冰温料理台对血液质量影响的探讨

目的:探讨冰温料理台在确保血液质量方面的重要性。方法:从冰箱中取出20袋1.0U添加剂红细胞分两组分别放置于(22±2)℃室温与冰温料理台上,观察其血液温度的变化;取40袋100ml新鲜冰冻血浆分两组分别放置于(22±2)℃室温与冰温料理台上,观察其2h内血浆融化的状况,然后将此40袋新鲜冰冻血浆再次-30℃保存,测量FⅧ∶C百分活性。结果:放置于冰温料理台上的添加剂红细胞2h内温度维持在(4±2)℃,新鲜冰冻血浆2h内始终是冰冻固体:放置于室温中的添加剂红细胞30min血液温度上升至室温,新鲜冰冻血浆2h成冰渣状态。室温放置的新鲜冰冻血浆再次冰冻保存FⅧ∶C百分活性明显低于正常值,而放置在冰温料理台上的新鲜冰冻血浆再次冰冻保存FⅧ∶C百分活性在正常值范围内。结论:冰温料理台在血站的使用可确保血液质量,保证输血安全。     

应用冷沉淀治疗褥疮的临床观察

近年来国内外十分重视冷沉淀的应用研究 ,但有关其促进褥疮愈合的实验研究却未见报道。我们应用冷沉淀治疗褥疮创面 ,取得了较好的效果 ,现报告如下。1　对象与方法1 .1　冷沉淀的制备　　采用改良融解法生产冷沉淀。于采血后 2ｈ内经离心分浆(每 2 0 0ｍｌ血浆为 1个制备单位 ) ,然后置 - 30℃以下速冻冰箱中冰冻保存 ,制备时取出放入 2 0～ 2 5℃水浴中融化 ,待尚存小冰块时 ,置 4℃以下 30 0 0ｒ ｍｉｎ离心 15ｍｉｎ后 ,移去上清血浆 ,最后剩余 2 0～ 30ｍｌ血浆与冷沉淀一起留于袋中。再分装成 5～ 10ｍｌ 支的玻璃安瓿 ,立即冷冻保存 …     

不同血液成分凝血因子Ⅴ、Ⅷ、X含量的变化分析

目的了解新鲜冰冻血浆、普通冰冻血浆和去冷沉淀血浆中凝血因子Ⅴ、Ⅷ、X在不同的保存温度和制备过程中的变化。方法采集23袋（200mL/袋）ACD-B血液保存液保存的血液,4h内分离制备新鲜冰冻血浆,各袋均留2份标本;1份同新鲜冰冻一起置-35℃保存,于第3天速融后检测凝血因子Ⅴ、Ⅷ、X含量;1份置4℃保存21d后检测凝血因子Ⅴ、Ⅷ、X含量;新鲜冰冻血浆于第3天取出制备冷沉淀,留取去冷沉淀血浆标本1份检测凝血因子Ⅴ、Ⅷ、X含量。结果普通冰冻血浆和去冷沉淀血浆中的凝血因子均低于新鲜冰冻血浆（P〈0.001）。结论新鲜冰冻血浆主要用于补充体内各种凝血因子的缺乏;普通冰冻血浆用于补充体内稳定凝血因子的缺乏,去冷沉淀血浆的使用价值有局限性,不能把之与普通血浆等同使用。     

病毒灭活冰冻血浆制备冷沉淀的质量变化

目的探讨病毒灭活冰冻血浆制备冷沉淀的质量变化。方法随机抽取新鲜血浆40袋,每袋准确均分为100ml×2,分别作为A组、B组。A组立即置于低温血浆速冻机中速冻保存备用,即新鲜冰冻血浆组;B组用MB／光化学法进行病毒灭活后,再速冻保存备用,即病毒灭活冰冻血浆组。将A、B两组血浆分别制成A组、B组冷沉淀速冻保存备用。而后分批分量取出,置37℃水浴箱完全融化,立即无菌留样各1ml,用血凝仪快速测定凝血因子Ⅷ（FⅧ）和纤维蛋白原（Fg）的含量。结果比较发现,病毒灭活冰冻血浆制备的冷沉淀,其FⅧ和Fg的含量均有一定程度的降低,但仍然符合国家标准。结论以病毒灭活冰冻血浆制备冷沉淀,对FⅧ和Fg的含量无显著影响,其质量可靠,能够确保临床输注安全有效。     

新鲜冰冻血浆、普通冰冻血浆与去冷沉淀血浆部分有效成分的对比

目的了解新鲜冰冻血浆、普通冰冻血浆与去冷沉淀血浆中部分有效成分的实际含量,为临床选择不同血浆输注提供实验室依据。方法采集23袋（200 m l袋/）ACD-B血液保存液保存的血液,4 h内分离制备新鲜冰冻血浆,各袋均留2份标本;1份同新鲜冰冻一起置-35℃保存,于第3天速融后检测总蛋白、白蛋白、纤维蛋白原、凝血因子Ⅴ、Ⅷ、Ⅹ含量;1份置4℃保存21 d后检测总蛋白、白蛋白、纤维蛋白原、凝血因子Ⅴ、Ⅷ、Ⅹ含量;新鲜冰冻血浆于第3天取出制备冷沉淀,留取去冷沉淀血浆标本1份检测总蛋白、白蛋白、纤维蛋白原、凝血因子Ⅴ、Ⅷ、Ⅹ含量。结果去冷沉淀血浆中的血浆蛋白和凝血因子含量均低于普通冰冻血浆与新鲜冰冻血浆（P〈0.001）,普通冰冻血浆与新鲜冰冻血浆中的血浆蛋白无差别（P〉0.001）,普通冰冻血浆中的凝血因子含量低于新鲜冰冻血浆（P〈0.001）。结论新鲜冰冻血浆、普通冰冻血浆与去冷沉淀血浆有效成分各不相同,在临床上不能等同使用。     

人脐血干扰素的制备及其脱水浓缩初试(摘要)

为了预防流感,我们参照国内有关资料制备人脐血干扰素,并摸索了生产干扰素的条件、稳定性及浓缩方法,现将结果简述如下: 从产房取回新鲜脐血,在4℃冰箱存放后,尽快分离血浆,每毫升血液加入F系新城鸡瘟减毒株病毒150血凝单位。37℃水浴诱导1～3小时。再加入二倍量是之Eagles液(2％人血浆)37℃转鼓10～12小时,或37℃水浴4小时,5～10分钟振摇一次,再静     

深低温保存Rh阴性RBC的质量控制

目的:确保深低温保存Rh阴性红细胞(RBC)解冻后的质量。方法:用ACD抗凝,4℃保存6 d内Rh阴性RBC悬液加入57.1%(g/v)甘油处理后,置-80℃冰冻保存,可以保存10年。临床需要时在39℃水浴中解冻复苏RBC,M115型红细胞洗涤系统洗涤,用生理盐水悬浮RBC。结果:33袋冰冻解冻RBC去甘油后RBC回收率为(80.24±6.19)%,游离血红蛋白浓度为(0.71±0.23)g/L,甘油残留量平均为3.79g/L,体外溶血实验血红蛋白增加率为21.66%。结论:冰冻解冻去甘油红细胞各项指标均达到国家规定的质量标准,临床输用效果良好。     

团体献血制备的冷沉淀凝血因子质量分析

目的 研究团体献血采集的全血在不同时间、不同温度下保存,制备成新鲜冰冻血浆及冷沉淀凝血因子的质量。方法 以2021年4月血站内团体献血采集的血液为研究对象,选取30袋300 ml全血。每袋300 ml全血立即均分为3份,3组,每组30袋。分别保存在（4±2）℃贮血冰箱（对照组）、（18±2）℃室内（实验1组）和（22±2）℃室内（实验2组）。每组取10袋分别于6 h、8 h、10 h运回成分制备科。成分制备科接收血液后在1 h内将全血分离制备成新鲜冰冻血浆。2周后将新鲜冰冻血浆取出,采用虹吸法1～6℃水浴制备成冷沉淀凝血因子。结果 全血在（18±2）℃和（22±2）℃保存6 h、8 h和10 h制备成新鲜冰冻血浆Ⅷ因子含量和冷沉淀凝血因子纤维蛋白原含量均符合国标要求。全血（22±2）℃保存10 h制备成冷沉淀凝血因子Ⅷ因子含量不符合国标要求。结论 为保证冷沉淀凝血因子的质量,团体献血在（18±2）℃保存的全血应10 h内运回,（22±2）℃保存的全血应8 h内运回。     

快速融化离心法与虹吸法制备冷沉淀的质量评价

目的: 评价快速融化离心法与虹吸法制备冷沉淀的质量与制备效率,选择优质高效的冷沉淀制备方法。方法: 取新鲜冰冻原料血浆420袋,分为2组,每组有200 ml原料血浆90袋,100 ml原料血浆120袋,4名成分制备人员连续2日分别采用虹吸法与快速融化离心法制备冷沉淀,记录制备时间,计算制备效率。每组随机抽取100 ml原料血浆制备的冷沉淀30袋,使用半自动血凝仪检测冷沉淀的Ⅷ因子和纤维蛋白原含量,分别计算合格率。结果: 快速融化离心法和虹吸法制备冷沉淀Ⅷ因子含量分别为（70.9±8.3）IU和（45.9±7.6）IU,合格率分别为100%和 90%,差异均有统计学意义（P <0.05）;纤维蛋白原含量分别为（96.0±7.3）mg和（79.0±6.8）mg,合格率分别为100%和90%,差异均有统计学意义（P <0.05）。快速融化离心法和虹吸法制备效率分别为46 U/h和40 U/h。结论: 快速融化离心法制备冷沉淀具有优质高效的特点,值得推广。     

用中和浓缩吸收法制备抗-M血清试剂的研究

目的解决人源抗-M试剂血清制备困难,节约N型红细胞。方法(1)将A、B型含有抗-M抗体的两种血浆混合;(2)将混合后血浆置-30℃冰箱,冰冻48~72h后取出,置4℃冰箱解冻,当血浆化到1/4时将塑料袋消毒,用塑料接头联接另一空袋,有冰的血浆放在上面,空袋在下面,大约流到80ml时,开始检测凝集强度;(3)用AN型10ml、BN型压积红细胞5ml加入吸收浓缩后血浆30ml混匀,置37℃30min吸收不完全抗-A、抗-B抗体,取出置4℃20min吸收完全抗-A、抗-B抗体。结果经过稀释中和后的血浆,抗-A、抗-B抗体效价从1∶32下降到1∶2与±;经浓缩吸收后,抗-M抗体效价从原来的1∶4上升到1∶8,凝集积分从23分上升到42分,这样保证原液与1∶2的凝集强度在 。鉴定结果更好观察。结论该方法既稀释中和了抗-A、抗-B抗体;通过浓缩又提高了抗-M抗体效价,节约了大量的红细胞,抗体效价及特异性符合抗-M试剂血清要求。