RhD阴性血液的冻融及临床应用

目的 :探讨RhD阴性血液的冻存及复融的效果和输注后的临床疗效。方法 :对冻存的RhD阴性红细胞利用M115红细胞洗涤系统解冻去甘油洗涤 ,并比较冻存前和洗涤后红细胞的总量、平均体积、平均血红蛋白含量、最大分布宽度、游离血红蛋白含量、甘油残余量、2 ,3 二磷酸甘油酸 ( 2 ,3 DPG)含量等指标 ,同时观察临床疗效。结果 :利用M115红细胞洗涤系统对冻存的RhD阴性红细胞进行解冻去甘油洗涤 ,除红细胞收率 ( 76 3 4% )略低于国家标准 ( 80 % ) ,其它项目均符合要求 ,临床效果明显。结论 :利用M115红细胞洗涤系统对冻存的RhD阴性红细胞进行解冻去甘油洗涤的方法是稳定而可靠的 ,且临床输注后疗效显著 ,无明显的输血不良反应。     

Rh（D）阴性冰冻解冻去甘油红细胞的常规制备与临床应用

目的：探讨Rh（D）阴性冰冻解冻去甘油红细胞的常规制备及Rh（D）阴性患者输注ABO血型相同Rh（D）阴性血液的方法。方法常规开展RhD抗原鉴定和Rh（D）阴性冰冻解冻去甘油红细胞制备,分析该血站2008～2014年血液采集、Rh（D）阴性冰冻解冻去甘油红细胞成分血的制备与供应、Rh（D）阴性献血者献血情况等数据。结果2008～2014年Rh（D）阴性血液的采集量为1872U,占全血采集量的4．36‰;Rh（D）阴性血液临床用量为1152U,占供血总量的2．89‰;Rh（D）阴性冰冻红细胞制备量为1175U,临床用量为467U,现有库存余量为708U。共检测出Rh（D）阴性献血者633人,其中献血1次者402人（63．51％）,献血量占Rh（D）阴性血总献血量的38．09％;献血2次者96人（15．17％）,献血量占16．88％;献血3次及以上者132人（20．85％）,献血量占45．03％。结论常规开展RhD抗原鉴定和Rh（D）阴性冰冻解冻去甘油红细胞制备,能够满足Rh（D）阴性患者输注ABO血型相同Rh（D）阴性血液的需求。     

深低温保存Rh阴性红细胞冰冻解冻的质量控制

目的探讨深低温保存Rh阴性红细胞冰冻、解冻的质量控制措施。方法使用高浓度甘油添加到Rh阴性血红细胞中,置-65℃以下冰柜冰冻保存。临床需要时37℃水浴复苏红细胞,洗涤过程采用9%／6Nacl洗涤溶液、羟乙基淀粉盐溶液、0．9％Nacl溶液,遵循梯度洗涤方法。结果质控抽检60U冰冻解冻去甘油红细胞回收率（84．4±4．6）％,悬浮红细胞上清血红蛋白含量（O．68±0．26）g／L,体外溶血试验（22．19±4．2）％。残留甘油含量（4．96±0．86）g／L。结论冰冻解冻去甘油洗涤红细胞各项指标均达到国家规定的质量标准,临床输用效果良好。     

ACP 215型血液处理仪制备冰冻红细胞的方法学评价

目的应用ACP 215型血液处理仪制备甘油化红细胞、去甘油化红细胞,观察去甘油化红细胞的质控指标,并对操作方法和制备效果进行评价。方法随机取10袋红细胞悬液(2U/袋),于采血后10天应用215型血液仪处理制备甘油化红细胞,-70℃冰箱保存30天,37℃融化,再应用215型血液处理仪制备去甘油化红细胞。解冻红细胞洗涤前后留取样本检测冰冻红细胞质量。结果红细胞回收率(84±4)%,游离血红蛋白浓度(0.31±0.12)g/L,体外溶血试验(33±15)%,甘油残余量(6.3±2.4)g/L。细菌培养试验阴性。结论ACP 215型血液处理仪可全程自动化无菌制备冰冻红细胞,人为操作误差小,产品质量保证,值得推广。     

M115机洗冰冻红细胞高渗洗涤液用量与流速对红细胞回收率的影响

目的探讨解冻去甘油红细胞机洗过程中高渗盐洗涤液的用量和流速与回收率的关系。方法冰冻红细胞制备通常将冷冻保护剂(甘油)加入红细胞后在-80℃以下保存，洗涤前先把红细胞解冻，然后用糖水洗涤去甘油，再把洗涤的红细胞悬浮在生理盐水溶液内即可。结果高渗盐的用量和流速直接影响红细胞的回收率。结论利用M115机洗解冻去甘油红细胞时，必须严格控制12％NaCl液的用量和流速，才能使红细胞得到较高的回收率。     

冰冻解冻去甘油红细胞的制备方法及效果评价

目的用ACP215全自动细胞洗涤仪制备冰冻红细胞和冰冻解冻去甘油红细胞,观察冰冻解冻去甘油红细胞的质控指标,评价制备方法和制备效果。方法随机取2-6℃保存第6天的红细胞悬液,用ACP215甘油化红细胞悬液,-65℃以下深低温保存后取出,快速放入38℃水浴箱中融化,再用ACP215洗涤去甘油制备冰冻解冻去甘油红细胞。结果冰冻解冻去甘油红细胞平均红细胞回收率（84.06±2.07）,游离血红蛋白浓度（0.49±0.11）g/L,体外溶血实验（11.59±2.69）%,甘油残余量（3.51±1.27）g/L,残留白细胞（0.48±0.22）%,残留血小板（0.37±0.16）%,细菌培养阴性,满足国标《全血及成分血质量标准》的要求。结论 ACP215制备冰冻红细胞,低温保存并洗涤去甘油,操作方法标准化,快速简便,产品质量稳定可靠,可用于稀有血型及自体储血的保存,缓解供血紧张,保证临床输血的安全性。     

冰冻解冻红细胞库的建立与研究

目的:建立冰冻解冻红细胞库能实现血液的长期保存,调节血液供求不平衡现象,保障供血,有效地解决稀有血型患者输血和抢救、自身输血及"偏型"问题.最大限度地避免输血不良反应、输血传播疾病及因缺血所致死亡事件的发生.方法:采用高浓度甘油慢速冷冻法,最终使甘油在红细胞中的浓度大约为40%(W/V),冻存于-80℃机械冰箱,解冻时慢速融化.去甘油采用不同浓度梯度氯化钠溶液洗涤法.结果:我站制备的冰冻解冻红细胞符合中华人民共和国国家标准GB18469-2001全血及成分血质量标准.结论:冰冻红细胞-80℃可保存长达10年,为稀有血型患者及自身输血提供了方便.可减少输血反应,避免酸中毒、高钾血症及输血传播疾病;可杜绝因缺血引发的死亡事件.冰冻红细胞制剂是其它制剂所不能替代的,应用冰冻红细胞亦可节约大量的血液资源.     

全自动细胞处理系统与手工法制备冰冻解冻去甘油红细胞效果研究

目的探讨全自动细胞处理系统与手工法制备冰冻解冻去甘油红细胞制备效果。方法对2016年6月～2017年8月40袋原料血冰冻红细胞按照洗涤方法的不同分为手工对照组和全自动试验组,每组20袋,试验组采用全自动细胞处理系统制备冰冻解冻去甘油红细胞,对照组采用手工开放式洗涤法进行制备。对试验组和对照组制备的产品进行红细胞产品容量(mL)、血红蛋白含量(g/袋)、游离血红蛋白含量(g/L)、白细胞残留量(×107个/袋)、甘油残留量(g/L)、红细胞回收率(%)及无菌试验等指标的检测分析。结果两组洗涤法制备的冰冻解冻去甘油红细胞产品各项质量指标均符合国家相关规定标准要求,试验组中血红蛋白含量、红细胞回收率明显高于对照组,差异有统计学意义(P0.05);游离血红蛋白含量、甘油残留量等指标均低于对照组,差异均有统计学意义(P0.05)。试验组与对照组在容量、白细胞残留量质量指标方面基本一致,差异无统计学意义(P0.05)。结论全自动细胞处理系统可有效保证临床对Rh(D)阴性患者的紧急抢救用血,为患者抢救生命赢得时间,同时也可减少因手工开放操作而引起的血液细菌污染的可能性,提高采供血机构工作人员工作效率,提升冰冻解冻去甘油红细胞的产品质量,从而确保血液质量和临床用血安全。     

全自动细胞处理系统制备冰冻红细胞的关键控制点及效果评价

目的 应用ACP 215全自动细胞处理系统制备冰冻红细胞和冰冻解冻去甘油红细胞,观察冰冻解冻去甘油红细胞的质控指标,就其制备过程中的关键控制点、制备工艺及制备效果进行评价.方法 随机取40袋2～6℃保存6d以内的悬浮红细胞用ACP 215全自动细胞处理系统制备冰冻红细胞,-80℃冰箱保存,37℃融化,再用ACP 215全自动细胞处理系统制备冰冻解冻去甘油红细胞.解冻红细胞洗涤前后留取样本检测冰冻解冻去甘油红细胞质量.结果 红细胞回收率(86±5)%,游离血红蛋白浓度(0.27±0.16)g/L,体外溶血试验(6.76±6.9)%,甘油残余量(0.12±0.08)g/L,残留血小板量(0.03±0.02)%,残留白细胞量(0.24±0.25)%,细菌培养试验阴性.结论 ACP 215全自动细胞处理系统可全程自动化无菌制备冰冻红细胞和冰冻解冻去甘油红细胞,方法操作简便,高效,产品质量稳定,更有效地保障了临床输血安全.     

红细胞处理仪洗涤去甘油化与手工洗涤去甘油化效果比较

目的探讨应用细胞洗涤机解冻去甘油红细胞的效果。方法比较洗涤机洗涤去甘油化与传统手工洗涤去甘油化处理Rh阴性冰冻红细胞的优越性。结果细胞洗涤机去甘油化回收率高,缩短制备时间约2h,污染零风险。制品中各项指标符合国家成分质量标准。结论细胞洗涤机洗涤快捷,并能提高解冻去甘油化红细胞的质量,极大满足临床抢救用血需要。     

深低温保存Rh阴性RBC的质量控制

目的:确保深低温保存Rh阴性红细胞(RBC)解冻后的质量。方法:用ACD抗凝,4℃保存6 d内Rh阴性RBC悬液加入57.1%(g/v)甘油处理后,置-80℃冰冻保存,可以保存10年。临床需要时在39℃水浴中解冻复苏RBC,M115型红细胞洗涤系统洗涤,用生理盐水悬浮RBC。结果:33袋冰冻解冻RBC去甘油后RBC回收率为(80.24±6.19)%,游离血红蛋白浓度为(0.71±0.23)g/L,甘油残留量平均为3.79g/L,体外溶血实验血红蛋白增加率为21.66%。结论:冰冻解冻去甘油红细胞各项指标均达到国家规定的质量标准,临床输用效果良好。     

不同保存时间的悬浮红细胞制备冰冻红细胞质量分析

目的检测贮存期7-9d的血液,制备冰冻解冻去甘油虹细胞是否能达到GB18469的标准与贮存期为6d以内的血液制备的冰冻解冻去甘油虹细胞质量差异。方法报废悬浮缸细胞（以ALT及anti-TP阴性制品为主）,（4±2）℃保存期6d内及7-9d的虹细胞悬液各20U制备冰冻虹细胞及去甘油化解冻虹细胞进行质量检测,并做质量比较,观察缸细胞回收率、游离血缸蛋白、残留甘油、体外溶血试验等指标。结果贮存期6d和贮存期7-9d红细胞悬浮制备冰冻解冻去甘油虹细胞质量检测结果无差别,无统计学意义,质量均达到GB18469标准。结论本站对缸细胞悬液贮存期延长制备冰冻解冻去甘油缸细胞,能减少浪费Rh（D）血液资源,满足临床患者急诊需求,减轻工作人员的工作强度。     

稀有血型红细胞低温保存方法及复苏功能检测

目的探讨稀有血型红细胞低温保存及复苏方法。方法将Rh（D）阴性稀有血型少白细胞悬浮红细胞6 d内进行冰冻保存,取保存7 d内的红细胞悬液40袋,共分为两份,分别作为试验组和对照组,分别对两组材料进行甘油化冻存及复苏去甘油处置,除处理时间不同外,两组实验条件均一致,包括操作人员、离心转速和时间、复融温度等,降低外界对实验的干扰。统计2012年1-6月Rh（D）阴性红细胞采集使用情况、复苏后2,3-DPG含量和甘油残存量、红细胞回收率。结果 2012年1-6月间,Rh（D）阴性红细胞采集量逐步增多,差异有统计学意义（P〈0.05）。两组血液经复苏后去甘油后,红细胞回收率差异有统计学意义（P〈0.05）。复苏后2,3-DPG含量和甘油残存量则无明显差异。结论本研究方法不仅为患者赢得急救时间,还保证了血液的输注效果,对临床应用意义重大,值得推广。     

运用甘油磷酸氧化酶法测定冰冻红细胞解冻后残留甘油的含量

目的 建立测定冰冻红细胞解冻洗涤后残留甘油含量的酶学方法测定工艺.方法 进行甘油磷酸氧化酶法的线性范围测定、重复性、准确性(回收试验)、游离血红蛋白干扰试验,并比较不同样本处理方法(钨酸钠裂解法、三氯醋酸裂解法及制备后2h直接取上清液法)对酶法检测甘油的影响;进行系列浓度甘油红细胞酶法测定结果与传统过碘酸钠滴定法测定结果比对.结果 用GPO-PAP法检测甘油浓度在0.05～2.0 g/L时有较好的线性关系,,=0.9994,Y=0.942 X+0.0239;甘油含量为0.2 g/L、1.0 g/L的样本,批内CV值分别为2.68％、0.81％(n=20),日间CV值分别为4.59％、4.37％(n=20);甘油浓度从0.29～2.09 g/L间其回收率97.1％～100.8％,样本的平均回收率为99.0％;10g/L游离血红蛋白对GPO-PAP法检测结果无干扰;3种样本处理方法所测得的系列浓度甘油红细胞样品及解冻去甘油红细胞制品(n=18)酶法测定结果一致(P＞0.05);系列浓度甘油红细胞测定结果显示酶法测定比滴定法更准确,滴定法测定值偏高.结论 甘油磷酸氧化酶法可用于冰冻解冻去甘油红细胞制品中残留甘油含量的测定,方法简便、快速、准确、重复性好.3种样本处理方法对GPO-PAP法检测甘油含量无影响.     

COBE2991淘洗机洗涤Rh（-）红细胞制备过程及体会

随着当今医疗技术的发展,临床对血液及血液制品的需求量日益加大.特别是RH（-）血液在临床的需求也逐年增加.由于血液的保存期有限,为更好满足临床对RH（-）血液的需求,甘油化红细胞-80℃储存方法是目前长期保存RH（-）红细胞的最佳保存方法.RH（-）血液冰冻解冻去甘油化,手工方法洗涤的时间较长,需要大约3～4 h,严重影响了急诊病人的用血需求.为缩短洗涤时间,本血站特引进了COBE2991淘洗机,对冰冻的RH（-）血液进行冰冻解冻去甘油化洗涤.     

新型微波解冻装置解冻冰冻红细胞的方法学评价

目的应用新型微波解冻装置解冻冰冻红细胞,检测质量控制指标,并对新型微波解冻装置和红细胞制备效果进行评价。方法应用新型微波解冻装置解冻以甘油为保护剂-80℃保存的红细胞,用不同浓度的洗涤液洗涤去除甘油,以红细胞回收率、游离血红蛋白含量、残余甘油含量、体外溶血试验和无菌试验为质量检测控制项目。结果新型微波解冻装置能快速冰冻红细胞,解冻后红细胞质量指标均达到《全血及成分质量要求》（GB18469-2001）的要求,在红细胞回收率方面有明显提高,并且缩短了制备时间。结论新型微波解冻装置能快速解冻冰冻红细胞,质量符合标准,为解决血液长期储存、保障供血和稀有血型患者输血及自身输血提供了新的方法和手段,特别在野战、自然灾害等特殊条件下急救能发挥作用,值得推广应用。     

RhD阴性红细胞保存条件探讨

RhD阴性血源匮乏 ,在我国汉族人群中RhD阴性仅占 0 .3 %左右[1 ] 。零上温度保存血液最长时间为 35d[2 ] 。由于RhD阴性患者的数量相对较少 ,血液不能及时使用将报废作者采用 - 80℃超低温冰箱保存RhD阴性红细胞以延长保存时间。现就保存条件和操作中应注意的问题报道如下。1　材料与方法1 .1　RhD阴性血的来源　来本中心无偿献血者用血清学方法筛选出RhD阴性者 ,然后检测其RhD基因 ,RhD基因完全缺失者作为RhD阴性血的来源。1 .2　分组　取不同采集时间的RhD阴性全血按其新鲜程度分成 4组 :1～d组 ,3～d组 ,5～d组 ,7～ 9d组 ,每组 …     

对保存3d的全血制备洗涤红细胞质量情况分析

目的 :了解血液采集后在 (4± 2 )℃保存 3d的全血对制备不同洗涤红细胞质量的影响。方法 :取存放在4℃冰箱 3d之内不同时间段的全血经制备洗涤后 ,测定其制品的白细胞清除率 ,蛋白清除率 ,红细胞回收率对其各项指标进行控制 [1 ]。结果 :4℃存放 3个时间段的血液对洗涤红细胞质量影响不大 ,但洗涤前溶血性试验表明第 3天保存全血对红细胞损伤程度略高些。结论 :尽可能使用 3d之内全血洗涤红细胞 ,相对可保证洗涤红细胞质量。     

对保存3d的全血制备洗涤红细胞质量情况分析

目的:了解血液采集后在(4±2)℃保存3 d的全血对制备不同洗涤红细胞质量的影响.方法:取存放在4℃冰箱3 d之内不同时间段的全血经制备洗涤后,测定其制品的白细胞清除率,蛋白清除率,红细胞回收率对其各项指标进行控制[1].结果:4 ℃存放3个时间段的血液对洗涤红细胞质量影响不大,但洗涤前溶血性试验表明第3天保存全血对红细胞损伤程度略高些.结论:尽可能使用3 d之内全血洗涤红细胞,相对可保证洗涤红细胞质量.     

Rh(D)阴性冰冻红细胞库的建立及临床应用

目的应用深低温冰冻保存红细胞技术,建立Rh(D)阴性冰冻红细胞库,及时向临床提供足量的Rh(D)阴性血液。方法使用美国血液技术公司生产的ACP-215型全自动红细胞处理仪,用高浓度甘油(57.1%)作为保护剂,于-80℃条件下,对Rh(D)阴性血液进行冷冻保存。结果建立了Rh(D)阴性冰冻红细胞库,已向临床供应冰冻解冻去甘油红细胞38.5单位,临床输注后均无不良输血反应发生。结论应用深低温冰冻保存红细胞技术,建立Rh(D)阴性冰冻红细胞库,基本满足兰州地区及周边地区Rh(D)阴性血液的临床需求,有效地解决了临床特殊血型血液的用血需求。