多相脂质体(139)不同温度下的1HNMR谱变化和13CNMR谱T1的研究

应用FT-NMR观察多相脂质体(139)不同温度下的¹HNMR谱的变化显示:78～90℃之间,谱线有突变,升至108℃后再冷至室温,振摇,谱线复原。添加兼性大分子化合物,磷脂的亲水端和疏水端的质子峰峰形变矮变宽。其~(18)CNMR的弛豫时间T₁:端甲基为0.90,酰头基为0.60,说明多相脂质体(139)比大豆磷脂双分子层的流动性变小,酰头基的自由度增加。     

油酸多相脂质体(139)注射液包封率测定方法的研究

本文提出了油酸多相脂质体139注射液中脂质体的药物包封率和药物含量的测定方法,以凝胶过滤法Sephadex G-50柱测定139注射液中多相脂质体的重量包封率Qw平均为94.2%;同时又以显微镜照像及统计方法测量了脂质体的体积包封率Qv平均为97.1%。并讨论了影响脂质体中药物包封率的各种因素。     

多相脂质体(139)液晶态的物理特性观察

我院与上海市长宁区中心医院协作筛选出的多相脂质体(139)混悬型静脉注射液,主要组成有油酸、大豆磷脂、胆固醇、非离子表面活性剂以及高效分散剂PVP等。市售的所谓化学纯油酸,经色谱质谱联用分析,实际上是由油酸(68.32％)、亚油酸(15.47％)、棕榈油酸(4.92％)、软脂酸(8.02％)及微量亚麻油酸和廿碳二或三烯酸所组成,这些脂溶性成分大     

喜树碱多相脂质体(代号139—10号)注射液中微粒的电泳性质研究

本文应用Zeta电位测定仪研究了139—10号注射液中微粒的电泳性质。实验结果表明:微粒是荷负电荷;随着分散介质离子强度的增加,微粒的ζ电位降低;微粒表面吸附人参多糖后,ζ电位降低。处方组成不同,ζ电位不同。     

高三尖杉酯碱多相脂质体(139—5号)制剂和药理学研究

本文报告了高三尖杉酯碱多相脂质体(139-5号)的处方设计、制备工艺及抗肿瘤和临床前药理研究结果。139—5号中加入免疫促进剂,制备工艺采用熔融法。小鼠尾静脉注射给药,剂量为1.0mg/kg 时对 L_(615)和 S_(180)的抑制率分别为37.3—57.4%和50.0—72.3%;剂量为0.75mg/kg 时,对 S_(180)的抑制率为34.1-50.9%;均高于其水溶液对照组。小鼠尾静脉和腹腔一次给药的 LD_(50)分别为3.53mg/kg 和2.44mg/kg。家兔耳静脉连续给药15天,高剂量(0.30mg/kg/day)对造血功能有一定抑制作用,观察到可逆性肝细胞变性,其它脏器未发现明显病变。     

脂质体、修饰脂质体与改良脂质体给药系统及其进展(上)

1脂质体 脂质体(liposomes)系指将药物包封于类脂质双分子层内而形成的微型囊泡(vesicles),也有人称脂质体为类脂小球或液晶微囊.类脂质双分子层厚度约4 nm.     

氨甲喋呤(MTX)多相脂质体化学稳定性的研究

以多相脂质体为载体能增强MTX的化学稳定性。在避光条件下,MTX多相脂质体注射液,25℃时贮存期为4.2年。pH 7的磷酸盐缓冲溶液中的MTX,25℃避光条件下,是以一种新的途径降解。磷酸盐对该反应有特殊的催化作用;而在高温或多相脂质体的存在能防止该反应的发生。     

氨甲喋呤(MTX)多相脂质体化学稳定性的研究

以多相脂质体为载体能增强MTX的化学稳定性。在避光条件下,MTX多相脂质体注射液,25℃时贮存期为4.2年。pH 7的磷酸盐缓冲溶液中的MTX,25℃避光条件下,是以一种新的途径降解。磷酸盐对该反应有特殊的催化作用;而在高温或多相脂质体的存在能防止该反应的发生。     

喜树碱多相脂质体(PL-CSA)的研究

制成了喜树碱多相脂质体(PL—CSA)。动物实验显示,PL—CSA对ECA,ECS带瘤小鼠有抗癌作用,急性毒性为喜树碱的5～7/10,LD₅₀=130mg/kg。ECS带瘤小鼠单次静注后,喜树碱在体内的分布以胆(含胆汁)为最高,依次是肠(含内容物)、胃(含内容物)、肾、脾、心、肺、肝、骨髓、瘤和血。本文首次应用离心沉降法测定PL—CSA灭菌前后的粒径大小及其分布,D_a=1.3～1.4μm,D_v=1.7μm。联用超滤和超离心技术测定PL—CSA中喜树碱的包封率、吸附率和游离量,分别为32.4～47.0%,19.6～26.6%和13.5～17.0%。     

甲氨喋呤(MTX)多相脂质体的包封率测定与渗漏研究

本文参照文献确立了一种快速、准确、简便、适合于多相脂质体包封率测定法——葡聚糖凝胶微型柱—荧光法。测得结果表明,葡聚糖凝胶微型柱对于脂质体内外的MTX具有良好的分离效果,MTX多相脂质体的包封率为22%。并研究了MTX的渗漏,结果表明只能由脂质体内相向外渗漏,而不被脂质体摄取。     

多相脂质体139中油酸~3H标记物体内分布及药物动力学研究

本文利用氚标记的油酸研究了多相脂质体139在动物体内的分布及药物动力学。表明该制剂静脉注射于家兔后,血药浓度时程曲线呈现两隔室开放模型特征。分布相半衰期为0.2小时,消除相半衰期为24.9小时,在小白鼠的脏器分布具有一定指向性。在脾、肝、肺脏中分布最高,在胸腺及瘤组织中亦有检出。     

多相脂质体139注射液物理稳定性的研究

本文研究了多相脂质体139注射液蘑要的物化性质,在研究中发现其电导率对多相分散体系分散度的变化比较敏感。因此,设计了电导法测定体系分散度变化规律,得出其凝聚速度方程、凝聚活化能和凝聚速度常数,描述了此类多相分散系分散度变化的规律,这些数据可定量地砰价此类多相分散系的物理稳定性。同时,本文又利用库尔特计数器(Coulter counter)测定了139注射液的粒度分布和粒径变化规律,由粒度变化求得的凝聚活化能与由电导法求得的凝聚活化能一致,说明电导法是可靠的,反映了多相分散系中全部分散粒子分散度即凝聚的变化规律,该方法比较简便、易行。     

多相脂质体139抑制DNA、RNA、蛋白质生物合成机制的初步研究

多相脂质体139能够明显抑制癌细胞 DNA 合成,其抑制~3H—TdR 掺入艾氏腹水癌细咆 DNA 合成的曲线为缓慢递增型,表现为可逆性抑制并具有浓度依赖性。药物剂量为1.0mg/ml 时对 RNA 合成呈现轻度抑制并导致癌细胞核酸含量减少。“139”对S—180鼠肿瘤细胞蛋白质合成作用显著,最高抑制率为67.8%。对 RRL 蛋白质合成抑制率为46.8%,这种抑制作用是在延迟了十分钟后表现出来的,说明反应体系中聚核糖核蛋白体上已经开始合成肽链的核糖核蛋白体仍可继续完成肽链的合成,而新的核糖核蛋白体重新由其亚基组合时则受到一定抑制。“139”对肽酰—~3H—嘌吟霉素结合反应并无抑制作用,故不是转肽抑制剂.     

多相脂质体139注射液化学稳定性的研究

本文根据多相脂质体139注射液的处方组成及其主要有效成份的结构和性质,设计了利用碘量法测定139注射液中不饱和度(双键氧化)和电导滴定法测定酸度的变化规律,得出包封于脂质体中药物的氧化反应符合零级反应速度方程,载体主要成分的脂键水解反应也符合零级反应速度方程;并求得了多相脂质体139注射液中双键氧化反应与载体成分的水解反应的活化能和反应速度常数;预测了药物贮存期 t_(0.9)~(25℃)=2.63年。同时,本文提出了利用电导滴定曲线确定在缓冲溶液及多种化学成份的复杂体系中弱酸盐滴定终点的新方法。     

氨甲喋呤多相脂质体的制备及其动物抑瘤活性和临床前药理学实验研究

采用融熔法制备了氨甲喋吟(MTX)多相脂质体,并进行了抑瘤活性、小鼠急性毒性、家兔亚急性毒性和安全性实验。结果表明多相脂质体剂型显著提高了 MTX 对小鼠 EC 和 L615瘤株的抑瘤活性。急性毒性实验结果表明 MTX 多相脂质体和 MTX 水溶液的 ivLD_(50)值无显著性差异。亚急性毒性实验表明 MTX 多相脂质体大剂量给药时可出现肝细胞变性坏死。安全性实验未见异常反应。     

多糖多相脂质体的物理性质与稳定性研究

本文主要研究多糖多相脂质体的物理性质——多相脂质体加热灭菌前后的形状、结构、粒度分布变化以及对药物丝裂霉素的包封率和聚结稳定性。实验证明:多糖多相脂质体的热稳定性好。经100℃60 min灭菌可保持完整多相脂质体形态、均匀的粒径与稳定的包封率。用Coulter计数仪测定了贮存过程中聚结成人粒子的变化规律。测得其聚结活化能E=99.992 kJmol^-1,是比较稳定的多相脂质体。     

混悬型多相脂质体139静脉输注液粒径及异物检查方法

The methods on observation of the pattern of polyphase liposome and on determination of size and distribution of particles and particulate matter of intravenous injection of polyphase liposome (139) in the form of suspension are presented in this paper. Microscopic photographs of the injection of polyphase liposome (139) demonstrated the structure of artificial cell of polyphase liposome. With Coulter counter (TAⅡ) and microscope-micrometer the size and distribution of particles in the injection of polyphase liposome (139) in the form of suspension is shown. The results of measurement by the two methods are the same, especially the results on size of the large particles in the injection (139). Moreover, the membrane filter-microscope method described in USP ⅩⅩ for measureing the particulate matter in large-volume injection for single dose infusion was improved. The improved method was used in the determination of particulate matter in the intravenous injection of polyphase liposome (139) in the form of suspension. This method is not only more accurate but also more simple and convenient than the original USP ⅩⅩ method.