薄膜分散法制备白藜芦醇长循环热敏前体脂质体及其表征研究

目的:对白藜芦醇长循环热敏前体脂质体制备的研究以及对其性质进行分析。方法:先用薄膜分散法制备白藜芦醇长循环热敏脂质体后,再用冷冻干燥法来制备白藜芦醇长循环热敏脂质体的前体。采用电势测定仪、HPLC等方法对该脂质体的包封率、粒径、稳定性、载药量、电位、释放度等来展开系统的检查。结果:白藜芦醇长循环热敏前体脂质体水合后形成白藜芦醇长循环热敏脂质体,粒径均值为(107.9±3.6)nm,Zeta电位的均值为(-12.2±1.6)m V,包封率可达89.4%;该脂质体在相变温度42℃下药物释放达到94%以上。结论:采用长循环热敏来制备的白藜芦醇前体脂质体含量与包封率检查方法准确、快速、简单且方法简便易行。载药量大,包封率好,工艺比较稳定。本实验可为新型白藜芦醇静脉注射用热敏脂质体的研究提供基础。     

紫杉醇长循环热敏前体脂质体的制备与表征

目的:研究紫杉醇长循环热敏前体脂质体的制备并对其性质进行考察.方法:采用薄膜分散法制备紫杉醇长循环热敏脂质体,再用冷冻干燥技术制备紫杉醇长循环热敏前体脂质体;采用激光粒度仪考察粒径和Zeta电位;采用高效液相色谱法研究其含量与包封率;并考察脂质体的体外释药特性.结果:紫杉醇长循环热敏前体脂质体水合后形成紫杉醇长循环热敏脂质体,粒径均值为(108.6 ±3.6)nm,Zeta电位的均值为(-12.2±1.8)mV,包封率可达96.2％;该脂质体在相变温度42℃下药物释放达到95％以上.结论:紫杉醇长循环热敏前体脂质体的制备工艺稳定,载药量大,包封率高,具有良好的热敏性;含量及其包封率测定方法简单、快速、准确.本实验可为紫杉醇静脉注射用新制剂的开发提供研究基础.     

丹皮酚前体脂质体的研制及其特性

目的：研究丹皮酚前体脂质体的制备方法，提高丹皮酚脂质体的稳定性。方法：采用薄膜一超声一冷冻干燥法。选择合适的冻干保护剂制备丹皮酚前体脂质体，并对水合后脂质体的形态、粒径、包封率和稳定性进行考察。结果：选择10％的蔗糖为保护剂。制得的丹皮酚前体脂质体经水合后主要为单室脂质体，粒径分布较均匀。平均粒径149．7nm．药物包封率为73．9％，25℃贮存6个月，外观、含量及包封率无明显变化。结论：该方法制备丹皮酚前体脂质体可行，包封率较高且有良好的稳定性。     

依托泊苷长循环热敏前体脂质体的制备工艺研究

目的:对依托泊苷(Etoposide,VP-16)长循环热敏前体脂质体的制备工艺进行研究,并对该制备工艺进行方法学及制剂质量考察。方法:应用薄膜分散法制成VP-16长循环热敏脂质体,进一步借助冷冻干燥技术进行依托泊苷长循环热敏前体脂质体的制备;采用zeta电势测定仪及HPLC等技术进行方法学考察,主要包括脂质体的包封率、粒径、载药量、电位、释放度、稳定性。结果:VP-16长循环热敏前体脂质体水合形成长循环热敏脂质体,粒径为(105.2±3.4)nm,Zeta电位为(-11.9±1.7)m V,包封率可达96.8%;该脂质体在相变温度42℃下药物释放达到96%以上。结论:VP-16长循环热敏前体脂质体的制备工艺稳定,脂质体载药量大,包封率高;药物含量及包封率的测定方法简单、快速而准确,因而,该研究可为VP-16开发成静脉注射用新制剂提供数据支持。     

CA4P脂质体的制备工艺研究

目的 研究CA4P脂质体的处方及制备工艺.方法 以包封率为主要评价指标考察制备方法;用透射电镜和粒径测定仪表征脂质体的形态和粒径;用HPLC法测定脂质体中CA4P的包封率和载药量;以正交设计筛选优化最佳处方工艺.结果 脂质体的平均粒径为167 nm,Zeta电位为-24.3 mV,最佳工艺处方的药-脂比为1:12,磷脂-胆固醇为8:1,有机相-水相体积为4:1,水合介质为0.9%NaCl;制备3批脂质体的平均包封率为58%、载药量为4.8%.结论 逆相蒸发-探头超声法可制备具有较高包封率的CA4P脂质体.     

不同乳化方法对脂质体成型性影响的初探

目的:在制备脂质体中筛选出比较好的乳化方法,从而提高脂质体的包封率与载药量。方法:选用黄芩苷为模型药物,采用水浴超声、高速搅拌、匀质机、探针超声四种不同的方法乳化后制备脂质体,进行对比。结果:用探针超声乳化后制备的脂质体粒径为220nm,包封率为47.32%。结论:实验结果提示采用探针超声乳化后制备的脂质体粒径分布均匀,包封率及载药量都较高。     

硫酸铵梯度法制备莫西沙星脂质体的工艺研究

目的 制备具有较高包封率和载药量且体外放置稳定的莫西沙星脂质体。方法 采用硫酸铵梯度法制备包载莫西沙星的脂质体,以粒径及其分布和包封率、载药量为指标对处方和工艺进行优化。结果 最佳制备条件为：空白脂质体中硫酸铵质量浓度70 mg/mL、磷脂质量浓度50 mg/mL、脂质体粒径120 nm左右、透析时间5 h、载药时药脂比2∶3、孵育温度40 ℃、孵育时间30 min。制备得到的莫西沙星脂质体粒径为（143.00±3.98）nm,包封率为（74.56±3.21）%,载药量为（26.39±1.88）%。结论 硫酸铵梯度法制备的莫西沙星脂质体包封率较高,粒径均一,室温放置稳定性良好。     

槲皮素前体脂质体的质量考察

目的制备液体型槲皮素前体脂质体,并对制剂质量进行考察。方法采用一种新型前体脂质体制备方法制备液体型槲皮素前体脂质体,将脂质体膜材和药物等以一定比例溶于分散介质中,形成一种无水的澄明溶液。考察其水合后粒子形态、粒径、电位、包封率及自组装速度等理化性质,并评价其体外释药性质。结果槲皮素前体脂质体遇水即可快速自组装成纳米级含药脂质体混悬液,水合后形态多为类球形,平均粒径为228.7nm,Zeta电位为21.2 mV,包封率可达90%以上,体外释药符合Higuchi方程。结论槲皮素口服前体脂质体制备工艺简单可行,包封率高,具有一定的缓释效果。     

马钱子碱脂质体的大鼠离体透皮性能和兔皮肤刺激性研究

采用薄膜-超声分散法制备马钱子碱脂质体,并考察了其对大鼠离体皮肤的透过性能及对家兔皮肤的刺激性。结果表明,制品平均粒径(150±25)nm、包封率61%、载药量6%。体外透皮试验表明,与乳膏相比,制品透皮速率较慢,皮肤层中药物贮存量较高。兔皮肤刺激性试验表明,1日给予2次时对皮肤基本无刺激,但连续用药2周,则会产生水肿、溃疡等局部不良反应。     

重组L-门冬酰胺酶空前体脂质体的研制及其包封率的测定

采用乳化挤压冻干三步法完成空前体脂质体的制备.空前体脂质体以L门冬酰胺酶为实验对象,测定了包封率.制得的前体脂质体水合形成的L门冬酰胺酶脂质体形态圆整,粒径在(0.662±0.0792)μm范围内.3批前体脂质体对L门冬酰胺酶的包封率分别为(48.2±0.99)%、(51.0±1.21)%、(52.2±1.25)%.3个批号的包封率变异系数(RSD%)均小于3%.结果说明制备的空前体脂质体水合形成的L门冬酰胺酶脂质体粒度适宜,可用于L门冬酰胺酶的包封.     

依托泊苷隐形前体脂质体的构建及家兔体内药动学研究

构建依托泊苷隐形前体脂质体，并考察其在家兔体内的药动学。采用薄膜分散法构建窄白隐形脂质体；硫酸铵梯度法包封依托泊苷；结合真空冷冻干燥技术构建依托泊苷隐形前体脂质体。采用凝胶色谱法测定脂质体包封率；透射电镜观察脂质体的形态；电泳光散射技术测定Zeta电位与粒径分布；以市售依托泊苷注射液和普通脂质体为参比制剂，评价其在家兔体内药动学特点。脂质体平均包封率为83．92％±3．65％，粒径为（124．5±26．9）nm，Zeta电位为（-39．50±1．04）mV，家兔单剂量静脉注射1．5mg／kg依托泊苷制剂后呈二室模型特征，依托泊苷隐形前体脂质体的T1/2β为（19．26±3．16）h，AUC为（26．04±3．53）μg／h／mL；注射液的T1/2β为（0．94±0．21）h，AUC为（0．98±0．26）μg／h／mL；普通脂质体的T1/2β为（7．99±1．36）h,AUC为（11．65±1．70）μg/mL。构建的隐形前体脂质体包封率高，且延长了依托泊苷在血液中的循环时间。     

洛伐他汀自组装前体脂质体的制备及其理化性质的研究

目的:为研究洛伐他汀新剂型,制备洛伐他汀新型前体脂质体,并对其质量进行考察。方法:采用一种新型前体脂质体制备方法将洛伐他汀制成自组装前体脂质体,对水合后脂质体的形态、粒径、Zeta电位、包封率、自组装速度、稳定性等进行考察,验证这种新型前体脂质体制备方法用于制备洛伐他汀脂质体的可行性。结果:所形成的洛伐他汀脂质体包封率为95.4%±6.7%,平均粒径为(327.4±29.6)nm,Zeta电位值为-(22.4±1.5)mV。洛伐他汀自组装前体脂质体可在60 s内自发形成脂质体并达到分散平衡;以人工胃液为稀释介质,洛伐他汀脂质体在12 h内稳定。结论:采用新型前体脂质体制备方法可将洛伐他汀制成洛伐他汀脂质体,形成的脂质体包封率较高且具有良好的稳定性。     

阿立哌唑注射液肌肉刺激、溶血及过敏试验研究

目的 评价阿立哌唑注射液的肌肉刺激性,观察其否具有溶血、凝聚及过敏反应。方法 采用兔股四头肌sc给药,观察阿立哌唑注射液对注射局部肌肉的刺激性;采用2%兔血红细胞混悬液检查阿立哌唑注射液有无溶血和红细胞凝聚反应;采用豚鼠全身主动过敏试验（ASA）评价阿立哌唑注射液有无过敏反应。结果 阿立哌唑注射液对兔红细胞无溶血及凝聚作用;新西兰兔单次及连续7 d sc给予阿立哌唑注射液,均发现其对股四头肌有刺激作用,以肌纤维的变性坏死为主,肌纤维崩解消失,病灶内可见散在的炎细胞浸润,停药14 d后刺激反应消失;每只3.75、7.50 mg剂量下给予阿立哌唑注射液,豚鼠未见过敏反应。结论 阿立哌唑注射液未见溶血和过敏反应,较高浓度下可能会引起肌肉刺激性反应。     

血栓通注射制剂非临床安全性检查

目的：对血栓通注射制剂进行非临床安全性检查.方法：对血栓通注射制剂进行了小鼠半数致死量（LD50）测定,并对三个厂家的血栓通注射制剂进行血管刺激性、溶血性及过敏试验研究.结果：血栓通注射制剂的小鼠LD50为（419.351±22.605） mg·kg^-1;临床使用最大浓度对新西兰兔耳缘静脉无明显刺激作用;溶血试验结果显示三个厂家的溶血率有较大不同;豚鼠全身主动过敏试验显示血栓通注射制剂在该实验条件下静脉注入豚鼠体内会出现类似过敏反应症状;在本实验条件下血栓通注射液和注射用血栓通注入豚鼠体内后,没有引发被动皮肤过敏反应.结论：血栓通注射制剂小鼠LD50为（419.351±22.605） mg·kg-1;血栓通注射制剂临床使用最大浓度对新西兰兔耳缘静脉无明显刺激作用;其不同厂家的溶血率明显不同;可引发豚鼠类似过敏反应的症状.     

注射用帕瑞昔布钠特殊安全性评价

目的 评价注射用帕瑞昔布钠的安全性。方法 全身主动过敏实验：豚鼠隔日ip注射用帕瑞昔布钠（供试品,20 mg/mL）、原研对照、生理盐水或人血清白蛋白3次,于末次致敏后第14、21天进行激发,观察激发后30 min内动物反应;被动皮肤过敏实验：在豚鼠背部分别sc不同稀释度的抗体血清0.1 mL进行被动致敏,24 h后iv激发,30 min后处死,测量皮肤内层的蓝斑大小;家兔血管刺激性实验：连续耳iv供试品5 d后,于给药结束及恢复期取双耳进行HE染色,观察其对注射部位血管的刺激性;体外溶血实验观察供试品3 h内有无溶血现象。结果 20 mg/mL注射用帕瑞昔布钠无豚鼠全身过敏现象及被动皮肤过敏反应,未见血管刺激性;未见溶血现象发生。结论 20 mg/mL注射用帕瑞昔布钠无明显过敏反应、刺激性、溶血现象,是安全的。     

注射用替加环素临床前安全性研究

目的 评价注射用替加环素的安全性。方法 对注射用替加环素进行血管刺激、肌肉刺激、溶血性及被动皮肤过敏、全身主动过敏性、类过敏性试验。结果 注射用替加环素对血管无明显刺激性、对肌肉组织产生轻度可逆性的刺激,对家兔红细胞无溶血、凝聚作用,大鼠被动皮肤过敏反应（PCA）试验未出现过敏反应;豚鼠全身主动过敏反应（ASA）试验部分豚鼠出现过敏反应;注射用替加环素与已上市药品Tygacil 在同等剂量下,豚鼠出现同等程度的类过敏反应。结论 注射用替加环素可能会引起肌肉刺激性及过敏、类过敏反应,临床应用时应关注患者给药后的反应。     

Proliposomes for oral delivery of dehydrosilymarin: preparation and evaluation in vitro and in vivo

Aim:

To formulate proliposomes with a polyphase dispersed system composed of soybean phospholipids, cholesterol, isopropyl myristate and sodium cholate to improve the oral bioavailability of dehydrosilymarin, an oxidized form of herbal drug silymarin.

Methods:

Dehydrosilymarin was synthesized from air oxidation of silymarin in the presence of pyridine, and proliposomes were prepared by a film dispersion-freeze drying method. Morphological characterization of proliposomes was observed using a transmission electron microscope. Particle size and encapsulation efficiency of proliposomes were measured. The in vitro release of dehydrosilymarin from suspension and proliposomes was evaluated. The oral bioavailability of dehydrosilymarin suspension and proliposomes was investigated in rabbits.

Results:

The proliposomes prepared under the optimum conditions were spherical and smooth with a mean particle size in the range of 7 to 50 nm. Encapsulation efficiency was 81.59%±0.24%. The in vitro accumulative release percent of dehydrosilymarinloaded proliposomes was stable, which was slow in pH 1.2, and increased continuously in pH 6.8, and finally reached 86.41% at 12 h. After oral administration in rabbits, the relative bioavailability of proliposomes versus suspension in rabbits was 228.85%.

Conclusion:

Proliposomes may be a useful vehicle for oral delivery of dehydrosilymarin, a drug poorly soluble in water.     

Chitosan‐coated antifungal formulations for nebulisation

Objectives The aim of this study was to produce and characterise amphotericin B (AmB) containing chitosan‐coated liposomes, and to determine their delivery from an air‐jet nebuliser. Methods Soya phosphatidylcholine : AmB (100 : 1) multilamellar vesicles were generated by dispersing ethanol‐based proliposomes with 0.9% sodium chloride or different concentrations of chitosan chloride. These liposomes were compared with vesicles produced by the film hydration method and micelles. AmB loading, particle size, zeta potential and antifungal activity were determined for formulations, which were delivered into a two‐stage impinger using a jet nebuliser. Key findings AmB incorporation was highest for liposomes produced from proliposomes and was greatest (approximately 80% loading) in chitosan‐coated formulations. Following nebulisation, approximately 60% of the AmB was deposited in the lower stage of the two‐stage impinger for liposomal formulations, for which the mean liposome size was reduced. Although AmB loading in deoxycholate micellar formulations was high (99%), a smaller dose of AmB was delivered to the lower stage of the two‐stage impinger compared to chitosan‐coated liposomes generated from proliposomes. Chitosan‐coated and uncoated liposomes loaded with AmB had antifungal activities against Candida albicans and C. tropicalis similar to AmB deoxycholate micelles, with a minimum inhibitory concentration of 0.5 µg/ml. Conclusions This study has demonstrated that chitosan‐coated liposomes, prepared by an ethanol‐based proliposome method, are a promising carrier system for the delivery of AmB using an air‐jet nebuliser, having a high drug‐loading that is likely to be effectively delivered to the peripheral airways for the treatment of pulmonary fungal infections.     

载基因纳米阳离子脂质体前体制剂的制备及性质研究

目的:制备稳定的载反义寡核苷酸的阳离子脂质体前体制剂。方法:以磷脂-二油酰磷脂酰乙醇胺(dioleoylphophatidylethanolamine,DOPE)-十八胺-胆固醇为类脂成分,采用薄膜超声-挤压制备空白阳离子脂质体,吸附-冷冻干燥法制备载反义寡核苷酸阳离子脂质体前体。激光粒度仪测定冷冻干燥前后脂质体Zeta电位及粒径,透射电镜观察其形态,葡聚糖凝胶柱分离未包封的反义寡核苷酸,紫外法测定冻干前后的载药率。结果:海藻糖与甘露醇及甘氨酸为较好的冻干保护剂,制得的阳离子脂质体前体带正电荷,规则球形,大小较均匀,海藻糖作为保护剂复溶前后平均粒径为175和320 nm左右,复融前后Zeta电位值在+32和+40 mV左右,脂质体的载药率复溶前后分别为87.6%与83.21%。结论:海藻糖作为冻干保护剂,薄膜超声挤压法与冷冻干燥法结合,可成功制备反义寡核苷酸阳离子脂质体前体制剂,稳定性大大改善。