洗涤红细胞保存期延长效果研究

目的探讨用红细胞保存液(MAP)保存洗涤红细胞,观察洗涤红细胞的保存期能否延长。方法去白细胞悬浮红细胞400ml(2U)20袋用0.9%Nacl生理盐水洗涤后,终产品分别用0.9%Nacl生理盐水和红细胞保存液(MAP)4℃保存。在不同时间段分别无菌留样,检测血红蛋白、上清蛋白质、溶血率、无菌试验。结果用红细胞保存液(MAP)保存洗涤红细胞,分别对制备后9、18、23、27d的血液样品进行检测,检测盐水组和MAP组血红蛋白含量的差异无统计学意义,结果上清蛋白质含量和溶血明显增加,无菌试验均(-),检测结果均符合国家要求,达到满意效果,可用于临床。结论在闭合无菌环境中制备且最后以红细胞保存液(MAP)混悬保存,洗涤红细胞保存期可适当延长。     

洗涤红细胞中K~+变化的影响因素研究

目的研究用MAP保养液保存的去白悬浮红细胞制备洗涤红细胞,其保存期内K~+浓度及其他相关性指标的变化趋势,为临床合理输血提供依据。方法选取去白和不去白悬浮红细胞制备MAP洗涤红细胞,检测其在不同保存期的K~+和Na~+浓度、游离血红蛋白浓度、红细胞渗透脆性、白细胞去除率、红细胞回收率等指标。结果去白悬浮红细胞较未去白悬浮红细胞制备的洗涤红细胞K+浓度升高速度慢,洗涤红细胞在保存期内,Na~+浓度逐渐下降,游离血红蛋白浓度逐渐升高,红细胞渗透脆性逐渐加强。结论临床输血时根据患者的不同情况有针对性选择不同保质期的洗涤红细胞,特别是针对高钾血症和新生儿患者等可优先选择即时洗涤红细胞(24 h内),而对于预防血浆过敏及白细胞副反应等患者,可选用MAP保存洗涤红细胞。     

关于红细胞保存液中腺嘌呤测定方法的探讨

血液保存液的研制成功，为输血事业的发展奠定了物质基础。尤其是腺嘌呤的发现，为延长血液保存，维持和恢复ATP、DPG水平及红细胞的活性起了重要作用。然而由于腺嘌呤在保存液中的含量很小，每个单位血在O．05～O．2mmol，一般情况下是不被人重视的。笔者在对悬浮红细胞保存液“MAP”质量的考察中发现，由于生产工艺和测     

4℃长期保存洗涤红细胞体外质量研究

目的探讨延长洗涤红细胞(WRC)的保存期限。方法将悬浮红细胞均分为3份:1份不洗涤(对照组),其余2份分别用生理盐水(盐水组)和红细胞添加剂(MAP组)洗涤,终产品用MAP液悬浮,4℃保存,分6个时间段取样检测红细胞活性、功能。结果上清游离K+、Na+、Hb:盐水组0~35d,MAP组0~28d均符合标准[1];pH:MAP组<盐水组<对照组(P<0.01);ATP:盐水组与对照组下降趋势基本一致(P>0.05),35d时分别保留70.8%和66.9%,而MAP组自保存7d起低于盐水组、14d起低于对照组(P<0.01),至35d时仅保留27.8%;2-3-DPG:MAP组下降速度明显大于盐水组和对照组(P<0.01),7d时下降了92.5%;洗涤效果:盐水组红细胞回收率83.1%,白细胞清除率84.5%,血浆蛋白清除率98.9%,细菌试验阴性。结论盐水、MAP对红细胞膜基本无损伤;但较之盐水洗涤,MAP洗涤不适于WRC持续保存;盐水洗涤后WRC可在4℃继续保存21d。     

测定红细胞保存液中腺嘌呤方法的探讨

血液保存液的研制成功，为输血事业的发展奠定了物质基础。尤其是腺嘌呤的发现，为延长血液保存，维持和恢复ATP、DPG水平及红细胞的活性起了重要作用。然而由于腺嘌呤在保存液中的含量很小，每个单位血在0．05～0．2mmol，一般情况下是不被人重视的。笔者在对悬浮红细胞保存液“MAP“质量的考察中发现，由于生产工艺和测定方法等因素的影响，使腺     

MAP洗涤和保存红细胞的效果观察

以生理盐水为洗液制备的洗涤红细胞 (WRC)制品 ,要求在 6h内输注完毕 ,最迟不得超过 2 4h[1] 。笔者尝试用甘露醇腺嘌呤磷酸二氢钠 (MAP)红细胞保存液替代传统的洗液生理盐水 ,采用全封闭联袋法或无菌导管连接 (STCD)技术联袋法来制备WRC制品 ;并对制备的WRC制品的红细胞在贮存期间功能、形态及代谢等相关指标进行了观察 ,现将结果报告如下。1　材料与方法1.1　MAP红细胞保存液　MAP每 10 0ml含枸橼酸 (H2 O)0 .0 2 0犂、枸橼酸钠 (2H2 O) 0 .15 0犂、葡萄糖 (无水 ) 0 .72 1犂、磷酸二氢钠 (2H2 O) 0 .0 94 犂、NaCl 0 .4 97犂…     

mPEG-SPA对红细胞A、B抗原的遮蔽及稳定性初步研究

目的探讨mPEG-SPA修饰对A、B、AB三种血型红细胞上A、B抗原的遮蔽效果及稳定性。方法采用合适浓度的mPEG-SPA修饰不同血型红细胞,并分别保存在O型血浆中以观察红细胞凝集情况、保存在原血浆和MAP液中以测定游离血红蛋白。结果连续保存45d,显微镜下观察mPEG-SPA修饰的红细胞在O型血浆中未见凝集,在原血浆中保存21d时血浆游离血红蛋白≤0.29g/L;在MAP液中保存35d时游离血红蛋白≤1g/L。结论在保存期内,经mPEG-SPA化学修饰的A、B、AB三种血型红细胞的抗原遮蔽效果稳定、游离血红蛋白指标均符合临床输血要求。     

红细胞抗原在构橼酸盐-磷酸盐-葡萄糖和新的保存液中延期保存时的稳定性

当制备高比积(>80%)的枸椽酸盐-磷酸盐-葡萄糖-腺嘌呤(CPDA-1)浓缩红细胞时,由于红细胞新陈代谢所需要的大量营养素随血浆之移除而移除,因此红细胞比积大于80%的CPDA-1红细胞, 在输后的存活率不太理想。作者设计了一套完整的塑料袋系统,在移除血浆后将一种含有腺嘌呤、葡萄糖和甘露醇的新的保存液(ADSOL)加到CPD压实红细胞中,直到5个星期,输注后24小时的平均存活率仍可达88%。由于保存的红细胞即使经较长时期保存还符合要求,所以作者又设计了一项研究来评价红细     

红细胞MAP

<正>红细胞MAP(Rc-MAP)是除去大部分血浆及白细胞和血小板,加入红细胞保存液MAP后的红细胞制剂,1992年日本赤十字社许可制备该红细胞制剂。1993年大阪赤十字血液中心已开始制备,至1994年已供应红绸胞MAP 420355U以替代浓缩红细胞,广泛应用于临床。     

可贮存洗涤红细胞的可行性观察

洗涤红细胞制品的临床应用随着输血水平的提高而呈上升趋势。由于洗涤红细胞制品保存期短,要求在6h内输注完毕,最迟不得超过2 4h[1] ,使此制品的使用在临床急诊、边远山区受到极大限制。我站于2 0 0 3年2月从河北省血液中心引进新技术项目可贮存洗涤红细胞的制备,很好的解决了这一供需矛盾,实现了洗涤后红细胞保存达35天的目的,做到随用随取。并在临床使用前对此制品的洗涤效果和保存效果进行了相关指标的观察,现将结果报告如下。　1　材料与方法　1.1　MAP红细胞保存液MAP每10 0ml含枸橼酸(H2 O) 0 .0 2 0g ;枸橼酸钠(2H2 O) 0 .15 0g …     

不同程度乳糜血制备洗涤红细胞的保存期中溶血率的初步分析

目的探讨不同程度乳糜血制备的红细胞保存液(MAP)混悬洗涤红细胞在保存期内的溶血率。方法将MAP混悬洗涤红细胞分对照、轻、中、重度乳糜血在2—6℃保存后测定其储存期末溶血率,并分别在储存期的d2、d7、d14、d21、d28、d30、d35取样检测红细胞的溶血率。结果 MAP混悬洗涤红细胞对照组、轻、中、重度乳糜组的储存期末溶血率分别为:(0. 156±0. 027)%、(0. 174±0. 049)%、(0. 271±0. 066)%、(0. 463±0. 127)%。MAP混悬洗涤红细胞乳糜程度不同,不同储存期红细胞溶血率均差异显著(P<0. 05)。结论在保存期内,使用轻中度乳糜血制备的MAP混悬洗涤红细胞质量控制指标符合国家标准要求。     

红细胞吸收噻唑橙动力学观察

目的了解噻唑橙(TO)在红细胞保养液MAP液中的吸收光谱特性及其稳定性;了解红细胞(RBC)对TO吸附吸收、洗脱的动态过程。方法用MAP液配制120 mmol/L TO-MAP液,4℃避光保存,于配制后d 0、3、17,分别用可见紫外分光光度计进行350～600 nm扫描,观察其吸收光谱的变化;配制成TO-MAP-RBC悬液,于第0、2、4、12、24 h分别离心,取上清液测定其350～600 nm的扫描光谱;取储存2 d的TO-MAP-RBC液,离心弃上清,加生理盐水洗涤6次,每次间隔20 min,收集每次洗涤液,测定其350～600 nm扫描光谱。结果 MAP液中TO吸收主峰位于468 nm,在430 nm和520 nm有2处肩峰,储存0、7 d TO-MAP液扫描线几乎完全重叠,储存17 d扫描线略有降低;TO-MAP-RBC悬液0、2、4、12、24 h其上清液的扫描线有较大的降低;洗涤液的扫描光谱显示,第1～2次洗涤TO被洗脱的量较大,第3～6次洗涤TO被洗脱的量较小,并趋于平稳。结论 TO在MAP液中非常稳定,这为TO光化学病原体灭活提供了必要条件;TO可被红细胞吸附或吸收;TO洗脱的动力学过程提示,为降低TO对测定红细胞活性功能指标的影响,可增加洗涤次数及延长洗涤间隔。     

血液保存期间红细胞凝集和形态改变

背景 已报道血液保存(35～42天,根据保养液)可诱发红细胞变化(例如,唾液酸水平降低),人们期望这可改变其凝集性。研究设计与方法 在整个保存期间,监测保存红细胞在自体血浆中的凝集性,并与含葡聚糖缓冲液的洗涤细胞相比较。用流动细胞计算机成像分析仪测定红细胞的凝集性。结果血液保存发生红细胞变化与其凝集性逐渐增强有关。同时,血液保存引起血浆纤维蛋白原减少,后者为血浆凝集因子。含葡     

两种洗液制备的洗涤红细胞的对比

在传统制备洗涤红细胞 (ＷＲＣ)的基础上 ,为方便临床应用ＷＲＣ制品 ,达到随用随取的目的 ,笔者尝试用ＭＡＰ红细胞保存液来取代生理盐水洗涤和保存红细胞 ,使红细胞在整个洗涤过程中始终处于ＭＡＰ的保护之中 ,避免生理盐水法在ＷＲＣ的制备中 ,红细胞长时间裸露于生理盐水中因缺乏供能物质可能造成的破坏。为此 ,笔者用集采血和洗涤于一体的全封闭四联袋 ,分别用生理盐水和ＭＡＰ为洗液制备ＷＲＣ制品各 30袋 ,并进行了质量检测 ,现将结果报告如下。1　材料与方法1 1　红细胞来源　本站制备的 1Ｕ悬液红细胞为盐水法原始红细胞 ,称重留样…     

CPD-腺嘌呤作为一种血液保存液——体外和体内的研究

红细胞的存活率取决于ATP水平。在贮存期间无论用那种保存液,ATP活性必然降低,但若将腺嘌呤添加到保存液后,则ATP活性降低较慢。ACD-腺嘌呤保存血有利于ATP的维持,CPD-腺嘌呤保存血对ATP和2,3-DPG的维持都有肯定的效果。本文进一步估价CPD-A保存液的效果。血液保存在含有腺嘌呤(0.25毫克分子/升)的CPD塑料袋中,在体外保存过程中(0～42天),通过测定细胞K~+、ATP、2,3-DPG、血浆K~+、Hb、pH、重碳酸盐和碱储来了解18名献血员全血的保存效果。在体内通过21名献血员90毫升CPD-A血液,经     

人血浆对红细胞保存的影响

为了研究人血浆对保存的红细胞结构和功能的影响，对悬浮红细胞、洗涤红细胞以及添加不同量血浆的红细胞成分血在不同保存时间内的红细胞的功能指标，包括pH值、K^＋浓度、Na^＋浓度、渗透脆性、血浆游离血红蛋白、乙酰胆碱酯酶活性、ATP含量、2．3-DPG、P50含量进行了比较。结果证明，血浆有利于保存血液维持其高pH值、低K^＋浓度和高Na^＋浓度，有利于保存红细胞维持其ATP含量、携氧能力和红细胞变形性，但对保存血液维持低渗透脆性，对保存血液的血浆游离血红蛋白、乙酰胆碱酯酶活性、ATP含量和2．3-DPG含量无影响。结论：在红细胞成分血中加入一定量的血浆可能有利于红细胞的长期保存。     

溶血性贫血患者输注红细胞保存添加剂洗涤红细胞及红细胞悬液的临床效果观察

科学研究表明输注红细胞保存添加剂洗涤红细胞（简称“洗涤红细胞”）较红细胞悬液可有效减少输血不良反应。为进一步了解洗涤红细胞在溶血性贫血（hemolytic anemia，HA）患者中的应用情况，评价其临床治疗效果，笔者对2003年6月至2005年6月100例输注洗涤红细胞的患者和100例输注红细胞悬液的患者进行回顾性对比分析，现报告如下。     

温度对冰冻红细胞保存的影响

目的观察不同温度条件下红细胞在冰冻、融化、洗涤后的质控指标,分析不同的保存、融化温度对红细胞的影响.方法各取20袋保养液为输血用复方枸橼酸钠抗凝剂(ACD-B)的全血,于采血后6 d内离心制成红细胞悬液,直接滴入(红细胞表面温度在5℃～10℃)红细胞低温保护剂或将红细胞和保护剂在37℃水浴后(红细胞表面温度20℃～22℃)再保存,-80℃冰冻保存数日后取出融化、洗涤.分别于融化后以及洗涤后立即取样测定红细胞回收率、游离血红蛋白.结果与未经加温而直接保存的红细胞相比,37℃水浴后的冰冻红细胞,融化洗涤后的红细胞回收率明显升高,游离血红蛋白明显减少.结论红细胞及低温保护剂经过37℃水浴后能更好地冰冻保存红细胞.但由于操作条件的限制,红细胞融化、洗涤后必须24 h内输注.     

野战运输对红细胞保存的影响

为了研究野战运输条件对几种血液成份的影响，为战时伤病员救治的血液保障提供依据，将红细胞悬液、少白细胞的红细胞悬液和洗涤红细胞经过模拟野战公路（三级公路）运输（震荡）4小时，然后在4℃条件下继续保存15天；取震荡前、后及保存15天的3个时间点的血样，分别进行上清游离血红蛋白、血常规和血生化分析。结果表明：红细胞悬液和少白细胞的红细胞悬液组游离血红蛋白、乳酸脱氢酶和钾离子浓度在震荡前、后及保存15天后的改变没有明显差异，而洗涤红细胞在震荡后上述三项指标显著增加，继续保存15天后，进一步增高。3个组中其它一些血液学指标没有明显的改变。结论：野战运输条件下（三级公路），采取合理的保温和减震措施后，运输4小时内红细胞悬液和少白细胞的红细胞悬液仍然可以继续保存15天并应用于临床，而洗涤红细胞则不能。     

两种不同厂家研制洗涤袋制备洗涤红细胞效果分析

正洗涤红细胞是临床最常用的血液制品之一,通过采用特定的方法将保存期内的全血、悬浮红细胞用大量等渗溶液洗涤,去除几乎所有血浆成分和部分非红细胞成分,并将红细胞悬浮在氯化钠注射液或红细胞添加液中制成的红细胞成分血。对于治疗因多次输血产生白细胞抗体以及器官移植后患者减少排斥反应起到非常重要的作用,本站应用两种厂家生产的洗涤袋(五联)制备洗涤红细胞,通过质量检测来选择质优洗涤袋进行洗涤红细胞的制备,现将