抗胶质瘤单链抗体—人肿瘤坏死因子α融合基因的构建及表达

目的 制备单链抗体-人肿瘤坏死因子α（hTNF-α)融合蛋白。方法 将hTNF-α的成熟肽cDNA以重组PCR技术融合于胶质瘤单链抗体基因的3′端,构建39ScFv-hTNF-α融合基因,克隆入大肠杆菌分泌型表达pET-20b( ),并诱导表达,结果 融合蛋白的表达量占菌体总蛋白的20%,还原SDS-PAGE和Western blot显示,其相对分子质量（Mr)为44000,具有识别胶质瘤相关抗原的活发表主TNF-α的抑瘤活性。结论 完成了39ScFv-hTNF-α融合基因的构建,并于大肠杆菌中表达了双功能融合蛋白,为胶质瘤的临床治疗提供了新的高效免疫导向药物。     

人肿瘤坏死因子α单链抗体的原核表达和活性分析

目的 在大肠杆菌中表达抗入ＴＮＦ－α单链抗体（ＳｃＦｖ）,并分析它的结合活性和中和活性。方法 在获得抗人ＴＮＦ－αＥＳｃＦｖ基因的基础上,用热诱导载体ｐＢＶ２２０在大肠杆菌中表达Ｅ６ＳｃＦｖ蛋白。ＥＬＩＳＡ测定抗体的结合活性,实时ＢＩＡ技术确定亲和常数。Ｌ９２９细胞毒试验分析其中和活性。结果 克隆了抗人ＴＮＦ－αＥ６ＳｃＦｖ基因的热诱导载体ｐＢＶ２２０在大肠杆菌中,经４２℃热诱导,得到了相对分子质     

抗CEA单链抗体与人hTNF-α融合基因的构建、表达和纯化

采用基因重组技术将已获得的抗癌胚抗原（ＣＥＡ） 单链抗体基因（ＳｃＦｖ） 与人肿瘤坏死因子α（ｈＴＮＦ α） 基因拼接成抗ＣＥＡＳｃＦｖ ｈＴＮＦ α（免疫毒素） 融合基因, 并克隆进大肠杆菌分泌性表达载体ｐＥＴ ２２ｂ （ ＋ ） 中, 在大肠杆菌中表达了６ ×Ｈｉｓ免疫毒素融合蛋白, 其６ ×Ｈｉｓ 位于ＳｃＦｖ 的Ｎ 端, 在胞内以可溶性存在, 其表达量占菌体总蛋白的６％ , ＳＤＳ ＰＡＧＥ 和Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔ 显示表达产物分子量为４３ｋＤ, 与其基因编码蛋白的理论推算值相符。经Ｎｉ２＋ ＩＤＡＳｅｐｈａｒｏｓｅ６Ｂ亲和柱一步纯化的６×Ｈｉｓ 免疫毒素纯度可达９０％ 以上, 得率为０－２ｍｇ／１００ｍｌ。表达产物除了具有与ＣＥＡ 结合的活性, 也具有对Ｌ９２９细胞杀伤的功能。     

人源化抗CD3单链抗体在大肠杆菌中的表达

在以前的工作中 ,我们利用本研究室制备的抗胶质瘤单克隆抗体ＳＺ39通过化学偶联的方法制备了抗ＣＤ3/抗胶质瘤双特异性抗体 ,并在体外细胞毒及荷瘤动物体内试验中取得较好疗效[1,2 ] ,但存在着分子量大 ,穿透力弱 ,免疫原性强 ,制备困难等缺点。因此 ,研制小分子 ,低免疫原性的人源化抗ＣＤ3/抗胶质瘤双特异性抗体是我们正在开展的研究项目之一。目前我们已构建并原核表达了抗胶质瘤单链抗体ＳＺ39 ＳｃＦｖ。本研究构建并表达的人源化抗ＣＤ3单链抗体 ,旨在为下一步制备高效低毒的抗ＣＤ3/抗胶质瘤双特异性抗体提供一个理想的构件。1　材…     

抗人HAbl8G分子单链抗体基因的构建及在大肠杆菌中的分泌表达

目的：构建抗人HAbl8G分子单链抗体基因，并在大肠杆菌中进行分泌表达。方法：通过连接肽(G1y4Ser)3基因序列将已成功克隆的抗人肝癌单抗HAbl8轻、重链可变区基因拼接成单链抗体(ScFv)基因，并在5′和3′端引入相应的酶切位点，克隆至改造的分泌性表达载体pCANTAB 5His之中，转化到E.coli HB215l中进行诱导表达。亲和层析纯化表达蛋白后，以SDS-PAGE电泳、Western blot及ELISA等方法分析检测表达产物。结果：经限制性酶切鉴定及DNA测序分析，证实基因构建正确。SDS-PAGE电泳和Western blot分析表明ScFv基因在大肠杆菌中成功表达。表达产物的相对分子质量(Mr)为3lkD，与理论预期值相符，并且可与相应的抗原特异结合。结论：成功实现了抗人HAbl8G分子单链抗体的原核分泌表达，为其在人肝癌诊治中的进一步应用奠定了基础。     

抗肿瘤坏死因子—α抗体的应用研究

人们愈来愈发现，肿瘤坏死因子－α过量产生会导致严重的临床疾患，近年来，α拮抗及其机理的研究逐步深入，尤其抗ＴＮＦ－α抗体的效用研究已显示出临床应用抗体治疗急性感染性炎症和自身免疫疾病、抑制ＧＶＨＲ、阻止细胞凋亡的良好前景。     

抗乙肝病毒表面抗原单链抗体在大肠杆菌中的高效表达

在大肠杆菌中高效表达抗乙肝表面抗原的单链抗体。方法：通过ＰＣＲ将单链抗体基因重组到原核细胞表达载体ＰＴ１７中,构建单链抗体高效表达载体ＰＴ７ＳＣ。将ＰＴ７ＳＣ质粒转化大肠杆菌ＢＬ２１,ＴＰＴＧ诱导进行表达。     

单链抗体基因在大肠杆菌高效表达研究进展

利用基因工程，将单链抗体（ScFv）基因导入大肠杆菌，如何使其获得高效表达，仍然是目前面临的主要问题。本文就ScFv基因在大肠杆菌中的表达形式、影响表达的主要因素、表达条件的优化选择及其应用前景方面作一综述。     

乙肝病毒核心蛋白人源单链抗体在大肠杆菌中的表达

目的 获得可溶性的抗乙型肝炎病毒（HBV）核心蛋白（core)的人源单链可变区抗体（ScFv)，为得到纯度高、活力强的HBc-ScFv和进一步的抗HBV治疗奠定基础。方法 采用噬菌体表面展示技术，以重组的HBV核心蛋白为包被抗原，从噬菌体单链可变区抗体库中经过5轮“吸附－洗脱－扩增”筛选过程，获得抗原结合活性较强的乙型肝炎核心蛋白人源单链可变区抗体ScFv片段克隆，并对其进行DNA序列及免疫活性测定。从噬菌体抗体阳性克隆中提取质粒转化大肠杆菌HB2151，IPTG诱导表达乙型肝炎核心蛋白可溶性人源单链可变区抗体，ELISA和western blot检测其抗原结合特异性。结果 克隆了乙型肝炎核心蛋白的单链可变区抗体基因；经DNA酶切和序列分析表明，该抗体基因由771个碱基组成；ELISA和western blot结果表明：在大肠杆菌HB2151中经IPTG诱导表达的可溶性乙型肝炎核心蛋白的单链可变区抗体，具有结合乙型肝炎核心蛋白的特异性和免疫活性。结论 克隆、鉴定并在大肠杆菌HB2151中表达了可溶性的HBc-ScFv。     

抗人VEGF165单链抗体的构建与表达

为降低鼠源抗体对人体的免疫原性,构建表达了ＶｍＤ１１的单链抗体。方法用ｏｖｅｒｌａｐＰＣＲ构建出单链抗体的基因,克隆入表达载体ｐＫｐＬ－３ａ,在大直菌ｏｐｏ２１３６中表达,采用抗原结合ＥＬＩＳＡ和竞争抑制ＥＬＩＳＡ测定活性。结果经ＳＤＳ－ＰＡＧＥ检测,诱导后的细菌表达了２６ｋＤ的蛋白;ＷｅｓｔｅｒｎＢｌｏｔ证实该蛋白为表达的单链抗体。经变性,复性后,该单链抗体可特异结合人ＶＥＧＦ１６５抗原,并与Ｖ     

应用基因工程方法制备新型重组人肿瘤坏死因子-α

目的　应用基因工程技术 ,制备一种新型的重组人肿瘤坏死因子 α (novelrecombinanthumantumornecrosisfactor α ,nrhTNF α) ,并对其生物学活性、理化性质进行鉴定 ,为进入临床前研究提供基础。方法　应用PCR技术 ,将hTNF α基因的 5′端 17个氨基酸的编码序列删除 ,基因中Pro8Ser9Asp10 的编码序列用Arg Lys Arg的编码序列取代 ,同时Leu157的密码子被Phe的密码子所取代。将hTNF α突变基因 ,插入原核高效表达载体pBV2 2 0中 ,构建高表达工程菌株。纯化表达产物 ,对连续 3批制备的新型rhTNF α,按人用《重组DNA制品质量控制要点》检定要求进行鉴定。结果DNA序列分析和蛋白质N末端、C末端部分氨基酸序列分析表明 ,nrhTNF α与天然的hTNF α相比较 ,N末端缺失了 7个氨基酸 ,13位氨基酸为Arg Lys Arg ,其后为天然hTNF α 11位以后的氨基酸。 15 7位Leu的密码子被Phe的密码子所取代。产物表达量占菌体蛋白的 6 7.4 %。经 (NH4) 2 SO4沉淀、Q SepharoseF .F .及S SepharoseF .F .柱层析分离纯化后 ,产品的纯度达 99% ,比活性达 1× 10 9IU/mg蛋白。结论成功地制备了nrhTNF ,对连续 3批制备的nrhTNF α按人用《重组DNA制品质量控制要点》检定要求进行鉴定 ,所有项目均合格     

HIV—1整合酶单链抗体在大肠杆菌中的表达,纯化与鉴定

将具有ＨＩＶ－１整合酶结合活性的单链抗体重组噬菌感染ＨＢ２１５１大肠杆菌，经ＩＰＴＧ诱导，在周质腔萃取物及培养基上清中，均检测到有较特慢与整合酶结合的可溶性单链抗体的表达，利用ＨｉＴｒａｐＡｎｔｉ－Ｅｔａｇ柱对单链抗体进行了亲和层析纯化，Ｗｅｓｔｅｒｎ－ｂｌｏｔ结果初步表明，单链抗体不仅可与整合酶的单体反应，而且也可与茯二聚体结合，提示：研制的单链抗体可用于对ＨＩＶ－１整合酶活性影响的研究。     

抗人RBC血型B抗原双价小分子抗体基因的构建与表达

目的： 分离抗人红细胞血型Ｂ抗原单克隆抗体（ｍＡｂ） ５Ｄ１２ 可变区基因, 构建并表达其双价小分子抗体（ｄｉａｂｏｄｙ） 融合蛋白, 为用原核细胞生产抗血型Ｂ抗原工程抗体进行基础研究。方法： 设计合成抗体重、轻链可变区引物, 通过加端ＰＣＲ技术, 在ｍＡｂ ５Ｄ１２ ＶＨ 和ＶＬ基因两端引入连结短肽和适当的限制性酶切位点,体外连接构建５Ｄ１２ ｄｉａｂｏｄｙ 基因, 并将其克隆入融合表达载体ｐＧＥＸ４Ｔ２ 中, 在Ｅ－ｃｏｌｉ ＴＧ１ 中表达。运用ＰＣＲ和双脱氧核苷酸链末端终止法分析其核苷酸序列。结果： ＤＮＡ 序列分析表明, ５Ｄ１２ ｄｉａｂｏｄｙ 基因全长为６９９ｂｐ;其中ＶＨ 长３５１ｂｐ , 编码１１７ 个氨基酸; ＶＬ 长３２４ｂｐ , 编码１０８ 个氨基酸, 两者以五肽连接头相连; 重组体表达产物经ＳＤＳＰＡＧＥ显示, ＧＳＴ５Ｄ１２ ｄｉａｂｏｄｙ 表达产物的相对分子质量（ Ｍｒ） 为５１ ０００ 左右, 与预期结果相符。光密度扫描结果表明, ＧＳＴ５Ｄ１２ ｄｉａｂｏｄｙ 融合蛋白占菌体总蛋白的２４－６％ , 表达产物主要以不溶性的包涵体形式存在。结论： 成功地构建并表达了５Ｄ１２ 双价小分子抗体基因, 在原核细胞中获得较高水平     

从半合成抗体库克隆抗TNF-α人单链抗体

通过噬菌体抗体库技术,不经免疫克隆抗ＴＮＦ－α人单链抗体,用固相化的重组ＴＮＦ－α抗原对半合成噬菌体抗体库进行了４轮“吸附－洗脱－扩增”的筛选。     

抗人HAb18G分子单链抗体基因的构建及在大肠杆菌中的分泌表达

目的 :构建抗人HAb18G分子单链抗体基因 ,并在大肠杆菌中进行分泌表达。方法 :通过连接肽 (Gly4Ser) 3基因序列将已成功克隆的抗人肝癌单抗HAb18轻、重链可变区基因拼接成单链抗体 (ScFv)基因 ,并在 5′和 3′端引入相应的酶切位点 ,克隆至改造的分泌性表达载体pCANTAB 5His之中 ,转化到E coliHB2 15 1中进行诱导表达。亲和层析纯化表达蛋白后 ,以SDS PAGE电泳、Westernblot及ELISA等方法分析检测表达产物。结果 :经限制性酶切鉴定及DNA测序分析 ,证实基因构建正确。SDS PAGE电泳和Westernblot分析表明ScFv基因在大肠杆菌中成功表达。表达产物的相对分子质量 (Mr)为 31kD ,与理论预期值相符 ,并且可与相应的抗原特异结合。结论 :成功实现了抗人HAb18G分子单链抗体的原核分泌表达 ,为其在人肝癌诊治中的进一步应用奠定了基础。     

3种新型人肿瘤坏死因子衍生物在大肠杆菌中的表达与活性检测

目的 研制高抗瘤活性的新型肿瘤坏死因子.方法 在总结前人有关hTNF-α结构与功能关系研究的基础上,应用PCR技术构建了3种多位点同时突变的hTNF-α新型编码基因,分别在大肠杆菌中进行表达,并用DNA序列分析和Western blot进行鉴定,L929细胞检测体外抗瘤活性.结果 3种衍生物均在大肠杆菌中获得高效表达,活性测定结果表明,3种衍生物对L929细胞的细胞毒活性分别比原型hTNF-α提高576、641和153倍.结论 3种衍生物的抗瘤活性有了较大的提高,从而显示出潜在的临床应用前景.     

抗重组人肿瘤坏死因子-α(rHTNF-α)单克隆抗体特性及功能的研究

应用杂交瘤技木制备抗重组人肿瘤坏死因子-α单克隆抗体对于r-HTNF-α的纯化和TNF-α分子的抗原性及功能的研究将是一种主要工具。本实验对一组抗rHTNF-α单克隆抗体的特性和功能进行了研究。Western blotting结果表明Z_4、Z_8、Z_(12)、Z_ (20)、Z_(21)、B_3和E_6 抗体特异性地识别分子量为17000道尔顿的TNF-α它们与rIL-1、rIL-2、rIFNγ、rIFNα、和E coli菌裂解液无交叉反应。竞争性ELISA结果证实7种抗体分别识别TNF-α分子上5个不同的抗原决定簇。其中4个抗体可以识别TNF-α活性中心部位。两个抗体还可以识别天然TNF-α分子。     

抗GD2/抗CD16单链双特异性抗体的构建及在大肠杆菌中的表达

利用重叠PCR(overlap-PCR)将抗GD2表面抗原GD2的单链抗体基因m-ScFv和抗CD16的单链抗体基因NM3E2融合在一起,得到新型的单链双特异性抗体基因n-m,双抗的联接肽序列为SerGly4Ser,在肽连的C端引入了6×his以利于纯化。该双特异性抗体基因的序列经测序验证后,连接表达载体pET-22b( ),转化大肠杆菌菌株BL21(DE3),诱导表达,凝胶成像系统扫描显示表达的外源融合蛋白约占菌体总蛋白的27%。表达蛋白分泌于胞质空间,经超声波破胞后收集上清,经Ni 亲和层析柱分离,纯度可达90%以上。经SDS-PAGE及Westernblotting鉴定表达蛋白的分子量为53KD,与预期的相符。     

抗肝癌单链抗体(鼠及人源化)融合突变型TNF-α的构建、表达及其作用研究

我室从HAb25抗肝癌单克隆抗体中制备并高效表达了抗肝癌鼠及人源化单链抗体m/hscFv25(人源化工作由军事医学科学院袁清安等完成),与人天然型TNF-α连接后取得了一定的治疗效果.但由于天然型TNF-α的毒副作用很大,我们尝试用高活性、低毒性的突变型TNF-α(mTNF-α)将之替代,构建新型、高效、低毒的抗肝癌抗体原核表达载体pGEX4T-1/scFv25-mTNF-α,通过诱导表达、纯化后,对SMMC-7721肝癌细胞及荷肝癌裸鼠进行导向治疗研究.