不同方法制备冷沉淀的质量评估

目的通过对poo l法和水浴虹吸法制备冷沉淀的质量评估,选择合适的制备冷沉淀的方法。方法利用血凝仪检测冷沉淀中FⅧ和Fg的含量,并计算FⅧ和Fg的合格率和冷沉淀的容量。结果poo l法和水浴虹吸法的FⅧ含量(IU/袋)分别为:54.47±25.65,96.50±27.63,FⅧ合格率分别为:26.25%,83.75%,两者均有显著性差异(P<0.001);Fg的含量无显著性差异(P>0.05),Fg合格率均为100%;poo l法制备的冷沉淀的容量明显高于水浴虹吸法(P<0.001)。结论水浴虹吸法无论在方法学上和制备冷沉淀的质量上均明显优于poo l法。     

不同方法制备新鲜冰冻血浆对冷沉淀凝血因子质量的影响

目的分析不同方法制备新鲜冰冻血浆对冷沉淀凝血因子中纤维蛋白原(Fg)和凝血因子Ⅷ(FⅧ)含量的影响。方法随机选取90份本中心2014年3~6月自愿献血者400 ml全血,按照不同制备流程分成3组,第1组全血滤除白细胞过滤新鲜冰冻血浆(fresh frozen plasma,FFP),经病毒灭活后制备冷沉淀因子;第2组全血分离FFP,经病毒灭活后制备冷沉淀因子;第3组全血白膜法制备浓缩血小板分离FFP,经病毒灭活后制备冷沉淀因子。采用水浴融化法,随机抽取冷沉淀90份,取小辫5~10 cm,经37℃水浴融化后留取标本2~3 ml,测定Fg,FⅧ含量并进行对比分析。结果 3组中Fg(mg/袋,200 ml FFP制备)含量分别为:161.3±29.6,168.5±33.9,156.6±36.5;FⅧ(IU/袋,200 ml FFP制备)为122.4±34.9,131.5±30.2,101.9±21.7;抽检3组冷沉淀凝血因子中Fg、FⅧ含量合格率分别为91.2%、94.3%、80.9%,均达到要求。抽检结果显示第2组Fg、FⅧ含量最高,抽检合格率达94.3%;3组质量抽检合格率由高到低依次是第2组1组3组;3种制备方法组间Fg、FⅧ含量比较,差异无统计学意义(P0.05)。结论 3种不同方法制备新鲜冰冻血浆,冷沉淀凝血因子质量指标均符合国家标准。     

离心法采用压沉法水浴方式融化新鲜冰冻血浆制备冷沉淀质量分析

目的探讨压沉法水浴方式融化新鲜冰冻血浆(FFP)对制备冷沉淀质量的影响。方法随机选取2019年6—12月70名志愿无偿献血者捐献的全血[(400 mL/(人)份],制备成新鲜血浆70袋(200 mL/袋),-50℃速冻成FFP,以-20℃贮存;随机均分作实验组:采用压沉法,通过增加低温水浴箱不锈钢网盖,利用重力作用使FFP袋融化时完全压沉于1—6℃水浴装置中,当FFP基本融化时,以4 798 g离心10 min制成(20—25)mL/份的冷沉淀,-20℃贮存备用;对照组:采用常规漂浮法制备冷沉淀。电热恒温水浴箱融化2组冷沉淀后测量每袋冷沉淀容量,同时检测凝血因子Ⅷ(FⅧ)和纤维蛋白原(Fib)含量以及水浴融化所需时间。结果实验组和对照组组比较:FⅧ(IU/100 mL)为138.87±48.84 vs 128.36±50.23(P0.05),Fib(mg/100 mL)为150.48±35.03 vs136.62±41.67(P0.01);冷沉淀合格率(%),FⅧ为100 vs 97.14, Fib(%)为100 vs 97.14;水浴融化时间(min)为41.13±0.85vs 51.19±1.55 (P0.01)。结论压沉法制备冷沉淀时可使各FFP袋融化速度和温度一致,缩短融化时间;制备的冷沉淀质量明显优于常规方法。     

不同时间制备的血浆及冷沉淀的质量比较

目的考察不同时间制备的血浆及冷沉淀的质量。方法选取3组时间段(<8 h、8～18 h、18～24 h)制备的FP、病毒灭活FP、冷沉淀的标本各20份,检测FⅧ、Fib及FⅤ、FⅦ。结果 <8 h制备的FP、病毒灭活FP、冷沉淀的FⅧ、Fib均符合现行《全血及成份血质量要求》;8～18 h、18～24 h制备的FP、病毒灭活FP、冷沉淀的Fib有所下降,但仍符合现行《全血及成份血质量要求》。在不同时间段内FⅧ含量区别明显,<8 h、8～18 h、18～24 h制备的FP中FⅧ含量分别为(1.01±0.15)IU/mL、(0.76±0.10)IU/mL、(0.64±0.09)IU/mL;制备的病毒灭活FP中FⅧ含量分别为1.01(0.88,1.12)IU/mL、0.67(0.61,0.78)IU/mL、0.66(0.57,0.69)IU/mL;原料FP制备的冷沉淀FⅧ含量分别为(103.55±17.25)IU/mL、(68.95±11.36)IU/mL、(54.70±11.15)IU/mL。结论用于制备冷沉淀的原料FP应<8 h才符合现行质量要求;24 h内制备的病毒灭活FP基本符合病毒灭活FFP质量要求;8～24 h内制备的FP中FⅧ含量达不到FFP质量要求。     

两种设备分离冷沉淀质控抽检的质量比较

目的比较全自动冷沉淀制备仪与成分分离机制备的冷沉淀抽检合格率及质量。方法随机抽取2017年11月至2018年10月用成分分离机(简称分离机组)制备的冷沉淀48袋,与2018年11月至2019年10月全自动冷沉淀制备仪(简称自动组)制备的冷沉淀48袋,测定冷沉淀的VIII因子(FⅧ)和纤维蛋白原(Fib)含量,对照质量要求计算合格率,同时比较2组的质量,采用SPSS17.0做统计学分析。结果 FⅧ含量均值的比较,2种规格(2.0 U和1.5 U)自动组分别为(102.80±8.71)IU/袋和(77.19±8.77)IU/袋,分离机组分别为(84.77±3.92)IU/袋和(63.20±3.85)IU/袋(P均0.05);Fib含量均值的比较,2种规格自动组分别为(214.53±16.04)mg/袋和(170.62±8.29)mg/袋,分离机组分别为(182.53±11.16)mg/袋和(129.50±9.36)mg/袋(P均0.05);自动组和分离组抽检合格率比较,P0.05。结论全自动冷沉淀制备仪制备的冷沉淀质量优于成分分离机,并且冷沉淀抽检合格率高于成分分离机。     

经全自动冷沉淀制备仪制备的冷沉淀质量探析

目的探析采血后12—24 h制备的原料血浆经全自动冷沉淀制备仪制备的冷沉淀质量。方法随机选取95袋于2018年1月21—25日采集规格为400 mL/袋的全血(CPDA保存液)制备的血浆作为原料血浆,以采血到血浆制备的时间分组,12—18 h为新鲜冰冻血浆组(45袋),18—24 h为普通冰冻血浆组(50袋);原料血浆经速冻后在-20℃以下保存48 h,再经全自动冷沉淀制备仪制备成冷沉淀,检测原料血浆的FⅧ含量、冷沉淀的FⅧ和FIB含量。计量资料以均数±标准差(x±s)表示,采用单样本t检验,P0.05为差异有统计学意义。结果对照GB18469-2012《全血及成分血质量要求》(来源于400 mL全血的冷沉淀FⅧ含量≥80 IU,FIB含量≥150 mg)和WS/T550-2017《全血和成分血质量监测指南》(冷沉淀标本FⅧ和FIB含量符合率≥75%),FⅧ含量≥0.7 IU/mL的新鲜冰冻血浆组(12—18 h)制备的冷沉淀(FⅧ:121.80 IU,P0.01;FIB:204.33 mg,P0.01)和普通冰冻血浆组(18—24 h)制备的冷沉淀(FⅧ:119.17 IU,P0.01;FIB:222.74 mg,P0.01)符合质量控制标准且符合率均高于75%;FⅧ含量0.7 IU/mL的新鲜冰冻血浆组(12—18 h)制备的冷沉淀FⅧ和FIB含量均值达标(FⅧ:84.81 IU,P0.05;FIB:187.22 mg,P0.05)但FⅧ(53%)符合率低于75%;FⅧ含量0.7 IU/mL的普通冰冻血浆组(18—24 h)制备的冷沉淀FⅧ(72.37 IU,P0.05)含量均值低于标准且符合率(37%)低于75%,FIB(200.82 mg,P0.05)含量均值达标但符合率(68%)低于75%。结论采血后12—24 h制备的原料血浆(FⅧ含量≥0.7 IU/mL)经全自动冷沉淀制备仪制备的冷沉淀质量符合GB18469-2012《全血及成分血质量要求》和WS/T550-2017《全血和成分血质量监测指南》质量控制要求和检查标准,经该制备仪制备冷沉淀的原料血浆不需仅限制于新鲜冰冻血浆。     

两种冷沉淀凝血因子制备方法的比较研究

目的分析不同仪器制备冷沉淀凝血因子的Ⅷ因子含量和纤维蛋白原含量。方法将来源于400 m L全血的新鲜冰冻血浆(FFP)随机分为2组,第1组使用CYTOTHERM-4T.6C低温融化箱制备,第2组使用ZBK-LCD-A1型冷沉淀制备仪制备,用血凝仪检测Ⅷ因子含量、纤维蛋白原含量,根据检测结果做统计学分析。结果 2组不同仪器制备的Ⅷ因子(FⅧ∶C)含量分别为(94.2±18.1)和(113.0±32.9)IU,纤维蛋白原(Fgb)含量分别为(218.1±39.3)和(230.9±34.1)mg;Ⅷ因子含量合格率分别为79.2%和100%,纤维蛋白原含量合格率分别为97.9%和93.8%。经统计学分析,2种仪器制备的Ⅷ因子含量及合格率有统计学差异,纤维蛋白原含量及合格率无统计学差异。结论 2种仪器制备的冷沉淀凝血因子均符合国家标准,ZBK-LCD-A1型冷沉淀凝血因子制备仪制备质量更优,效率更高。     

制备冷沉淀的两种方法比较

[目的]对两种不同融化新鲜冰冻血浆制备冷沉淀的方法进行比较。[方法]取40袋新鲜冰冻血浆,分别采用4℃冰箱融化离心法和冰冻血浆解冻箱虹吸法制备冷沉淀,并比较其凝血因子Ⅷ(FⅧ)、纤维胶原蛋(Fbg)的含量。[结果]4℃冰箱融化离心法和冰冻血浆解冻箱虹吸法FⅧ每袋含量分别为47.6IU±4.1IU、64.2IU±6.0IU,差异有统计学意义(P<0.01),Fbg每袋的含量分别为88.3mg±3.5mg、92.8mg±4.9mg,差异无统计学意义(P>0.05)。前者新鲜冰冻血浆融化平均所需时间约为8.5h,而后者平均所需的时间仅为1h。[结论]两种方法都能制备出符合GB18469-2001《全血及成分血质量要求》的冷沉淀,但冰冻血浆解冻箱虹吸法能制备高质量的冷沉淀,且简便、快速。     

全血手工制备浓缩血小板后的血浆再制备冷沉淀的质量评价

目的评价室温新鲜全血白膜法制备浓缩血小板后的血浆再制备冷沉淀的质量。方法实验组为24例,新鲜全血(400 mL)置室温于<8 h用白膜法制备浓缩血小板后所得的血浆,冰冻保存。对照组1为12例,常规制备新鲜冰冻血浆,冰冻保存。对照组2为12例,新鲜冰冻单采血浆,血浆单采完毕分装为200 mL/袋并立即冰冻保存。3组血浆按常规制备冷沉淀,评价其质量:外观、凝血因子FⅧ及Fib的含量;血细胞残留量。结果 3组冷沉淀外观均正常;WBC含量在3组间无统计学意义。与对照组1比较:实验组凝血因子FⅧ(81.76±34.07)IU较低,Fib(202.63±48.58)mg及Plt(7.81±5.81)×109均较高。与对照组2比较:实验组凝血因子FⅧ含量相当,Fib(202.63±48.58)mg较高、Plt(7.81±5.81)×109较低。结论全血来源的制备浓缩血小板后的冰冻血浆还可以用于冷沉淀的制备,其质量符合国家标准。     

两种设备虹吸法制备冷沉淀凝血因子的质量和方法比较

目的通过2种设备(虹吸法)制备冷沉淀凝血因子的质量和方法的比较,选择合适的制备冷沉淀的设备。方法用贝克曼ACL-7000的原厂配套试剂分别对冷沉淀进行凝血因子Ⅷ、纤维蛋白原的测定。结果血浆融化箱制备冷沉淀中凝血因子Ⅷ含量为80.8-317.9IU,平均值为152.08 IU;纤维蛋白原含量为190.5-759.6 mg,平均值为373.02 mg,全自动冷沉淀制备仪制备冷沉淀中凝血因子Ⅷ的含量为80.2-326.7 IU,平均值为181.3 IU;纤维蛋白原含量为209.1-880.2 mg,平均值为424.8 mg,凝血因子Ⅷ差异有统计学意义(P0.01)纤维蛋白原差异没有统计学意义(P0.05),均达到了国家标准。结论 2种方法都能制备出符合根据《全血及成分血质量要求》规定的冷沉淀,冷沉淀中凝血因子Ⅷ的含量不少于80 IU/袋,纤维蛋白原含量不少于150 mg/袋,但全自动冷沉淀制备仪制备的冷沉淀凝血因子质量及方法优于血浆融化箱法,适宜推广。     

血浆制备时间和速冻方法对冷沉淀凝血因子质量的影响

目的探讨新鲜血浆的制备时间和速冻方法对冷沉淀凝血因子质量的影响,选择合适的制备时间和速冻方法。方法随机抽取制备时间分别为2 h、4 h、6 h、8 h新鲜血浆各16人(份),采用无菌接驳机平均分为A、B两实验组,分别用平板速冻机和传统低温冰箱速冻制备新鲜冰冻血浆(FFP);在相同条件下分别对两组FFP制备冷沉淀;采用凝固法检测两组冷沉淀的凝血因子Ⅷ(FⅧ)和纤维蛋白原(Fg)。结果血浆制备时间为2 h、4 h、6 h、8 h的冷沉淀FⅧ活性(IU)A组分别为78.40±22.87、74.06±23.72、71.25±19.93、70.53±18.84,B组分别为66.60±17.12、58.08±18.19、52.57±12.26、51.19±12.51。A、B组冷沉淀FⅧ随着制备时间的延长,均呈下降趋势,相同制备时相A与B组比较均有统计学差异(P<0.05);A组FⅧ活性4个制备时相间比较差异无统计学意义(P>0.05),B组2 h与6 h、8 h比较差异均有统计学差异(P<0.05)。血浆制备时间为2 h、4 h、6 h、8 h的冷沉淀中Fg含量(mg)A组分别为114.53±24.76、117.62±27.61、114.44±22.84、120.23±26.48,B组分别为113.36±23.53、116.43±25.38、115.28±23.66、117.92±25.58,Fg含量在不同制备时间和速冻方法条件均无统计学差异。结论 8 h内制备血浆2种速冻方法均能满足冷沉淀质量要求,平板式速冻机制备血浆的冷沉淀FⅧ活性显著性高于传统低温冰箱。     

1年保存期内病毒灭活新鲜血浆中凝血因子的质量调查

目的 探讨亚甲蓝光化学法(MB-P)灭活处理新鲜血浆后对1年保存期内部分凝血因子活性的影响.方法 随机抽取30(人)份全血(400 ml/份),按照标准操作规程将每份制备成新鲜血浆和病毒灭活新鲜血浆(100ml/份),分成未灭活组和灭活组,分别检测保存0(制备期＜1个月检测)、6、8、10、12个月后的2组各自的FⅡ∶C、FⅤ:C、FⅦ∶C、FⅧ∶C、FⅨ∶C、FⅩ:C及Fg含量变化.结果 与未灭活组相比,灭活组除FⅦ∶C含量无明显变化外,其他6种凝血因子含量在保存期内均明显下降(尤其FⅧ∶C和Fg下降最为明显);0、6、8、10、12个月保存时间的FⅧ∶C含量(％)分别为灭活前58.7±20.1、59.6±34.0、52.0±35.3、57.5±34.7、54.1±31.2和灭活后45.8±13.9、49.3±23.5、44.6±21.7、49.7±22.9、43.9±20.7(均为P＜0.05),Fg含量(mg/dl)分别为灭活前225.3±72.3、277.9±64.2、272.3±74.9、262.6±70.8、287.55±83.0)和灭活后188.8±54.7、205.8±54.0、205.8±54.0、220.2±66.7、202.2±56.8(均为P＜0.05).保存0和12个月相比,FⅩ:C含量(％)分别为93.0±30.5 vs 83.1±18.0(P ＜0.05).结论 新鲜血浆经MB-P病毒灭活处理后,1年冰冻保存期内起7种凝血因子含量相对稳定;MBP对凝血因子活性造成了一定损伤(尤其是Fg和FⅧ:C),但除FⅧ∶C外,其他凝血因子含量在可接受的范围内.     

离心法制备冷沉淀凝血因子的影响因素控制

目的 通过对离心法制备冷沉淀凝血因子过程中影响因素的控制,减少凝血因子含量的损失.方法 从2013年7月至2014年6月荆门市红十字中心血站采用严格控制影响因素离心法制备的冷沉淀凝血因子制剂中,采用简单随机抽样方法抽取60袋冷沉淀凝血因子制剂标本作为研究对象,纳入研究组（n=60）;从2012年7月至2013年6月采用一般离心法制备冷沉淀凝血因子制剂中,采用简单随机抽样方法抽取54袋纳入对照组（n=54）.对两组冷沉淀凝血因子制剂中因子Ⅷ（FⅧ）与纤维蛋白原（Fib）含量进行检测.回顾性对比研究组与对照组冷沉淀凝血因子制剂中FⅧ与Fib含量.结果 研究组与对照组的FⅧ含量与Fib含量检测结果均值均为合格.研究组FⅧ含量[（102.8±12.3）IU/袋]显著高于对照组FⅧ含量[（90.4±4.2） IU/袋],差异有统计学意义（t=8.04,P＜0.001）;研究组Fib含量[（179.9±6.7）mg/袋]显著高于对照组Fib含量[（170.2±8.3）mg/袋],差异亦有统计学意义（t=7.72,P＜0.01）.结论 对离心法制备冷沉淀凝血因子过程中影响因素加以严格控制,可减少FⅧ与Fib含量的损失.     

检测冷沉淀物中Fg、FⅧ最佳稀释倍数的探讨

目的在冷沉淀质控试验中寻找样品的最佳稀释倍数,以符合仪器标准曲线,保证纤维蛋白原（fibrinogen,Fg）、凝血因子Ⅷ（FⅧ）试验结果准确可靠。方法依照《全血及成份血质量要求》制备冷沉淀,应用全自动血凝仪Sysmex-CA550检测,将不同稀释倍数的检测结果进行统计学分析。结果样品未稀释与1∶2稀释×2的Fg检测结果的差异有统计学意义（P〈0.01）,而1∶2稀释×2与1∶4稀释×4的结果之间的差异无统计学意义（P〉0.05）;样品1∶4稀释×4与1∶8稀释×8后的FⅧ检测结果之间的差异有统计学意义（P〈0.01）,但计算两结果2CV〈40%。结论冷沉淀可分别进行1∶2、1∶4稀释后由仪器检测Fg、FⅧ。     

血浆制品凝血因子Ⅷ和纤维蛋白原水平与献血人群ABO血型关系的研究

目的探讨血浆制品因子Ⅷ(FⅧ)、纤维蛋白原(Fg)含量水平与献血人群ABO血型的关系。方法按照血浆制品类别的不同分为Ⅰ、Ⅱ组,Ⅰ组为冷沉淀组,Ⅱ组为新鲜冷冻血浆(FFP)组;冷沉淀、FFP均为4~6 h采集的400 mL新鲜全血制备而成。分别对上述两组血浆制品进行FⅧ、Fg测定;FⅧ的活性检测采用一期法,Fg采用凝血酶法检测。结果中A、B血型献血者FⅧ、Fg含量较O、AB型者含量显著升高,且A型最高,O型最低,差异均有统计学意义(P<0.01)。结论由于A、B型人群中的FⅧ、Fg含量较高,可能容易引发对与该种血型相关的疾病;非O血型比较容易患血管栓塞和动脉硬化,可能与该血型人群的FⅧ、Fg含量较高有关。     

Quantitative and qualitative analysis of coagulation factors in cryoprecipitate prepared from fresh‐frozen plasma inactivated with amotosalen and ultraviolet A light

BACKGROUND: There were no previous studies about the quality of cryoprecipitate prepared from fresh‐frozen plasma (FFP) inactivated with amotosalen and ultraviolet A (UVA) light. The aim of this study was to analyze the quantity and quality of coagulation factors in cryoprecipitate prepared from FFP treated with amotosalen and UVA light. STUDY DESIGN AND METHODS: FFP was obtained from whole blood donations and inactivated with amotosalen and UVA light according to the manufacturer's instructions. Fibrinogen, factor VIII (FVIII), von Willebrand factor antigen (VWF : Ag) and activity (VWF : RCo), the von Willebrand factor cleavage protease activity (ADAMTS‐13), and the multimeric structure of VWF were analyzed. RESULTS: The content of fibrinogen, FVIII, and ADAMTS‐13 was lower in cryoprecipitates prepared from amotosalen‐treated plasma when compared with cryoprecipitates prepared from nontreated plasma (35, 40, and 18% loss, respectively). The quantity and quality of VWF as well as VWF multimer patterns were not affected by the inactivation method. CONCLUSION: Cryoprecipitates prepared from amotosalen‐treated FFP contained significantly reduced levels of fibrinogen, FVIII, and ADAMTS‐13. However, the VWF quantity and quality was well preserved.     

炎症标志物及凝血因子与深静脉血栓形成的相关性研究

本研究分析下肢深静脉血栓形成（deep vein thrombosis,DVT）与c反应蛋白（C—reactiveprotein,CRP）,血浆纤维蛋白原（fibrinogen,Fg）、凝血因子Ⅷ（coagulation factorⅧ,FⅧ）和凝血因子Ⅸ（coagulation factorIX,FIX）之间的相关性,探讨炎症反应和凝血异常及其二者之间相互影响在下肢DVT中的作用和机制。采用免疫散射速率比浊法检测血浆CRP浓度,一期法测定FⅧ：C和FⅨ：C水平,凝血法检测血浆融合量,将上述指标进行病例组和对照组组间比较,并分析CRP与FⅧ：C、FⅨ：C及Fg之间的相关关系。结果表明：病例组CRP、Vg、FⅧ：C和FⅨ：C水平均显著高于对照组[CRP（2．67±0．91）：（0．14±0．08）mg／dl;Fg（4．73±1．36）：（2．79±0．66）g／L;FⅧ：C（126．71±28．10）：（81．35±20．77）％;FIX：c（81．01±23．60）：（70．71±11．3）％],P值均小于0．01。病例组CRP与Fg、FⅧ：C和FⅨ：C之间均具有相关关系,相关系数分别为0．432、0．571和0．544,P值均小于0．01。结论：炎症与DVT密切相关,血浆CRP水平升高可能是DVT发生的一个预测指标;血浆Fg、FⅧ：C和FⅨ：C水平升高是DVT的重要危险因素;炎症反应与凝血因子相互作用发挥促凝作用,是下肢DVT发生的可能发病机制之     

Comparison of coagulation factor XIII content and concentration in cryoprecipitate and fresh-frozen plasma

BACKGROUND: For patients with plasma coagulation factor XIII (pFXIII) deficiency, recommended means of replacement include infusions of fresh‐frozen plasma (FFP), cryoprecipitate, or (where available) factor (F)XIII concentrates. Quantitative differences in pFXIII concentration in FFP and cryoprecipitate are not well defined and were, therefore, the subject of this study. STUDY DESIGN AND METHODS: FFP and cryoprecipitate (10 bags each from blood group O donors) were analyzed to quantify pFXIII activity and antigen. Coagulation FVIII, fibrinogen, and von Willebrand factor (VWF) were also quantitated. RESULTS: Mean (±SD) pFXIII activity in cryoprecipitate and FFP bags was 60 ± 30 and 288 ± 77 U per bag, respectively, and pFXIII antigen and activity levels were concordant. Other comparisons (mean ± SD) between cryoprecipitate and FFP, respectively, were as follows: coagulation FVIII activity, 133 ± 37 and 265 ± 83 U per bag; fibrinogen content (Clauss kinetic assay), 183 ± 44 and 725 ± 199 mg per bag; VWF antigen content, 181 ± 53 and 218 ± 70 U per bag; VWF ristocetin cofactor activity, 168 ± 34 and 221 ± 65 U per bag; VWF collagen‐binding activity, 164 ± 40 and 208 ± 71 U per bag; and fluid (plasma) volumes per bag, 21.3 ± 2.7 and 245 ± 29 mL. CONCLUSION: In contrast to other cryoprecipitable coagulation proteins, pFXIII is only mildly enriched in cryoprecipitate when compared with FFP (approx. two‐ to threefold). Although both products can provide effective pFXIII replacement, FFP may be preferred when infusion volume is not a major consideration and pFXIII concentrates are not available. VWF is substantially enriched in cryoprecipitate (approx. ninefold compared with its concentration in FFP), with VWF activity content exceeding that of FVIII by approximately 26 percent on average.     

A comparison of factor VIII activity in cryoprecipitates prepared from ACD and CPD plasma

In an attempt to develop a method to produce a cryoprecipitate with a predictable Factor VIII potency, several variables were studied and statistically analyzed. These included the hematocrit, age, blood group and Rh type of the donor; possible epinephrine release; the degree of lipemia, volume, pH and Factor VIII activity of the donor plasma; the volume of cryoprecipitates, its Factor VIII activity and the per cent yield; and the Factor VIII activity of the supernatant plasma. Cryoprecipitates were prepared by the method of Pool and Shannon from the plasmas of 40 random male donors, half the bloods being drawn in ACD and half in CPD. None of the variables had a significant influence on the per cent yield of activity, although the mean values obtained suggest that the per cent yield of Factor VIII activity in the cryoprecipitates prepared from CPD plasmas is higher than in those prepared from ACD plasma. Although the per cent yield of Factor VIII in cryoprecipitates prepared from CPD plasma is not significantly different from that of ACD plasma, the mean total units of Factor VIII activity is significantly higher in CPD cryoprecipitates. It also was confirmed that a higher per cent Factor VIII activity in the donor results in a relatively higher activity in the cryoprecipitate. The data indicate that if CPD plasma collected from donors having above a certain minimum per cent activity were used for cryoprecipitate production, one could be assured of having a minimum of 100 units of Factor VIII activity per bag.