人趋化因子SLC原核表达载体的构建与表达

目的构建趋化因子SLC(secondary lymphoid-tissue chemokine)的硫氧还蛋白融合表达载体并表达融合蛋白.方法从人扁桃体中提取总RNA,再进行RT-PCR,扩增SLC成熟蛋白基因,并在5'和3'分别添加Nco Ⅰ和EcoRⅠ酶切位点,通过这两个酶切位点重组于pET32a( )载体上,转化E.coli DH5α,筛选阳性克隆,酶切鉴定,DNA测序检测插入序列的正确性,经突变删除因Nco Ⅰ位点引入而在肠激酶位点和目的基因间多余的3个氨基酸,DNA再测序检测突变结果,SDS-PAGE分析其表达,并通过金属离子亲和层析、除盐、弱阳离子交换层析,得到纯化的融合蛋白,Western blot验证纯化的融合蛋白.结果成功构建了SLC天然蛋白的硫氧还蛋白融合表达载体,表达并纯化出融合蛋白,Western blot证明该融合蛋白能与羊抗人SLC一抗结合.结论构建的天然SLC硫氧还蛋白融合表达载体以可溶性蛋白的方式稳定表达SLC硫氧还蛋白,并对融合蛋白进行了初步纯化.     

人NKp46基因克隆及其在大肠杆菌中的表达和纯化

目的：对人NKp46进行基因克隆并探讨其在大肠杆菌中重组表达和纯化。方法：用RT PCR法自人外周血单个核细胞总RNA扩增hNKp46片段（约900?bp）,克隆至质粒载体pMD18 T,并对克隆的DNA片段进行序列分析。用限制酶EcoRⅠ和NcoⅠ消化pMD18 T hNKp46重组质粒,分离hNKp46片段,并插入原核表达载体pET30a(+)的相应限制酶位点,酶谱分析鉴定重组表达载pET30a(+) hNKp46。转化菌株BL21(DE3)经IPTG诱导,用SDS PAGE和Western Blotting鉴定表达的重组蛋白。采用His·Bind Purification Kit对重组蛋白进行纯化。结果：RT PCR扩增的DNA片段与hNKp46 cDNA大小一致。重组质粒pMD18 T hNKp46的DNA序列分析显示,克隆的DNA序列与文献报道的hNKp46的cDNA序列一致。SDS PAGE表明,重组蛋白相对分子质量为38.5?kD,其表达量达菌体总蛋白的40％左右。Western Blotting分析显示,重组蛋白能特异地与抗His·Tag抗体结合。纯化得到纯度为95.5％的重组蛋白,纯化回收率达40％。结论：成功构建了人NKp46表达载体,并获得了稳定表达的工程菌株,纯化了重组蛋白。     

Thanatin突变体在大肠杆菌中的表达及纯化

目的:在大肠杆菌中克隆表达thanatin突变体(Th-T)蛋白并纯化. 方法:PCR合成Th-T基因并克隆到pET32a载体的BamHⅠ和XhoⅠ酶切位点之间,构建Th-T原核表达载体(pET32a-Th-T)并转化到大肠杆菌BL21融合表达,通过正交实验优化表达条件,His-Bind介质纯化.考察经酶切纯化后的重组Th-T对4种供试菌的最低抑制浓度.结果:菌体在LB培养基(pH 6.5)培养4.5 h,IPTG 0.4 mmol·L-1诱导7 h,Th-T融合蛋白大量可溶性表达,经药敏试验证明纯化的重组Th-T具有预期的抗菌活性.结论:本研究为通过大肠杆菌体系表达重组Th-T抗菌药物奠定了基础.     

人转录因子sp1在大肠杆菌中的表达与体外纯化

目的：在大肠杆菌中表达人源转录因子spl蛋白,并进行体外纯化。方法：首先将人源sp1真核表达质粒pCMV-sp1中的sp1 cDNA用限制性内切酶切开,连入原核表达质粒pET28b,构建原核表达重组质粒pET28b-sp1-699c;然后将重组质粒转化入大肠杆菌BL21（DE3）菌株,经IPTG诱导表达带His-Tag的融合蛋白His-sp1（88-786aa）,通过包涵体的变复性和Ni-IDA亲和层析纯化后,SDS-PAGE鉴定纯化后的蛋白。结果：融合蛋白His-sp1在大肠杆菌内得到高效表达,纯化后可得到较高纯度的蛋白。结论：本研究获得了较高纯度的融合蛋白His-sp1,为进一步研究sp1蛋白对靶基因的转录调控奠定了基础。     

人醛缩酶A在大肠杆菌中的表达及纯化

目的 用基因工程生产人醛缩酶A(ALDOA),为后续酶学研究奠定基础。方法 用Snapgene设计一对5′分别附加Nde I和Xho I位点的引物,PCR扩增ALDOA cDNA,cDNA与质粒pET-28a经Nde I+Xho I酶切后用琼脂糖凝胶电泳分离、胶回收纯化。用DNA连接酶连接cDNA和pET-28a,连接产物转化大肠杆菌Top10,于卡那霉素的LB平板(LBK板)筛选抗性菌落。于LBK培养基培养抗性菌落,抽提质粒,酶切和测序鉴定。将重组质粒转化大肠杆菌BL21(DE3),同法筛选抗性菌落,于LBK培养基培养抗性菌落,0.2mmol/LIPTG,16℃诱导24h。超声破碎细胞,离心取上清,用Ni²⁺-NTA试剂盒纯化ALDOA。超滤浓缩纯化的ALDOA,用pH7.0磷酸缓冲液交换洗脱液,降低ALDOA溶液中的咪唑浓度。BCA法测定重组ALDOA浓度并保存。结果 大肠杆菌表达质粒pET-28a-ALDOA构建成功,重组菌pET-28a-ALDOA-BL21(DE3)经0.2mmol/LIPTG诱导后,ALDOA获得可溶性表达,产量达600mg/L。结论 ...     

小鼠金属硫蛋白—Ⅰ在大肠杆菌中的表达与分离纯化

目的：在大肠杆菌中表达小鼠金属硫蛋白－Ⅰ，并研究其分子结构和生物学功能。方法：将小鼠金属硫蛋白－Ⅰ基因克隆入融合表达载体pGEX-4T-1中，转化大肠杆菌BL21，得到含重组表达质粒pGMA的工程菌。结果：经IPTG诱导，表达出分子量约为33KD的融合蛋白。然后经Glutathione-Sepharose4B亲和纯化后，用凝血酶切除GST部分。经SephacrylS-100过滤纯化，得到结合有Cd^2 的小鼠金属硫蛋白－Ⅰ。产率约为3mg/L培养液。结论：成功制备了表达MT的工程菌。     

大肠杆菌表达人MCP-1的活性

0　引言　趋化因子在人类肿瘤的发生及其生物学行为中所起的作用越来越为人们重视 .利用原核表达载体 p GEX- 4T- 1在大肠杆菌中重组表达人单核细胞趋化蛋白 - 1(MCP- 1) ,并在体外和体内实验中对其生物学活性进行了初步的研究 .1　材料和方法1.1　材料　原核表达载体 p GEX- 4T- 1及大肠杆菌菌株JM10 9由本校分子生物学研究所提供 .Balb/ c nu/ nu小鼠 ,6～ 8wk龄 ,雌性 ,体质量 14～ 16 g,由上海肿瘤研究所提供 .胃癌 SGC790 1细胞系由西京医院消化病研究所提供 .1.2　方法1.2 .1　融合蛋白 GST- MCP- 1的表达　将人 MCP- 1基…     

人Era蛋白在大肠杆菌中的高效表达及其纯化

目的 在大肠杆菌中对人era基因（简称hera)进行表达、纯化。方法 PCR扩增hera基因,测序正确后克隆入大肠杆菌融合表达载体pRSET-C,重组质粒pRSETC-hera以大肠杆菌BL21（DE3）为宿主菌,用IPTG进行诱导表达。然后利用亲和层析的方法对表达蛋白进行纯化。结果 克隆了hera基因,测序正确;利用pRSET-C载体在大肠杆菌中融合表达了全长hera-cDNA基因,表达量占细菌总蛋白的59．6％。融合蛋白在菌体内主要以包涵体形成存在,在变性条件下用Ni-NTA亲和色谱柱纯化此融合蛋白,其纯度达到了98．0％。结论 利用基因重组技术在大肠杆菌中高表达了hera基因。并对融合蛋白进行了初步纯化。     

趋化因子SDF-1β在大肠杆菌中的表达及其纯化

目的　重组人SDF 1 β在大肠杆菌中表达并获得纯化的有生物学活性的SDF 1 β蛋白。 方法　以pET32a( + ) SDF 1为人SDF 1 β克隆基因的表达载体 ,以大肠杆菌AD494(DE3)pLysS为表达菌 ,在IPTG诱导下表达出一个由 2 30个氨基酸残基组成的硫氧还蛋白 (thioredoxin) SDF 1 β的融合蛋白 ( 2 6× 1 0 3)。经细菌裂解、金属离子螯合亲和层析、肠激酶消化以游离SDF 1 β、阳离子交换层析和逆向高效液相层析等步骤纯化目的蛋白。以蛋白印迹、纯化产物的N端氨基酸测序及配体结合试验、微生理监测术鉴定纯化产物的生化性质及生物学活性。结果　在经诱导的发酵菌中融合蛋白占总菌体蛋白的 1 0 %～ 1 5 %。从 1L发酵菌液中可获得高纯度目的蛋白约 40 0 μg。蛋白印迹实验及N端氨基酸测序皆证实纯化终产物为SDF 1 β(由 71个氨基酸残基组成 ,7.8× 1 0 3)。配体结合试验及Cytosensor表明 ,该产物能与CXCR4结合 [Kd =( 1 2 .2 0± 2 .99)nmol L]并引起CXCR4表达细胞的信号传导。结论　采用本方法可获得高表达的 ,高纯度的具有与天然SDF 1 β相似活性的重组人SDF 1 β。     

重组人野生型P53融合蛋白在大肠杆菌中的高效表达与纯化

目的研究wtP53蛋白对肿瘤的治疗效果,提供药用wtP53融合蛋白。方法在本室构建的人野生型P53融合蛋白的原核细胞表达载体PGEX-3X-P53的基础上,IPTG诱导大肠杆菌表达wtP53融合蛋白,通过亲和层析柱纯化和因子Xa处理,SDS-PAGE分离。结果通过IPTG诱导后,在大肠杆菌中获得人野生型P53融合蛋白的高效表达,经过亲和层析纯化和Western印迹实验,表明获得重组人野生型P53融合蛋白。结论原核细胞表达的人wtP53融合蛋白具有天然P53蛋白的抗原性,可用于P53蛋白的体内外活性鉴定,以进一步应用于临床。     

Expression and purification of recombinant human chemokine SDF—1βin E.coli

Objective: To obtain recombinant human SDF-1β expressed in E. coli and purify SDF-1β with biological activity from the bacterium. Methods: A thioredoxin-SDF-1β fusion protein (26 × 103) composed of230 amino acid residues was expressed in E. coli AD494 (DE3)pLysS under the induction of IPTG when pET32a(+)-SDF-1β was used as an expression vector. Purified SDF-1β was produced through following procedures: Bacteria lysis, metal-chelated affinity chromatography (MAC), enterokinase digestion to separate SDF-1β from fusion protein, cation exchange chromatography (CEC) and reverse-phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC). Western blot with anti-SDF-1β monoclonal antibody (mAb), N-terminal amino acid sequencing, ligand-binding assay and cytosensor/microphysiometry were used to investigate the biochemical characters and biological activities of the purified SDF-1β. Results: From 10% to 15% of total bacterium protein was expressed as fusion protein. Approximately 400μg purified SDF-1β (7. 8 × 103) consisting of 71 amino acid residues were produced from 1 L of fermented bacteria. Western blot showed that anti-SDF-1β mAb bound with the purified SDF-1β specifically. N-terminal amino acid sequencing indicates that N-terminus of purified SDF-1β possessed as the same amino acid sequence as nature one. Purified SDF-1β not only had the binding activity with CXCR4 expressing cells [Kd = ( 12.20± 2. 99) nmol/L ], but also activated CXCR4 expressing cell signaling specifically in a dose-dependence manner. Conclusion: The purified recombinant human SDF-1β produced with this method possesses biochemical characters and biological activities as same as those nature human SDF-1β.     

重组NADPH-细胞色素P450还原酶在大肠杆菌中的表达和纯化

目的 在大肠杆菌中表达重组NADPH-细胞色素P450还原酶(CPR)并纯化获得有活性的CPR蛋白。方法 将已构建的NADPH-细胞色素P450还原酶重组质粒pMWl72a-CPR采用温和转化法转入大肠杆菌BL-21中,依次使用超速离心、DE52纤维素阴离子交换层析和2’-5’ADP亲和层析的方法纯化CPR,并检测酶的活性。结果 获得了纯度达99％以上的可溶性CPR蛋白,纯化倍数5、20倍,检测酶的比活性为每分钟1045．49nmol／mg。结论获得了纯度高、有活性的CPR蛋白,可作为工具酶用于某些相关酶的研究,同时也为CPR的工业纯化提供了可行的参考路线。     

白细胞介素31在E.coli中的表达及活性鉴定

目的构建人IL-31原核表达载体，在大肠杆菌中表达，研究人IL-31对人表皮角化细胞分泌趋化因子MIP-3β的活性影响。方法大量培养pET28a（＋）-hIL-31工程菌株，提取质粒，BamHI、HindⅢ双酶切，并将其连接到原核表达载体pET32a（＋），通过IPTG诱导目的基因在大肠杆菌中表达。用RT-PCR检测该目的蛋白对人表皮角化细胞HaCaT表达趋化因子MIP-3β的影响。结果原核表达质粒pET32a（＋）-hIL-31构建正确，经双酶切、PCR和序列测定鉴定，序列正确，IPTG诱导目的基因在大肠杆菌中大量表达，纯化后的目的蛋白可刺激人表皮角化细胞表达MIP-3β。结论原核表达质粒pET32a（＋）-hIL-31构建正确，纯化后的蛋白具有生物学活性，可刺激人表皮角化细胞表达趋化因子MIP-3β，为研究人IL-31的作用及其作用机制和制备单克隆抗体奠定了基础。     

重组血红素加氧酶-2在大肠杆菌中表达与纯化方法的研究

目的　确定重组血红素加氧酶 2在大肠杆菌中表达与纯化方法。方法　将已构建的血红素加氧酶 2(HO 2 )的重组质粒pMW1 72a HO 2转入大肠杆菌BL 2 1 ,分析不同温度及摇床转速对HO 2表达的影响 ,确定可溶性表达最佳条件。使用超声波、超速离心、分级盐析、分子筛层析等方法纯化HO 2。检测酶活性。结果　确定了HO 2可溶性表达最佳条件为 37℃ ,(85± 5 )r min ;确定了HO 2具体纯化路线。得到蛋白纯度为 95 .0 % ,纯化倍数为 2 .9倍 ,收得率为 4 0 .9%的活性HO 2蛋白。结论　获得了纯度高、具有活性的HO 2蛋白 ,为进一步进行HO 2结构与功能之间关系的研究提供了可行的纯化路线     

重组人白细胞介素－3在大肠杆菌中表达及纯化研究

将化学合成的人白细胞介素－３（ｈＩＬ－３）基因与表达质粒ｐＫＫ２２３－３重组并转化大肠杆菌ＪＭ１０５，重组菌在摇瓶中发酵并诱导表达，表达产量达菌体蛋白质总量的５３％以上。发酵菌经超声破碎后得到包含体，经洗涤处理使包含体纯度达９０％以上。用８ｍｏｌ／Ｌ盐酸胍溶解包含体后直接透析复性，复性液经Ｓｅｐｈｏｒｏｓｅ－ＳＰ离子交换层析，得到纯化的重组ｈＩＬ－３，纯度达９８％。用ＴＦ－１细胞进行体外检测活性，比活达到１０８单位／ｍｇ蛋白质。本研究为重组人白细胞介素－３的大规模生产提供了条件。     

大肠杆菌表达的重组人骨形成蛋白—3C端肽的纯化

目的：在用大肠杆菌表达人骨形成蛋白－３羧基端肽段获得成功的基础上，进一步探讨ｒｈＢＭＰ－３Ｃ的纯化方法。     

血管生成素与绿色荧光蛋白融合蛋白的表达及纯化

目的:表达并纯化血管生成素(ANG)与增强型绿色荧光蛋白(EGFP)融合蛋白,以进一步探讨血管生成素的生物学功能。方法:PCR扩增人ANG基因,将其与EGFP基因融合后克隆到高表达载体pMFHT,构建了原核表达质粒pHIS鄄ANG鄄EGFP。该质粒转化大肠杆菌BL21(DE3),IPTG诱导表达,并用金属螯合亲和层析纯化目的蛋白。激光共聚焦显微镜和Westernblot鉴定融合蛋白的表达情况。结果:重组蛋白在大肠杆菌中得到高效表达,并从破菌上清中一步纯化目的蛋白,纯度可达95%以上。Westernblot分析表明表达产物具有良好的抗原性和特异性。诱导表达的菌体在激光共聚焦显微镜下可发射明亮的绿色荧光。结论:成功的表达并纯化了ANG鄄EGFP融合蛋白,利用EGFP的荧光示踪作用,该融合蛋白可用于血管生成素核转位和胞内共定位蛋白质研究。