养阴茎海绵体平滑肌细胞,免疫组化鉴定细胞;常规氧浓度(21%O2浓度)分别培养12、24、48、72h作为对照,低氧(1%O2浓度)干预12、24、48、72h,RT-PCR分别测定各组TGF-β1、Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原的相对表达量。结果:体外培养的阴茎海绵体平滑肌细胞生长良好,抗平滑肌α-肌动蛋白单克隆抗体免疫组化染色阳性;RT-PCR结果提示TGF-β1、Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原的相对表达量在48h内与低氧时间成正相关,时间进一步延长不能增加其相对表达量。结论:在低氧环境下,SD大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞的TGF-β1、Ⅰ型胶原、Ⅲ型胶原的相对表达量随时间的延长逐渐增加,48h达到最大值。低氧可导致SD大鼠阴茎海绵体平滑肌纤维化。     

SD大鼠阴茎平滑肌细胞的获取和体外培养

目的 研究SD大鼠阴茎平滑肌细胞体外培养方法和生物学特性.方法 采用贴壁组织块培养法和酶消化培养法,对SD大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞进行活细胞观察.结果 (1)SD大鼠阴茎海绵体平滑肌细胞为梭形,呈长轴平行排列,具有明显的方向性;体外贴壁快,生长迅速,体外培养的阴茎海绵体平滑肌细胞在合适的传代条件和比例下能够生存并保持其稳定的生物学特性.(2)酶消化培养法获得细胞的纯度高,接种后细胞生长快.贴壁组织块培养法操作简单易于掌握.结论 贴壁组织块培养法和酶消化培养法均可以获得平滑肌细胞,方法均方便可行.我们可根据实验的需要选择不同的方法.     

Effects of neferine on cytosolic free calcium concentration in corpus cavernosum smooth muscle cells of rabbits

To study the relaxation mechanisms of neferine (Nef) on the corpus cavernosum smooth muscle (CCSM), the CCSM cells from New Zealand White rabbits were cultured in vitro. [Ca(2+)](i) was measured by fluorescence ion digital imaging system (FIDIS), using Fluo-2/AM as a Ca(2+)-sensitive fluorescent indicator. Nef (0.1, 1 and 10 micromol l(-1)) had no effect on the resting [Ca(2+)](i) (P > 0.05). In the presence of extracellular Ca(2+) (2.5 mmol l(-1)), Nef (0.1, 1 and 10 micromol l(-1)) inhibited [Ca(2+)](i) elevation induced by high K(+) and phenylephrine (PE) in a concentration-dependent manner (P < 0.05). In calcium free solution containing egtaic acid (EGTA), Nef (0.1 micromol l(-1)) had no inhibitory effects on [Ca(2+)](i) elevation induced by PE (P > 0.05). However, Nef (1 and 10 micromol l(-1)) inhibited [Ca(2+)](i) elevation induced by PE (P < 0.05). These data suggest that Nef inhibited [Ca(2+)](i) in CCSM cells via blocking voltage-dependent Ca(2+) channel, alpha(1)-adrenoceptor-operated Ca(2+) channel and Ca(2+) release from intracellular Ca(2+) pool. This inhibitory action on [Ca(2+)](i) might be one of the relaxation mechanisms of Nef on the CCSM.     

Myocardin restores erectile function in diabetic rats: phenotypic modulation of corpus cavernosum smooth muscle cells

This study aimed to investigate whether gene transfer of myocardin to the penis of diabetic rats can modulate corpus cavernosum smooth muscle (CCSM) cells phenotype and restore erectile function. Five normal control rats, and 22 diabetic rats were randomly divided into four groups: rats transfected with adCMV‐myocardin (N = 6), treated with empty vector (N = 6), injected with medium (N = 5), and sham‐operated rats (N = 5). The erectile response was measured 7 days after transfection. The percent of smooth muscle and the expressions of SMα‐actin, smooth muscle myosin heavy chain (SMMHC), calponin were evaluated. The increases in intracorporal pressure(ICP)/mean arterial pressure and total ICP in response to nerve stimulation in the adCMV‐myocardin treated rats were significantly greater than those in the empty vector (P < 0.001 and P < 0.001), medium only (P < 0.001 and P < 0.001), and sham‐operated rats (P < 0.001 and P < 0.001). The suppressed expressions of SMα‐actin, SMMHC and calponin were completely restored, and the amount of smooth muscle in diabetic rats were not restored after treatment. It is concluded that myocardin ameliorated erectile responses in diabetic rats mainly via promoting phenotypic modulation of CCSM cells from a proliferative to a contractile state.