大鼠双侧供肾移植模型的建立

目的：首创了一种可以同时取供体的双肾作供肾的大鼠肾移植模型。方法：以近交系Brown-Norway大鼠和近交系Lewis大鼠作为供、受体,取供体的双肾作为供肾,借助静脉支架管,行供体的静脉与受体肾静脉的端端吻合,肾动脉与腹主动脉行端侧吻合。结果：手术均于60min内完成。所有的受体均存活超过7天,围手术期死亡数为0。结论：首创双侧供肾大鼠肾移植模型是一种节省、可靠、实用的大鼠肾移植模型。     

大鼠自体原位肾移植缺血再灌注损伤模型的建立

目的 :建立一种简便的大鼠自体原位肾移植模型 ,以便于研究肾移植后缺血再灌注损伤 (IRI)与肾移植后肾脏损伤的关系。方法 :雄性SD大鼠 2 0只 ,自体原位肾移植组 (A组 )和假手术组 (B组 )各 10只。左腰部纵切口 ,采用显微外科技术在后腹膜间隙游离左侧输尿管及肾脏、肾蒂。A组 :以无损伤动脉夹闭合肾动脉 ,采用管径0 .2mm的玻璃穿刺针经肾动脉恒压 ( 10 0mmHg)灌注 1ml 0～ 4℃生理盐水 ,至肾脏颜色变白后暂时阻断肾动、静脉 ,吻合肾动脉切口 ,采用自制的局部冷保存装置 ,将肾脏置于 0～ 4℃生理盐水中 ,8h后开放肾动、静脉使肾脏复灌 ,复灌前切除右侧肾脏。B组 :采用同样方法游离暴露肾脏后 ,不实施肾脏血流阻断和肾脏灌注 ,单纯低温保存 8h ,随后同法切除右肾。A、B组分别于肾脏复灌后 2h、2 4h抽取血液 2ml;肾脏复灌后 2 4h后切除左侧肾脏。结果 :A组 2h、2 4h血清Cr、Bun值均高于B组 ,差异有显著性 (P <0 .0 1) ;A组肾脏病理切片可见典型肾脏缺血再灌注损伤改变。结论 :大鼠自体原位肾移植缺血再灌注损伤模型手术操作简便 ,手术成功率高 ,充分模拟临床肾移植IRI特点 ,是研究肾脏移植缺血再灌注损伤的理想动物模型     

支架连接代替血管吻合建立大鼠肾移植模型

目的建立一种新的大鼠肾移植模型。方法以SD大鼠作为供体,Wistar大鼠作为受体,采用支架导管连接固定代替血管吻合和输尿管膀胱瓣皮肤造瘘的方法建立大鼠肾移植模型。结果共施行大鼠肾移植30例,手术成功率为73.3%,受体存活5~10d,死亡原因有麻醉药过量、大出血、动静脉血栓形成。结论该技术简单实用,对成功建立肾移植模型及进行相关实验研究有应用价值。     

血管端端吻合法建立双侧供肾大鼠肾移植模型

目的:采用血管端端吻合法建立一种无需阻断主动脉和后腔静脉血流的双侧供肾大鼠肾移植模型.方法:取供体双侧肾脏,受体左侧肾窝单肾移植,生理盐水中血管端端吻合,输尿管膀胱瓣-膀胱外隧道式吻合行尿路重建.结果:40例移植肾肾动、静脉即时通畅率分别为85%(34/40)、90%(36/40),吻合血管无扭曲.模型并发症有吻合口出血、动静脉血栓形成、排斥反应等,不使用免疫抑制剂的情况下,90%受体存活时间超过7 d.结论:生理盐水中行血管端端吻合,可解决动脉吻合需阻断主动脉血流、静脉吻合需支架支撑、静脉粘贴缝合困难等问题,是一种简单、经济、省时的模型方法,一般实验室均可开展.     

大鼠肾移植慢性排斥反应模型的建立

目的 建立一种稳定的大鼠原位肾移植慢性排斥反应模型.方法 供体为近交系F344大鼠,受体为Lewis大鼠,供肾采用左肾,在体修整,原位灌注.肾静脉用硬膜外导管做为临时内支架管端-端、六针法吻合,腹主动脉端-侧连续缝合,输尿管带膀胱瓣与膀胱吻合.受体术前3d开始环抱素A灌胃至术后30 d(5 mg/kg·d),以预防急性排斥反应.结果 手术时间120～180 min;手术成功率90.9% (40P44) ;受体均存活60 d.并发症有吻合口出血、静脉血栓形成、急性排斥反应等.结论 供肾原位灌注,在体修整是简单可靠的方法.静脉内支架管端端吻合,腹主动脉端侧吻合能够达到稳定的成功率,值得推广.熟练的外科操作技能和血管吻合技术是手术成功的关键.     

大鼠肾移植慢性排斥反应模型的建立

目的 建立稳定而可靠的大鼠肾移植慢性排斥反应模型.方法 选用30只Wistar大鼠为供体,30只SD大鼠为受体.取供体左肾,采用HC-A离体肾保存液原位灌注,将供肾动、静脉分别与受体腹主动脉、下腔静脉行端侧吻合,以输尿管膀胱植入法行尿路重建,建立大鼠同种异体肾移植模型.分别于术后3、6、9周取移植肾观察大体和组织形态学变化,观察术后并发症及排斥反应情况.结果 移植肾脏大体和组织形态学呈渐进性变化,至术后9周可出现明显的慢性排斥反应病理改变.移植肾脏可顺利存活,部分出现肾积水并发症,但不影响排斥反应病理变化.结论 本方法可建立稳定、可靠的肾移植慢性排斥反应模型,是研究慢性排斥反应的理想模型.     

大鼠原位肾移植模型的建立

目的为进行移植免疫研究的需要,建立一种大鼠肾移植模型。方法采用原位低温灌注、手术显微镜下原位端——端吻合肾动、静脉,将输尿管带膀胱瓣吻合于膀胱。结果建立了稳定可靠的大鼠肾移植模型,手术成功率为86%。结论此方法建立的模型稳定可靠,较为理想的满足了肾移植研究的需要。     

大鼠异体双侧肾移植模型的建立

目的 建立一种大鼠异体异位双侧肾移植的动物模型.方法 SD大鼠为供体,Wistar大鼠为受体,共30对.原位灌注、切取连带腹主动脉、下腔静脉的供体双肾;在受体髂腰静脉水平切除一段腹主动脉和下腔静脉;将供体腹主动脉、下腔静脉上下开口与受体腹主动脉、下腔静脉断口分别吻合;供体膀胱瓣与受体膀胱全层缝合.结果 整个移植过程＜180 min,热缺血时间＜5 s,冷缺血时间＜90 min,血管吻合时间＜50 min.30例手术中,25例成功,手术成功率83.3%.在未服用任何免疫抑制剂的情况下,手术成功大鼠术后存活时间均超过1周.结论 大鼠双侧肾移植模型是一种可行性好,成功率高的肾移植动物模型.与单侧模型相比,具有增加取材次数、获取配对资料、提高工作效率的优点,值得推广.     

改良的大鼠原位肾移植模型的建立

目的建立一种术式简单、初学者易于掌握、成功率高的大鼠肾脏移植模型.方法采用原位肾脏移植术式,动脉采用Fabre方法吻合,静脉吻合使用带支架管的供肾腔静脉与受体肾静脉吻合,输尿管吻合采用输尿管-膀胱瓣与受体膀胱吻合,对侧肾脏切除采用术中留置结扎线,术后3 d结扎的方法.结果采用新方法建立的大鼠肾脏移植模型,手术时间较经典术式明显缩短,手术成功率明显提高.结论新方法建立大鼠肾移植模型使该移植模型比较稳定,成功率较高,易于掌握.     

心脏死亡大鼠双肾移植模型的建立

目的 探讨心脏死亡大鼠双侧供肾左侧原位肾移植模型的手术方法。方法 供、受体均采用雄性近交系Wistar大鼠,分别于心脏死亡后0、20和40min取双侧供肾,行左侧原位肾移植术后摘除受体右肾,观察各组受鼠术后的移植肾的功能恢复情况及生存率。结果 0min和20min组的大鼠移植肾功能良好、存活率高,40min组的大鼠移植肾功能较差且均于14天后死亡。0min组的左右供肾移植后的肾功能及存活率差异无统计学意义(P＞0.05)。结论 建立心脏死亡大鼠双侧供肾左侧原位肾移植模型稳定可靠,可有效减少供肾冷缺血时间及节约供体数量,可应用于心脏死亡供体肾移植实验研究。     

一种新的大鼠原位肾移植模型的建立

目的建立一种新的大鼠原位肾移植模型。方法分别以SD大鼠和Wistar大鼠作为供、受者;左侧原位移植,肠系膜上动脉-肾动脉经改良sleeve技术吻合,下腔静脉-肾静脉通过临时内支架端-端吻合,输尿管带膀胱瓣与膀胱吻合。结果61次手术,成功率95.1%,总手术时间161±11min,动脉吻合时间11±2min,受体存活4～17d,并发症有吻合口出血、动脉血栓形成、尿瘘和急性排斥反应。结论该技术简单实用,对成功建立肾移植模型及进行相关实验研究有应用价值。     

端端吻合技术建立SD-Wistar大鼠肾移植模型

目的 采用端端吻合技术建立稳定的SD-Wistar大鼠肾移植模型。方法 SPF级雄性SD及Wistar大鼠各60只,供体采用SD大鼠,受体采用Wistar大鼠,取左肾作为供肾,受体切除左肾进行原位肾移植,并保留自身右肾,供体肾动脉、肾静脉及输尿管均与受体Wistar大鼠进行端端吻合,管腔均采用间断缝合。结果 本实验每例SD-Wistar肾移植模型总手术时间约为105.54±20.63min,血管吻合时间约为20.42±5.81min,输尿管吻合时间约为5.21±2.42min。移植肾的热缺血时间约为11.24±3.52s,冷缺血时间约为40.35±8.52min。本组共进行SD-Wistar肾移植模型60例,术中发现肾动脉血栓形成2例;术后24h内死亡1例,成功率达95.00%。结论 采用端端吻合技术可成功建立SD-Wistar大鼠肾移植模型。     

大鼠高尿酸血症肾损害模型的建立

目的 建立大鼠高尿酸血症肾损害动物模型。方法 采用腺嘌呤加乙胺丁醇给高、中、低3个剂量组灌胃，测定实验前后大鼠血清尿酸、尿素氮、肌酐，行肾组织病理与超微病理观察。结果 高剂量组、中剂量组血尿酸升高，高剂量组肾损害严重。结论 中剂量组作为高尿酸血症动物肾损害模型较为合适。     

大鼠原位肝移植模型建立方法的若干问题探讨

目的探讨建立大鼠原位肝移植模型的方法与技术。方法用改进的二袖套法行100例Lewis→BN大鼠原位肝移植,术中门静脉、肝下下腔静脉用袖套法吻合,肝上下腔静脉用缝合法吻合,胆管内支架法完成胆道重建。结果供体手术时间(30.9±5.0)min,供肝修整时间(10.0±3.0)min,受体手术时间(50.0±5.5)min,无肝期为(23.0±2.5)min。手术成功率为92%(术后存活2 d以上),1周存活率为87%,1个月存活率为84%。结论通过提高手术技巧,熟悉各种并发症的原因和预防处理措施,可以减少并发症的发生,提高手术成功率,延长大鼠术后存活时间。     

大鼠原位肝移植模型制备方法的改进

目的 改进二袖套法制备大鼠原位肝移植模型的方法. 方法 120只大鼠行原位肝移植,在原二袖套法基础上改进切取供肝方法,二针法缝合供、受体肝上下腔静脉,出血点行热止血. 结果 大鼠原位肝移植手术时间缩短,手术成功率96.7%,3周存活率94.2%. 结论 改进的大鼠原位肝移植方法手术时间短,成功率高,稳定可靠.     

大鼠慢性萎缩性胃炎模型的建立

目的建立大鼠慢性萎缩性胃炎（CAG）模型。方法饮用及灌胃给予20 mmol/L去氧胆酸钠和30%、60%乙醇13周。检测大鼠胃粘膜组织病理变化及生化指标。结果模型组大鼠胃窦粘膜的炎症指数明显增加,胃窦固有腺厚度和面积明显缩小;游离酸和总酸浓度明显降低,游离粘液量和胃蛋白酶活性明显升高,血清胃泌素及丙二醛含量明显升高,白细胞介素-2及超氧化物歧化酶活性明显降低。结论成功建立了CAG动物模型,为慢性萎缩胃炎疾病的研究提供了一种理想的动物模型。     

大鼠原位肝移植模型技术的若干改进

目的大鼠原位肝移植的模型技术的改进.方法采用远交系SD和远交系Wistar大鼠,用二袖套法（门静脉和肝下下腔静脉）建立大鼠原位肝移植模型,正式实验60次.结果术中尾静脉建立输液通路,改进了供肝的修剪和受体肝上腔静脉的阻断与吻合方法,修肝平均时间8 min,受体无肝期平均21 min,手术成功率达85%.结论改进的大鼠原位肝移植术操作简便,手术成功率较高,可做为肝移植实验可靠、稳定的动物模型.     

同种异体Beagle犬肾移植模型的建立

通过建立一种可靠简便的Beagle犬肾移植模型,观察了伪手术组与模型组犬肾移植术后血肌酐(Scr)、尿素氮(BUN)和一般情况变化。发现Beagle犬肾移植模型稳定;Beagle犬经肾移植术后第3天起,血清Scr和BUN迅速升高,Scr从术前61.1±1 3.5 μ mol／L上升到术后1153.9±124.4μmol／L,BUN从术前3.6 8±0.62 mmol／L到术后24.23±7.17 mmol／L,而伪手术组的Scr和BUN则一直稳定维持;一般情况观察和移植肾外观形态检查均发现典型的急性排斥反应表现。因此,该模型制作简便、可靠,稳定性高,可用于移植免疫学研究和免疫抑制剂药物的筛选。     

结扎不同肾动脉构建肾性高血压大鼠模型

目的探讨两种肾动脉结扎法建立肾性高血压伴肾衰大鼠模型及其生化指示的评价。方法采用外科切除右肾并结扎左肾动脉上段分支及中、下段分支,继续饲养8周,实验前尾袖法测定大鼠的血压,断头取血,放免法测定血清血管紧张素II(AII)和内皮素(ET)。双缩脲法测定24 h尿蛋白,生化指标采用全自动生化分析仪检测。结果(1)与正常对照组相比,两种手术组血压都明显升高(126.67±8.5 VS 177.34±9.87,174.83±13.38,P<0.05),而手术组之间无明显差异(177.34±9.87,174.83±13.382,P>0.05)。两手术组血清中AII、ET水平明显增高(AII:2355.43±388.79,2556.28±408.33 VS 1546.78±312.96,P<0.05;ET:294.24±36.56,311.56±39.46 VS225.93±63.57,P<0.05)。尿24 h总蛋白量也明显高于正常组(25.76±12.45,23.81±5.94 VS 2.84±1.63P<0.05)(3)与正常对照组比,三组之间血清ALT,ALB及Trig无明显差别,但手术组AST、GLU、CHOL却有明显升高。(4)BUN和CREA与假手术组相比都有明显升高(BUN:13.39±2.18 12.87±1.61 VS 4.31±0.59P<0.05;CREA:59.85±9.19 55.47±5.80 VS 20.00±5.78P<0.05)。结论(1)采用两种手术法构建肾性高血压伴衰功能不全模型血清生化指标无明显差异;(2)大鼠背外侧手术入路行左肾动脉前支结扎建立肾性高血压伴肾衰模型手术操作更为简便;(3)肾动脉狭窄可引起血清AII、ET水平增高,其可能形成肾性高血压的并加速肾衰的重要原因。     

改进背驮式肝移植动物模型的建立和评价

目的建立了一种稳定性好、易于复制的大型动物肝移植模型．斤法健康雄性成年日本大耳白兔40只,供体兔随机分为两组,A组：供肝保存时间〈2h,B组：兔移植模型供肝保存时间延长至〉4h,完成白兔同种异体背驮式肝移植．结果手术成功率85．0％,A组兔的中位生存时问：16．0d;B组的中位生存时间：6．4d．结论兔改进的背驮式肝移植模型具有标准化程度及手术成功率高、重复性和稳定性好的优点,是大型动物肝移植系列研究的理想动物模型．