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目前,自动加样器在国内采供血机构的使用越来越普及,使用的自动加样器型号主要有ML ATPLUS、TECAN GENESIS RSP及DYNEX VI-VACE等。各实验室对全自动酶免分析系统的性能评价,主要集中反映为减轻工作人员劳动强度,提高工作效率和实验的灵敏度以及精密度等方面。本实验室在使用TECAN GENESIS RSP200型自动加样器时,发现由于使用永久性的加样针,可造成标本交叉污染,导致出现阳性拖带现象。为解决这一问题,笔和厂家技术人员共同探讨解决方法,取得了比较满意的结果。现以抗-HIV的检测为例报告如下。 相似文献
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全自动酶免疫分析系统加样中携带污染问题及其解决方案 总被引:6,自引:0,他引:6
目的 评价全自动酶免疫分析系统ELISA实验中的HBsAg加样携带污染并探索解决方案。方法 利用分配HBsAg强阳性标本的加样针再分配阴性标本进行阳性携带污染评价,通过对不同洗针次数的洗涤效果比较选择阳性携带污染解决方法;利用洗涤后未干燥和已干燥的加样针分配0.5ng/ml HBsAg标本观察阴性携带污染(稀释效应)。结果 加样针在吸取强阳性标本进行分配后洗涤5次,再分配阴性标本,造成部分实验孔出现弱阳性结果,洗涤后未经干燥的加样针再分配低值弱阳性标本使部分实验孔出现阴性结果,造成弱阳性标本漏检。洗涤次数增加至10次和干燥后的加样针没有类似问题。结论 加过强阳性标本的加样针未经充分洗涤会对阴性标本造成携带污染,出现假阳性结果;洗涤后未经干燥的加样针存在稀释效应,造成弱阳性标夏漏检。通过增加洗涤次数和对加样针进行干燥可以在一定程度上解决携带污染问题。 相似文献
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全自动加样仪保留血清标本方法的建立 总被引:2,自引:0,他引:2
按《血站管理办法》第三十一条规定:血清标本的保存期应在全血有效期满后半年。血样的保存可为追查血液检测结果提供真实的依据。目前血清标本的保存已成为血站系统检验科的一项常规的、必不可少的工作。因此如何使血样保存标准化、规范化和自动化是大家普遍关注的一项工作。我们经过实际工作中的摸索,改变了以往采用手工将血袋导管离心热合的繁琐方法,采用全自动加样仪保留血样,现将方法介绍发下. 相似文献
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正采用加样针的全自动仪器,一般加完一份标本后,要对针进行清洗,然后再进行下一份标本的吸取加样,但还是会存在吸样针的携带污染。对于血细胞分析仪、生化分析仪等,只要携带污染在一定范围内,不会影响标本结果的分析。而对于高度敏感的免疫学分析仪,携带污染则可能导致假阳性的结果,所以最好采用一次性的Tip头以避免加样针的携带污染。但由于各种因素,目前国内加样针的免疫分析仪还普遍存在。本 相似文献
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《血站管理办法》规定:血站采供血原始记录必须保存10年,血液检验全血标本应保存至全血有效期内,血清标本应保存至全血有效期满后半年。在发生医疗纠纷时,为了切实维护血液检测实验室工作人员的合法权益,防止采血过程中送检试管血标本与采血管标本不一致导致的错误结果发生,本站血清标本同时保留有采血管标本和试管血标本两种。以前保存试管血标本的方法是采用手工操作,即用一次性吸嘴将血清吸入带盖的小离心管内,然后注明日期、数量后封口,置-20℃以下冰冻保存,这种方式工作繁琐,人为因素影响大。自2008年8月开始,本站使用Xantus全自动加样器后,将手工操作留样改用一次性留样板留样,大大提高了工作效率,同时也减少了工作人员的感染机会。 相似文献
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血液标本是血站检验科实验工作的基础,也是全自动系统得以顺利运行的前提。只有提供符合要求质量合格的血液标本,才能提高检测质量,最终得出准确的实验结果。根据我检验科使用的澳斯邦生物工程有限公司提供的加样系统STAR和酶免系统FAME,本文就近年来在工作中的体会,就全自动加样和酶免系统对血液标本的要求,总结如下。 相似文献
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加样针污染致不同项目拖带情况分析 总被引:1,自引:1,他引:0
目的探讨不同项目、不同值域的拖带规律,为制订拖带克服措施和献血者(血液)保留淘汰策略提供依据。方法各个项目均用RSP100(4针型)全自动加样仪加样,用同样的冲洗程序和冲洗量进行加样针冲洗,用FAME16/20全自动酶免分析仪进行后处理,从第2列开始,以列为序,阳性孔后每间隔3孔有1孔有反应,取原标本和重采标本经手工加样复检阴性即纳入拖带污染统计。将阳性孔按S/CO值进行分组,对不同阈值造成拖带的情况进行评价。结果不同项目的拖带程度和频率有明显差异,抗-HIV项拖带最为严重,抗-HCV项次之,TP和HBsAg最低,拖带率随着S/CO值的升高而升高,当样本测定值在Cut off值的20倍以上时,抗-HIV项可有80%的样本发生拖带,抗-HCV项可有40%的样本发生拖带。结论加样针老化是造成拖带率逐年上升的主要原因,各项目拖带情况不一与样本的阳性程度、试剂灵敏度、加样量有关,拖带的预防应从做好仪器维护保养、加大加样针的洗涤时间和洗涤量、推广使用一次性加样针、献血前进行快速检测筛除阳性程度较高的标本等方面进行考虑。 相似文献
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目的 探讨全自动加样系统的校正方法。方法用称重法测定加样器每根加样针每次加蒸馏水的重量 ,并计算出加样针每次排水容量 ,通过对 4根加样针 5 5 μl容量的 1 0次测定 ,计算出 4根加样针加样容量 ,以判定是否在允许误差内 ,重复性是否可靠。结果 4根加样针设定容量为 5 5 μl时 ,误差分别为 (5 4 84± 0 6 )、(5 5 6 8±0 1 7)、(5 6 0 8± 0 1 3)、(5 5 84± 0 1 8) μl,CV分别为 1 1 %、0 3%、0 2 %、0 3%。结论用称重法校正全自动加样器 ,操作较简单 ,适用于日常对全自动加样器的校正 相似文献
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全自动加样仪如今在血站系统被广泛应用,与人工加样相比,它具有自动、快速、精确的优点,不仅把检验人员从重复烦琐的加样操作中解放出来,又避免了人工操作带来的误差,大大提高了血站血液检测工作的效率。但工作中发现加样针头的重复使用可能会造成标本之间的相互污染,给我们的血液检测工作带来一定的困扰,类似的情况和相关的报道也在其他单位出现过,为了解决这个问题,我们通过比较在全自动加样仪应用一次性针头前后的血液检测质量,讨论一次性加样针头在血液检测工作中的必要性。力求减少标本之间的交叉污染.提高血液检测质量。 相似文献
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在EUSA检测中人工加样可能导致标本的漏加和错加造成错误结果.全自动加样器的普及为实验室解决了这个难题.但自动加样器也存在因加样针堵塞和部件磨损影响加液量的问题.虽然加样器自身的监控系统可以及时发现一些大的问题而报警.但对于一些小的凝块和细微磨损造成的轻微改变无法识别,凭肉眼也不能观察到这些加液量的变化,而且由仪器厂商或计量单位进行的计量校正每年只能保证一至二次,无法满足对加样器的实时监控要求。作者利用比色法基本原理.结合仪器每年的计量校正用简单的比色法对加样器加液量进行实时监控。取得了良好效果.现介绍如下。 相似文献
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血站物品表面HBsAg、HIV、HCV、梅毒污染调查 总被引:1,自引:0,他引:1
为了解血站物品表面经血传染病原体污染情况,于2005年我们对血站使用的全自动加样仪样台、酶标仪键盘、血液混合仪、试管架、高频热合机、离心机孔、称血仪、发血工作台面、离心机杯、血库冰箱、采血车等,用浸有无菌生理盐水的棉拭子涂抹采样10 cm2,将采样后的棉拭头剪入盛有2 ml无菌生理盐水的试管中.经振荡后,检测HBsAg、抗-HIV、抗-HCV、梅毒抗体.检测方法是将标本经离心(3000 r/min)3 min,取上清液1 ml,再离心(15000 r/min)10 min,取沉淀液用ELISA法检测. 相似文献
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全自动酶免疫分析系统加样中携带污染问题及其解决方案 总被引:1,自引:0,他引:1
目的 评价全自动酶免疫分析系统ELISA实验中的HBsAg加样携带污染并探索解决方案。方法 利用分配HBsAg强阳性标本的加样针再分配阴性标本进行阳性携带污染评价,通过对不同洗针次数的洗涤效果比较选择阳性携带污染解决方法;利用洗涤后未干燥和已干燥的加样针分配0.5ng/mL HBSAg标本观察阴性携带污染(稀释效应)。结果 加样针在吸取强阳性标本进行分配后洗涤5次,再分配阴性标本,造成部分实验孔出现弱阳性结果,洗涤后未经干燥的加样针再分配低值弱阳性标本使部分实验孔出现阴性结果,造成弱阳性标本漏检。洗涤次数增加至10次和干燥后的加样针没有类似问题。结论 加过强阳性标本的加样针未经充分洗涤会对阴性标本造成携带污染,出现假阳性结果;洗涤后未经干燥的加样针存在稀释效应,造成弱阳性标本漏检。通过增加洗涤次数和对加样针进行干燥可以在一定程度上解决携带污染问题。 相似文献