表达幽门螺杆菌尿素酶B亚单位基因减毒鼠伤寒沙门疫苗菌的构建和鉴定

目的构建表达幽门螺杆菌(Helicobacter     

金属螯合亲和层析法对重组幽门螺杆菌尿素酶B亚单位的纯化

背景：幽门螺杆菌（H.pylori)疫苗是近年研究的热点。H.pylori尿素酶B亚单位（UreB)是理想的候选抗原。目的：获得纯化的重组H.pylori UreB(rUreB)，为进一步的H.pylori疫苗制备打下基础。方法：采用金属螯合亲和层析法（MCAC）在变性条件下纯化rUreB,SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）和免疫印迹法鉴定纯化产物的分子量、纯度和抗原性。结果：纯化产物的分子量与预计分子量相符，具有良好的特异性UreB免疫原性，且一步即可达到90％以上的纯度。结论：MCAC是一种简单、高效的rUreB纯化方法。     

多组分重组减毒沙门疫苗菌对幽门螺杆菌感染的免疫保护作用

目的　利用人类幽门螺杆菌 (Helicobacterpylori,Hp)感染的小鼠模型研究多组分重组减毒沙门疫苗菌对幽门螺杆菌感染的免疫保护作用。方法　将二级C5 7BL/ 6小鼠随机分成 6组 ,通过灌胃方法分别给予生理盐水 (A组 )、PBS(B组 )、减毒鼠伤寒沙门菌SL32 6 1(C组 )、重组减毒鼠伤寒沙门菌pTrc99A -ureB +pGSTag -katA(D组 )、重组减毒鼠伤寒沙门菌pTrc99A -ureB +pTrc99A -HPaA(F组 )及重组减毒鼠伤寒沙门菌 pTrc99A -ureB +pGSTag -katA +pTrc99A -HPaA(F组 )。免疫后 4周 ,予Hp进行攻击 (A组不攻击 )。攻击菌量 10 7CFU/只 ,灌胃 2次 ,每日 1。再 4周后处死动物 ,取胃组织分别行尿素酶试验、改良Giemsa染色及定量细菌培养 ,观察Hp定植情况。行HE染色观察胃粘膜组织炎症情况。取脾组织行淋巴细胞增殖试验。结果　A组小鼠Hp定植密度为 0 ,B组为 9 4 9× 10 6CFU/ g胃组织 ,C组为 1 4 2× 10 6CFU/ g胃组织 ,D组、E组和F组小鼠分别为 2 92× 10 5CFU/g、5 5 1× 10 5CFU/g和 2 16× 10 5CFU/g胃组织 ,C组、D组、E组和F组与A组和B组相比定植密度均明显降低 (P <0 0 5 )。免疫组与对照组胃粘膜均无明显炎症反应。免疫组脾淋巴细胞增殖试验阳性。结论　口服多组分重组减毒沙门疫苗菌对小鼠Hp感染具有一定免     

幽门螺杆菌尿素酶B亚单位的疫苗研究进展

幽门螺杆菌（Helicobacter pylori,H.pylori）是一种定植在人胃和十二指肠的微需氧、革兰氏阴性、螺旋弯曲菌。H.pylori是上消化道的主要致病菌,与胃炎、消化性溃疡、胃粘膜相关淋巴组织淋巴瘤（MALT）和胃癌等疾病的发生密切相关。     

表达幽门螺杆菌NAP蛋白的减毒沙门疫苗菌株预防幽门螺杆菌感染

目的建立表达幽门螺杆菌(Helicobacterpylori,Hp)中性粒细胞活化蛋白(Hp-NAP)的减毒沙门疫苗菌,并利用人类幽门螺杆菌感染的小鼠模型研究疫苗菌对Hp感染的免疫保护作用。方法利用分子克隆技术构建携带Hp-NAP基因的重组原核表达质粒pTrc99A-NAP,经PCR及酶切鉴定后测定其基因序列,并与美国国立医学图书馆基因文库中相关序列的同源性进行比较。重组质粒pTrc99A-NAP转化减毒伤寒沙门菌SL3261,培养后筛选阳性菌落,抽提质粒进行PCR及酶切鉴定。表达的Hp-NAP蛋白用SDS-PAGE和West-blotting进行鉴定,用薄层扫描分析蛋白含量。C57BL/6小鼠随机分成4组,分别灌胃给予生理盐水(A组)、减毒鼠伤寒沙门菌SL3261(B组)、携带pTrc99A的SL326组(C组)、携带pTrc99A-NAP的SL326组重(D组)。免疫后4周,予Hp攻击,攻击菌量107CFU/只,灌胃2次,每日1次。攻击4周后处死动物,取胃组织分别行改良Giemsa染色及定量细菌培养,观察Hp定植情况。结果核苷酸序列测定及同源性分析证实,克隆的Hp-NAP基因与GenBank中相关序列的同源性为98%(397/402),氨基酸序列的同源性为98%(131/133)。pTrc99A-NAP转化的减毒沙门菌,可表达Mr约15000的Hp-NAP蛋白,表达量约占菌体蛋白量的37·5%;表达的新生蛋白能与小鼠抗Hp血清特异性反应,具有良好的免疫原性。同空白对照组、SL3261组和SL3261(pTrc99A)组相比,表达Hp-NAP的疫苗株组实验动物的胃组织Hp定植密度明显下降(P<0·05)。结论成功构建表达Hp-NAP的减毒沙门疫苗菌;重组疫苗菌对小鼠Hp感染具有一定免疫预防作用,可作为未来多组分重组减毒沙门疫苗菌的侯选菌株之一。     

表达幽门螺杆菌尿素酶B亚单位的减毒鼠伤寒杆菌口服疫苗的制备

目的制备抗幽门螺杆菌(Hp)尿素酶B亚单位(UreB)减毒鼠伤寒杆菌活菌疫苗,观察其免疫效果.方法构建表达UreB的原核表达载体PTc01-UreB并转化减毒鼠伤寒杆菌SL3261,得到重组菌SL3261/PTc01-UreB.应用抗Hp菌体蛋白兔血清行Western-blot检测UreB在SL3261中的表达.将SL3261/PTc01-UreB口服免疫Balb/c小鼠,12周后应用ELISA检测肠液和血清中的特异性抗体反应.SL3261/PTc01-UreB在Luria-Bertani培养液中连续传代60代以确定其稳定性.结果成功构建PTc01-UreB原核表达载体.Western-blot显示,其转化减毒鼠伤寒杆菌SL3261后能表达相对分子质量约61×103的蛋白,与HpUreB亚单位相符,具有抗原性.口服免疫小鼠后,在肠液和血清中可分别检测到针对UreB的特异性IgA和IgG抗体.体外连续培养60代未见PTc01-UreB质粒丢失及对宿主细胞毒性.结论表达HpUreB的减毒鼠伤寒杆菌SL3261/PTc01-UreB可用作抗Hp感染口服疫苗.     

幽门螺杆菌尿素酶B亚单位在大肠杆菌中的融合表达与鉴定

目的 通过对幽门螺杆菌（Helicobacter pylori,Hipylori)尿素酶B亚单位在大肠杆菌中表达的研究，探索其免疫反应性。方法 用高保真PCR方法扩增H.pylori ureB基因，并定向克隆人pNEB193中，然后经酶切回收后插入原核表达载体pMAL-C2X进行融合表达。采用蛋白印迹法对表达产物进行鉴定。结果 特异PCR和酶切鉴定证实融合基因ureB克隆人表达载体，SDS-PAGE结果显示ureB在大肠杆菌中以融合蛋白形式MBP-ureB高效表达，约占细胞总蛋白量的26.7%。该融合蛋白可与H.pylori阳性病人血清发生特异反应。结论 成功构建了高效表达H.pylori ureB的重组菌，为Hp基因工程疫苗的进一步研究奠定了基础。     

幽门螺杆菌过氧化氢酶脂质体疫苗免疫预防研究

目的探讨制备脂质体包裹重组幽门螺杆菌过氧化氢酶(Kat)口服疫苗的方法,并用Hp感染的小鼠模型评价其在预防Hp感染中的作用。方法将PET-22(+)/Kat在BL21(DE3)大肠杆菌表达,表达Kat的包涵体经洗涤、变性、复性,采用Q Sepharose Fast Flow阴离子交换层析和Sephacryl S-200凝胶过滤层析分离纯化Kat重组蛋白,用薄膜分散法制备以卵磷脂和胆固醇为膜组分包裹的Kat重组蛋白口服疫苗,并用透射电镜测定其粒径。BALB/c小鼠分为5组,分别通过灌胃方法给予PBS、空白脂质体、Kat重组蛋白+CT、脂质体包裹Kat重组蛋白、脂质体包裹Kat重组蛋白和CT,每周1次共4次,末次攻击2周再用活Hp攻击3次,3周后处死小鼠,行胃组织快速尿素酶试验、Hp的定植半定量、炎症程度及其炎症活动度的评分。结果以包涵体为主的表达产物占全菌总蛋白的24.4%,经纯化获得纯度为95%的重组蛋白,制备的脂质体粒径为0.7±0.4μm。PBS组和空白脂质体组保护率均为0,而Kat重组蛋白+CT组、脂质体包裹Kat重组蛋白组、脂质体包裹Kat重组蛋白和CT组的保护率分别为73.3%、66.7%和86.7%,且均能使免疫小鼠胃粘膜Hp感染数目明显减少,炎症反应减轻。结论口服脂质体部能分代替免疫佐剂的作用,将其作为Hp疫苗的免疫佐剂,具有广泛的应用前景。     

重组幽门螺杆菌过氧化氢酶脂质体疫苗免疫预防研究

目的探讨制备脂质体包裹重组幽门螺杆菌过氧化氢酶(Kat)口服疫苗的方法,并用Helicobacterpylori感染的小鼠模型评价其在预防H·pylori感染中的作用。方法将PET_22( )/Kat在BL21(DE3)大肠杆菌表达,表达Kat的包涵体经洗涤、变性、复性,采用QSepharoseFastFlow阴离子交换层析和SephacrylS_200凝胶过滤层析分离纯化Kat重组蛋白,用薄膜分散法制备以卵磷脂和胆固醇为膜组分包裹的Kat重组蛋白口服疫苗,并用透射电镜测定其粒径。BALB/c小鼠分为5组,分别通过灌胃方法给予PBS、空白脂质体、Kat重组蛋白 霍乱毒素(CT)、脂质体包裹Kat重组蛋白、脂质体包裹Kat重组蛋白和CT,每周1次共4次,末次攻击2周再用活H·pylori攻击3次,3周后处死小鼠,行胃组织快速尿素酶试验、H·pylori的定植半定量,取脾组织行淋巴细胞增殖试验。结果以包涵体为主的表达产物占全菌总蛋白的24.4%,经纯化获得纯度为95%的重组蛋白,制备的脂质体粒径为0.7±0.4μm。PBS组和空白脂质体组保护率均为0,而Kat重组蛋白 CT组、脂质体包裹Kat重组蛋白组、脂质体包裹Kat重组蛋白 CT组的保护率分别为73.3%、66.7%和86.7%,且均能使免疫小鼠胃黏膜H·pylori感染数目明显减少,三个疫苗组淋巴细胞增殖试验均为阳性。结论口服脂质体能部分代替免疫佐剂的作用,将其作为H·pylori疫苗的免疫佐剂,具有广泛的应用前景。     

幽门螺杆菌尿素酶B亚单位编码基因的克隆与序列分析

目的 幽门螺杆菌(Helicobacter pylori)尿素酶B亚单位的编码基因(ureB)的克隆和序列分析，为H．pylori基因工程疫苗的研究奠定基础。方法应用PCR方法获得国内分离H．pylori菌株MEI，HP27和国际标准参考株H．pylori的ureB基因，通过定向克隆的方法分别插入克隆载体pNEB193中，用质粒酶切电泳和特异PCR方法鉴定重组质粒。克隆基因经测序后进行核苷酸和氨基酸的同源性比较。结果 重组质粒经双酶切后得到1．71kb的ureB基因片段，特异PCR可扩增出ureB基因片段，证实H．pylori ureB基因的重组克隆质粒构建成功。经测序，国内分离H．pylori MEL-HP27的ureB基因全长1710bp( Genbank收录号：AY295085)，编码由569个氨基酸残基组成的肽链，ureB基因序列与GenBank公布的H．pylori相应基因同源性高达96．08％～98．30％，氨基酸序列同源性在98．77％．99．82％之间。结论 成功克隆了MEL-HP27菌株的ureB基因，其核苷酸序列与国际参考株NCTC11637的同源性为97．67％。     

Systemic immune responses to oral administration of recombinant attenuated Salmonella typhimurium expressing Helicobacter pylori urease in mice

AIM: To evaluate whether attenuated Salmonella typhimurium producing Helicobacter pylori(H pylori) urease subunit B (UreB) could induce systemic immune responses against Hpylori infection. METHODS: Attenuated 5. typhimurium SL3261 was used as a live carrier of plasmid pTC01-UreB, which encodes recombinant H pylori UreB protein. Balb/c mice were given oral immunization with two doses of SL3261/pTC01-UreB at a 3-wk interval. Twelve weeks after oral immunization of mice, serum IgG antibodies were evaluated by ELISA assay. Gamma interferon (IFN-γ) and interleukin 10 (IL-10) in the supernatant of spleen cell culture were also assessed by ELISA. RESULTS: After oral immunization of mice, serum specific IgG antibodies against UreB in vaccine group were much higher than that in PBS and native Salmonella SL3261 control groups (A450, 0.373±0.100 vs 0.053±0.022, 0.142±0.039, respectively, P<0.01). Moreover, IFN-γ in vaccine group was on average 167.53±29.93 pg/mL, which showed a significant increase vs that of PBS control group (35.68±3.55 pg/mL, P<0.01). There was also a tremendous increase of IL-10 in vaccine group compared to PBS and SL3261 control groups (275.13±27.65 pg/mL vs 56.00±7.15 pg/mL, 68.02±15.03 pg/mL, respectively, P<0.01). In addition, no obvious side effects in mice and no change in gastric inflammation were observed. CONCLUSION: The multiple oral immunizations with the attenuated 5. typhimurium expressing Hpylori UreB could induce significant systemic immune responses, suggesting it may be used as oral vaccine against H pylori infection.     

表达幽门螺杆菌hpaA基因的减毒鼠伤寒沙门氏菌对小鼠的免疫保护作用

目的　克隆幽门螺杆菌 (H pylori)全长hpaA基因 ,构建表达HpaA蛋白的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌 ,并研究其对小鼠的免疫保护作用。方法　用PCR扩增全长hpaA基因 ,经适当的酶切 -连接反应将其连入原核表达质粒 pTrc99A ,并进行了基因测序。重组质粒经鉴定后再导入减毒鼠伤寒沙门氏菌SL32 6 1,提取重组菌质粒 ,PCR和酶切鉴定 ,筛选阳性克隆。用SDS -PAGE电泳和Westernblot进行HpaA表达分析和鉴定 ,用薄层扫描分析HpaA含量。重组菌 3× 10 8CFU/ 0 4ml/只免疫C5 7BL/ 6小鼠 ,4周后H pyloriSS110 5CFU/只攻击小鼠 ,再 5周后处死小鼠 ,取腺胃做快速尿素酶试验和Giemsa染色 ,以明确H pylori定植情况 ,对照观察免疫保护效果。 结果　经PCR和酶切证实 ,构建了含 783bphpaA基因的重组原核表达质粒 pTrc99A -hpaA ,并将后者成功转化了减毒鼠伤寒沙门氏菌。重组菌能表达约 30kDaHpaA蛋白 ,重组HpaA量约占全菌体蛋白量的 38 9% ,Westernblot证实其有免疫反应性。重组菌对小鼠免疫保护率为 4 3 4 8% (10 / 2 3) ,与空白对照组比统计差异显著 (P =0 0 1)。结论　构建了表达H pyloriHpaA的重组减毒鼠伤寒沙门氏菌 ,该菌株对C5 7BL/ 6小鼠有免疫保护作用。     

幽门螺杆菌尿素酶临床应用和疫苗研制进展

尿素酶为幽门螺杆菌在胃内定植和生存所必需,是幽门螺杆菌的主要毒力因子。近年来,对幽门螺杆菌尿素酶分子生物学特性、致病机理的深入研究使人们在幽门螺杆菌的诊断、治疗和疫苗研制方面有了一些新的认识和进展。     

优化构建UreB/HpaA双价幽门螺杆菌减毒活菌疫苗的免疫保护作用

目的 以减毒鼠伤寒沙门菌为载体，通过在UreB和HpaA间引入由3个甘氨酸残基组成的三肽柔韧接头，构建成UreB／HpaA双价抗幽门螺杆菌(Hp)活疫苗，并对照相应单价疫苗和空白载体研究其对C57BL／6小鼠的免疫保护效果。方法 用序列重叠延伸聚合酶链反应扩增带3个甘氨酸残基柔韧接头的融合基因UreB／HpaA，进一步以减毒鼠伤寒沙门菌SL3261为载体构建UreB／HpaA双价活疫苗，观察其在小鼠体内的稳定性。用双价活疫苗株免疫Ⅱ级C57BL／6小鼠1次，对照单价活疫苗和空白载体观察其在体内诱导的特异抗体反应和对小鼠的免疫保护作用。结果 测序结果显示，3个甘氨酸残基的编码序列GGTGGAGGC已成功地插入UreB／HpaA融合基因中。双价疫苗灌喂小鼠后，至少能在脾脏和回肠末段存留10d。双价疫苗在小鼠体内诱导血清特异性IgGl和IgG2a水平明显升高。UreB／HpaA双价疫苗的免疫保护率为77．3％(17／22)，而UreB疫苗和HpaA疫苗的免疫保护率分别为50．0％(12／24)和43．5％(10／23)。结论 引入柔韧接头，优化构建表达UreB和HpaA的双价抗Hp活疫苗。UreB／HpaA双价活疫苗对Ⅱ级C57BL／6小鼠有更好的免疫保护作用。     

Construction of a recombinant attenuated Salmonella typhimurium DNA vaccine carrying Helicobacter pylori hpaA

AIM: To construct a recombinant attenuated Salmonella typhimurium DNA vaccine carrying Helicobacter pylori hpaA gene and to detect its immunogenicity. METHODS: Genomic DNA of the standard H pylori strain 17 874 was isolated as the template, hpaA gene fragment was amplified by polymerase chain reaction (PCR) and cloned into pUCmT vector. DNA sequence of the amplified hpaA gene was assayed, then doned into the eukaryotic expression vector pIRES through enzyme digestion and ligation reactions. The recombinant plasmid was used to transform competent Escherichia coliDH5α, and the positive clones were screened by PCR and restriction enzyme digestion. Then, the recombinant pIRES-hpaA was used to transform LB5000 and the recombinant plasmid isolated from LB5000 was finally used to transform SL7207. After that, the recombinant strain was grown in vitro repeatedly. In order to identify the immunogenicity of the vaccine in vitro, the recombinant pIRES-hpaA was transfected to COS-7 cells using Lipofectamine~(TM)2000, the immunogenicity of expressed HpaA protein was detected with SDS-PAGE and Western blot. RESULTS: The 750-base pair hpaA gene fragment was amplified from the genomic DNA and was consistent with the sequence of H pylori hpaA by sequence analysis. It was confirmed by PCR and restriction enzyme digestion that H pylori hpaA gene was inserted into the eukaryotic expression vector pIRES and a stable recombinant live attenuated Salmonella typhimurium DNA vaccine carrying H pylori hpaA gene was successfully constructed and the specific strip of HpaA expressed by pIRES-hpaA was detected through Western blot. CONCLUSION: The recombinant attenuated Salmonella typhimurium DNA vaccine strain expressing HpaA protein with immunogenicity can be constructed and it may be helpful for further investigating the immune action of DNA vaccine in vivo.