聚唾液酸的摇瓶工艺

研究了突变株JYL 11(Escherichiacoli)的摇瓶发酵工艺条件:在山梨醇40g/L,K2HPO420g/L,NH4Cl4g/L,MgSO40.9g/L,蛋白胨1.5g/L,起始pH值7.8,装液量35mL(250mL的三角瓶中),转速250r/min,培养温度37℃,接种量为4%(体积分数)的条件下,聚唾液酸产量达到3.5mg/mL,比优化前提高了1.0mg/mL,提高幅度为40%.     

重组大肠杆菌生产谷胱甘肽合成酶系的摇瓶发酵条件

研究了重组大肠杆菌E.coli Ⅱ-1 摇瓶发酵生产谷胱甘肽合成酶系的工艺条件，确定了E.coli Ⅱ-1 的最适产酶条件.最佳发酵培养基组成（g/L）为葡萄糖10, 蛋白胨5, 酵母膏2.5, K     

聚γ-谷氨酸高产突变株的选育及摇瓶发酵条件

对地衣芽孢杆菌(Bacilluslicheniformis)进行亚硝基胍和60Co诱变,获得一株γ PGA的高产菌株C9.γ PGA质量浓度由9.44g/L提高到19.76g/L,提高了109%.突变株传代10次,质量浓度保持基本稳定.通过正交试验和单因素试验对发酵培养基及发酵条件进行了优化.当发酵培养基中含柠檬酸12g/L、甘油80g/L、L 谷氨酸23g/L、氯化铵7g/L,pH7.0,装液量为50mL/250mL三角瓶,接种体积分数为5%时,37℃摇瓶发酵72h,γ PGA达到23.32g/L.     

大肠杆菌产生的聚唾液酸的结构

研究了大肠杆菌产生的聚唾液酸的分子结构，对聚唾液酸的分子基团特征进行了红外光谱分析，研究了聚唾液酸糖苷键的连接方式和构型．发酵液中的聚唾液酸经超滤浓缩、有机沉淀和离子交换层析处理，得到高纯度的聚唾液酸，经^13C-NMR分析和比较，表明所得到的聚唾液酸是一种α-2，8糖苷键连接的同聚物。     

真养产碱杆菌利用葡萄糖生产聚β-羟基丁酸的摇瓶发酵条件

以葡萄糖为碳源，对真养产碱杆菌生产ＰＨＢ的摇瓶发酵条件进行了探索。研究结果表明，在摇瓶补料条件下，细胞干重和ＰＨＢ质量浓度可分别达到３５．１ｇ／Ｌ和２８．３ｇ／Ｌ，ＰＨＢ对葡萄糖的产率系数为０．３６ｇ／ｇ．     

pH值对聚唾液酸分批发酵的影响及补料发酵

研究了不同pH值对聚唾液酸发酵过程中菌体生长和产聚唾液酸的影响.发酵初期pH自然下降时有利于菌体生长,菌体生长对数期较长,最大菌体干重可达6.9g/L;发酵中后期pH控制在6.4时有利于聚唾液酸的延续合成,合成对数期比其它pH条件下的合成对数期延长了11h.动力学特性表现为部分相关模式,而在其它pH条件下,动力学特性表现为相关模式.对聚唾液酸的流加补料发酵进行了初步研究,最终使菌体干重达到11.16g/L,聚唾液酸产量达到2.606g/L.     

重组大肠杆菌生产人表皮生长因子的发酵条件

通过质粒转化实验,获得了较好的产hEGF重组菌,对重组菌发酵条件进行优化,获得最佳初始糖质量浓度为5g/L、蛋白胨20g/L、酵母抽提物10g/L、(NH4)2HPO43.5g/L、Amp100mg/L;最佳接种时间为种子液生长到5～6h,即菌体OD值在1.0～2.0;诱导剂最佳添加时间为8h,即菌体OD值在8.0左右.通过流加发酵进行高密度培养,可使重组菌的hEGF的产率达102mg/L,比优化前提高了近30%.     

发酵生产谷氨酰胺转胺酶的摇瓶条件

在摇瓶条件下， 以淀粉为碳源，蛋白胨及酵母膏为氮源，对Ｓｔｒｅｐｔｏｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｕｍｍ ｏｂａｒａｅｎｓｅ生产谷氨酰胺转胺酶（ＭＴＧ）的摇瓶发酵条件进行了探索．研究结果表明，发酵法生产谷氨酰转胺酶的适宜初始ｐＨ 值、淀粉质量浓度、接种量分别为６．１，２ ｇ／ｄＬ，１０％ ；ＭＴＧ酶活最高可达１．８３ ｕｍ ｏｌ／（ｍ ｉｎ·ｍ Ｌ）．初始加入硫酸铵对菌体生长影响不大，但对ＭＴＧ 的合成却产生抑制作用；初始加入纯氨基酸及胱氨酸母液不利于ＭＴＧ 酶活的提高．     

赖氨酸摇瓶发酵条件的优化

针对赖氨酸发酵的工业化要求,以黄色短杆菌（Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍｆｌａｖｕｍ）ＷＳＨＬ１为产生菌进行了摇瓶条件下的赖氨酸发酵条件研究．通过正交实验得到了较佳氮源配比;经在发酵过程中添加几种氮源的试验,发现发酵中后期添加适量有机氮源有利于发酵;考察不同初始硫酸铵和葡萄糖浓度对发酵的影响,确定了适合工业生产的浓度范围;采用分批补料培养方式,最终赖氨酸盐酸盐质量浓度为８５．５ｇ／Ｌ     

重组大肠杆菌生产人血管抑素的发酵条件

对重组人血管抑素表达菌株pQE32 AGN的生长及产物表达规律进行了探索,确定了最佳发酵条件.培养温度为37℃,初始pH7.0,OD600为0.8～1.0时开始诱导,诱导持续时间为6h,诱导剂浓度为0.1mmol/L,最终目的产物达到菌体总蛋白的35%,rhAGN的表达量达到560mg/L.     

兽疫链球菌摇瓶发酵法生产透明质酸

∶研究了Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｚｏｏｅｐｉｄｅｍ ｉｃｓＨ２３ 摇瓶发酵生产透明质酸的条件，并对发酵机制进行了初步探讨．研究发现，Ｈ２３ 在通风和厌氧条件下都能生产透明质酸．透明质酸的合成和菌体生长是偶联的，对不同的碳源质量浓度显示出不同的规律．酵母膏、葡萄糖是合适的氮源和碳源，初始质量浓度应分别为２ ｇ／ｄＬ、４ ｇ／ｄＬ． Ｍｇ２＋ 对发酵有很大的影响，ＭｇＳＯ４·７Ｈ２Ｏ 最佳质量浓度为０．２ ｇ／ｄＬ． 摇瓶条件如温度、通风等也影响透明质酸的形成，温度３３ ℃，摇瓶装液量４０ ｍ Ｌ时最有利于透明质酸合成．在较适合的条件下，透明质酸产量可以达到０．４７ ｇ／Ｌ，产物对碳源的转化率为２．１％ ．     

脱镁叶绿酸a对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌的抑制作用

以叶绿素为提取物，进行化学修饰得到光敏活性剂-脱镁叶绿酸α，其对微生物生长影响的研究表明：在光照条件下，脱镁叶绿酸α对金黄色葡萄球菌的生长和大肠杆菌原生质体的再生有明显的抑制作用；在暗培养条件下，脱镁叶绿酸α的抑制作用减弱。     

不同人群中分离的大肠埃希菌的耐药性及多重耐药机制

目的 分析健康成人、儿童和患者3组人群中分离的大肠埃希菌对常用抗菌药物的耐药性和耐药机制.方法 采用MicroScan-Walkway-40系统鉴定细菌,琼脂平皿倍比稀释法测定各种抗菌药物MIC(minimal inhibitory concentraton),对筛选出的215株MDR进行PCR扩增及序列分析检测这些菌株产AmpC和ESBLs的基因型.结果 大肠埃希菌对亚胺培南、阿米卡星、哌拉西林/他唑巴坦显示较好的敏感性.健康成人和临床患者携带的MDR比例分别为58.3%和74.6%.PCR及序列分析表明本地区已出现CMY-2、DHA-1型AmpC酶和以CTX-M为主的ESBLs,并检测到1株新CMY型基因和1株ESACs菌株. 结论 健康人与患者肠道中病原大肠埃希菌对常用抗菌药物的耐药率相当高,在MDR中检测出多种AmpC和ESBLs基因.应严格控制抗菌药物使用并养成良好卫生习惯以减少耐药株出现.     

不同时间段临床分离的大肠埃希菌的耐药性及分布

目的连续分析院内不同季度分离的大肠埃希菌的耐药性及分布,为临床经验治疗大肠埃希菌引起的感染提供理论依据。方法对2012年10月～2012年12月（2012年第4季度）、2013年1月～2013年3月（2013年第1季度）、2013年4月～2013年6月（2013年第2季度）和2013年7月～2013年9月（2013年第3季度）分别分离的213株、261株、236株和276株大肠埃希菌,用Walk Away 96 PLUS NC50药敏板检测菌株对亚胺培南等19种抗菌药物的耐药性,并对检测结果进行分析。结果 4个季度分离的大肠埃希菌对氨苄西林和四环素的耐药率均〉73%,对头孢唑啉、复方新诺明、环丙沙星、头孢夫辛和头孢噻肟的耐药率为52.9%～75.1%,对氨曲南、左氧氟沙星、头孢吡肟和庆大霉素的耐药率为42.9%～57.6%,对头孢他啶耐药率为33.0%～41.8%,对阿莫西林/克拉维酸、头孢西丁、阿米卡星、哌拉西林/他唑巴坦、亚胺培南、美罗培南和厄他培南的耐药率均〈23%。不同阶段分离的大肠埃希菌37.93%～48.31%的标本来源于尿液,15.25%～35.25%的标本来源于痰液,4.98%～13.15%的标本来源于血液。结论 2012年10月～2013年9月4个季度分离的大肠埃希菌对临床常用的多数抗菌药物的耐药率相差不大,各季度分离的大肠埃希菌主要引起泌尿道感染,其次是呼吸道和血流感染。     

外界因子对超高压杀灭大肠杆菌效果的影响

通过鉴别设计法对影响超高压杀菌效果的外界因子,如压力、温度、保压时间、升压速度及卸压速度等关键因子进行考察与评价.结果表明:温度、压力和保压时间对灭活大肠杆菌影响显著,升压速度和卸压速度对灭活大肠杆菌影响不显著.     

Hyperbilirubinemia and urinary tract infection: the effect of indirect hyperbilirubinemia on the in vitro growth of uropathogen Escherichia coli in newborn urine

High serum bilirubin is antioxidant and cytoprotective. We evaluated if urine samples of hyperbilirubinemic newborns impede uropathogenic Escherichia coli growth. Bag-urine samples of hyperbilirubinemic newborns (study group) were cultured at presentation and during remission. Urine sample were obtained only once from healthy newborns (control group). Escherichia coli [2?×?104?colony-forming unit (cfu)/mL] was inoculated into the sterile urine samples and colony counts were determined after 24?h. Bilirubin levels at presentation and remission were also recorded. Escherichia coli colony counts of the control versus study groups and of the presentation versus remission samples in the study group were compared. There were 13 study and 17 control cases. Escherichia coli colony counts were not different in the study group at presentation versus remission (5.4?±?0.7 vs. 5.5?±?0.8 log₁₀, respectively; p?=?0.659). Escherichia coli colony count of the control group (5.2?±?0.6 log₁₀) was also not different from the study group. In conclusion, the urine of hyperbilirubinemic newborns did not affect the growth rate of uropathogenic E. coli.