Fas基因在卵巢癌细胞凋亡中的作用

目的：检测Ｆａｓ基因表达并观察转染Ｆａｓ基因对卵巢癌细胞凋亡的影响,探讨其在卵巢癌发生、发展中的作用。方法：经流式细胞术、ＲＴ－ＰＣＲ方法检测６种卵巢癌细胞Ｆａｓ的表达水平。构建ｐｃＤＮＡ３－Ｆａｓ真核表达载体。经脂质体转染细胞,通过流式细胞仪检测Ｆａｓ基因表达变化。应用ＰＩ染色经流式细胞术检测观察转染Ｆａｓ基因对３ＡＯ细胞凋亡的影响。结果：６种卵巢癌细胞均表达Ｆａｓ均属中低表达,经ｐｃＤＮＡ３－     

Fas基因在卵巢癌细胞凋亡中的作用

目的 :检测Fas基因表达并观察转染Fas基因对卵巢癌细胞凋亡的影响 ,探讨其在卵巢癌发生、发展中的作用。方法 :经流式细胞术、RT PCR方法检测 6种卵巢癌细胞Fas的表达水平。构建pcDNA3 Fas真核表达载体 ,经脂质体转染细胞 ,通过流式细胞仪检测Fas基因表达变化。应用PI染色经流式细胞术检测观察转染Fas基因对3AO细胞凋亡的影响。结果 :6种卵巢癌细胞均表达Fas,均属中低表达。经 pcDNA3 Fas真核表达载体转染的卵巢癌细胞Fas基因表达及对Fas单抗诱导凋亡的敏感性均有不同程度提高。结论 :Fas基因低表达及对Fas介导凋亡的抵抗可能与卵巢癌发生、发展有关 ;转染Fas基因可提高Fas基因表达 ,可促进卵巢癌细胞凋亡     

靶向小鼠Abcb11基因CRISPR/Cas9系统的构建及效率检测

目的：ABCB11基因突变是肝内胆汁淤积症2型(PFIC-2)的主要病因,本研究试图构建特异性靶向小鼠Abcb11基因的CRISPR/Cas9系统,并检测该系统的基因编辑效率。方法：根据小鼠Abcb11基因的DNA序列,设计3条sgRNA导向序列,通过构建sgRNA表达载体,将sgRNA质粒和Cas9质粒一起转入N2a细胞,药物筛选,阳性细胞DNA的PCR产物测序以及TA克隆测序等实验,完成基因编辑系统构建及效率检测。结果：sgRNA3导向序列可用于编辑小鼠Abcb11基因,编辑效率为61.54%。结论：靶向小鼠Abcb11基因的编辑系统构建成功,且有较高的编辑效率,为后续建立精准模拟人类PFIC-2疾病的小鼠模型以及临床治疗奠定了基础。     

光诱导CRISPR/Cas9系统在基因表达调控中的研究进展

Cas9是CRISPR/Cas9系统中RNA引导的可切割双链DNA的核酸酶,野生型Cas9可通过基因剪切直接导致目的基因表达沉默.将Cas9蛋白D10A和H840A位点突变,可获得失去切割活性但仍保留与DNA结合能力的dCas9,其与转录激活因子连接后结合到DNA特定位点可实现转录激活;若dCas9直接与靶基因特定位点结合则可阻碍目的基因的转录.将光可调节物质引入CRISPR/Cas9可设计成光诱导CRISPR/Cas9系统.此系统在蓝光(470 nm)诱导下作用于靶DNA可实现人为可控的基因表达激活和抑制.本文主要介绍了光诱导CRISPR/Cas9系统的特性及其在基因表达调控中的运用.     

CRISPR/Cas9在基因治疗中的应用研究进展

常间回文重复序列丛集/常间回文重复序列丛集关联蛋白9（clusteredregularlyinterspacedshortpalindromicrepeats,CRISPR）/（CRISPR-associatedproteins9,Cas9）改造的第3代人工核酸内切酶,因其简单、高效等优点,已成为一种热门的基因编辑工具。近年来一些研究成功应用CRISPR/Cas9系统在体内外进行相关疾病基因的靶向修饰,为基因编辑技术在临床的应用奠定了基础,但其脱靶效应、导入方式、编辑效率等仍需改进。本文将对CRISPR/Cas9在基因治疗中的应用进展作一综述。     

CRISPR/Cas9系统构建ROCK2基因敲除肺癌细胞系

目的 利用CRISPR/Cas9编辑系统对人肺癌细胞系A549、H460细胞中Rho相关卷曲螺旋形成蛋白激酶2(ROCK2)基因进行稳定敲除,并对其敲除效果进行验证。初步探讨ROCK2基因敲除肺癌细胞株的细胞水平上的功能改变。方法 利用Rock-2 CRISPR 质粒和Rock-2 HDR 质粒转染构建A549、H460 ROCK2基因敲除稳定细胞株。蛋白质印迹法验证敲除效果、用定量逆转录-聚合酶链反应(RT-qPCR)检测ROCK2基因的mRNA表达水平。平板克隆形成实验、MTT法检测各细胞株的增殖能力。结果 A549、H460肺癌细胞中ROCK2基因稳定敲除株构建成功。与原始细胞株相比,ROCK2敲除株细胞中的蛋白表达水平完全缺失,细胞内的mRNA表达水平显著下降,而且能降低A549、H460肺癌细胞的增殖能力。结论 利用CRISPR/Cas9基因编辑系统获得ROCK2基因敲除的肺癌细胞系,为进一步研究ROCK2对肺癌生长的影响奠定基础。     

CRISPR/Cas9基因编辑技术及其在肿瘤研究中的进展

恶性肿瘤是严重威胁中国人群健康的主要公共卫生问题之一.根据国家癌症中心统计数据[1 ]显示,恶性肿瘤死亡占居民全部死因的23. 91％,2015年恶性肿瘤发病392. 9万人,死亡233. 8万人.随着多重基因分型和高通量基因组分析等测序技术的迅猛发展[2-3 ] ,大多数癌症基因组的遗传变异已在结构上得到鉴定,但由于...     

基于CRISPR/Cas9基因编辑技术生成靶向识别Her2的B细胞免疫治疗研究

目的 利用规律成簇的间隔排列的短回文重复序列及其核酸酶9(CRISPR/Cas9)基因编辑技术构建靶向识别Her2的B细胞,探究基因编辑B细胞的抗肿瘤免疫治疗作用。方法 设计针对B细胞抗原受体（BCR）的sgRNA并克隆至lentiCRISPR v2载体上,经重组T7核酸内切酶I(T7E1)酶切实验验证sgRNA的切割效率。通过分子克隆技术从曲妥珠单抗基因中调取scFv序列并和同源臂连接在一起,构建到cppt-IRES-GFP慢病毒载体中作为同源重组模板。分别将Cas9/sgRNA表达质粒和同源模板质粒与BaEVTR包膜质粒、psPAX2-D64V骨架质粒包装成整合酶缺陷的慢病毒（IDLV）,用2种慢病毒同时感染人原代B细胞进行基因编辑。将基因编辑的B细胞与Her2阳性肿瘤细胞SKBR-3共培养,通过流式检测B细胞的活化和增殖。用293T-CD40L-sBAFF饲养细胞扩增基因编辑的B细胞。从临床生物样本库获取Her2阳性乳腺癌标本构建患者来源的肿瘤类器官模型,评估基因编辑B细胞浸润、清除肿瘤的能力。结果 选择IGHD作为打靶位点、切割率最高的sgRNA（约为52%）作为最终的打靶序列...     

CRISPR/Cas9技术在卵巢癌转移中的研究进展

嘌呤碱受体分为P1和P2两大类,其中P2X是非选择性阳离子通道,分为P2X1～P2X7,共7种亚型,其与三磷酸腺苷结合后可触发各种反应。P2X4R是P2受体的一个亚型,主要分布在小胶质细胞。正常状态下,P2X4R对小胶质细胞的激活和存活有重要作用。在正常生理情况下往往都是低水平表达,但在病理状态下P2X4R表达上调,参与机体疼痛以及神经系统疾病的发生、发展,如阿尔茨海默病（Alzheimer′s disease,AD）、帕金森病（Parkinson′s disease,PD）、肌萎缩性侧索硬化（amyotrophic lateral sclerosis,ALS）等。本文主要研究P2X4R在神经退行性疾病发生发展中的作用,以及P2X4R作为神经退行性疾病潜在的治疗靶点,可对上述疾病的治疗提供新途径。     

CRISPR/Cas9技术在卵巢癌转移中的研究进展

由成簇规律间隔短回文重复序列（clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR）及其相关蛋白9(CRISPR associated nuclease,Cas9)介导的基因编辑技术已被广泛用于探究癌症相关基因的功能、建立癌症动物模型和探测物药靶点,是一种高效、快速和位点特异性的工具。近年来,卵巢癌发病率逐年增加,严重威胁女性健康。目前多采用手术、放疗、化疗或联合治疗等方法延缓疾病的进展,但效果不佳,是临床迫切需要解决的一大问题。因此,利用CRISPR/Cas9技术靶向致病基因、筛选相关功能基因及寻找新的药物靶点为卵巢癌的治疗带来了希望。本研究对既往CRISPR/Cas9技术在卵巢癌转移中的研究应用进行综述,希望对该领域未来的研究奠定理论基础,也为肿瘤特别是卵巢癌的治疗提供新的参考。     

利用CRISPR/Cas9技术敲除HeLa细胞中YAF2基因

目的 利用CRISPR/Cas9技术建立YAF2（YY1 associated factor 2）基因敲除的宫颈癌HeLa细胞株,用于YAF2基因在宫颈癌细胞中分子功能的研究。方法 首先利用CRISPR/Cas9序列设计网站,设计两对靶向YAF2基因第2外显子不同位点的向导RNA（single-guide RNA,sgRNA）。化学合成sgRNA寡核苷酸序列,分别克隆至质粒pX335中,测序确认插入片段正确的克隆。先用一对重组载体转染HeLa细胞,7天后,再用另一对转染HeLa细胞,第2对转染3天后,取培养细胞的2/3提取基因组DNA,对敲除位点附近的片段进行PCR扩增后通过DNA测序对敲除效率进行分析,剩余细胞在96孔平板上通过有限稀释法筛选YAF2敲除的细胞株。用蛋白质免疫印迹实验初步鉴定YAF2蛋白质表达缺失的细胞克隆,提取其基因组DNA,对敲除位点附近的序列进行PCR扩增,将扩增产物克隆至pGEM-T easy载体,通过DNA测序确认YAF2基因纯合敲除的细胞株。结果 成功构建两对针对人YAF2基因第二外显子的pX335-sgRNA质粒;PCR产物测序证明两对重组载体均有YAF2基因敲除活性;得到2株YAF2敲除的HeLa细胞株。结论 利用CRISPR/Cas9技术在HeLa细胞中成功敲除YAF2基因,为在HeLa细胞中研究YAF2的分子功能奠定基础。     

Fas/Fas L介导细胞凋亡在多发性骨髓瘤中的作用

细胞凋亡 (ａｐｏｐｔｏｓｉｓ)是指为维持内环境稳定 ,由基因控制的细胞自主的有序性死亡。它涉及一系列基因的激活、表达与调控。Ｆａｓ抗原 (ＡＰＯ 1,ＣＤ95)及其配体 (Ｆａｓｌｉｇａｎｄ ,ＦａｓＬ)的相互作用是引起细胞凋亡的主要途径之一 ,它们在免疫生物学方面的效应引起了人们广泛的兴趣。在肿瘤的发病机制方面 ,目前认为不仅是瘤细胞无限增殖 ,更重要的是细胞不凋亡 ,才导致肿瘤的发生。多药耐药也与凋亡缺陷有关。多发性骨髓瘤 (ｍｕｌｔｉｐｌｅｍｙｅｌｏｍａ ,ＭＭ )是源于浆细胞的恶性肿瘤 ,其发病机制不清 ,尚不能治愈。对…     

靶向人巨细胞病毒UL145基因的CRISPR/Cas9基因敲除质粒的构建

目的 构建靶向人巨细胞病毒UL145基因的CRISPR/Cas9基因敲除质粒.方法 根据CRISPR/Cas9设计原则,设计3条靶向UL145基因的gRNA,构建重组lenti CRISPR-UL145-T1、T2、T3表达质粒,转化并挑选阳性克隆,进行PCR及测序验证.同时通过荧光素酶SSA(Luciferase S...     

CRISPR/Cas9系统在现代生物学研究和临床试验中的应用

 规律成簇间隔短回文重复结构(clustered regularly interspaced short palindromic repeats,CRISPR)/CRISPR相关蛋白9(CRISPR-associated protien 9,Cas9)系统在生物医学研究中被广泛应用于基因编辑及探索基因的功能。这种基因编辑技术越来越多地运用在人类疾病的治疗中,包括巴斯综合征、杜氏肌萎缩症、血友病、地中海贫血和囊性纤维化。CRISPR/Cas 9基因编辑系统可以在体外细胞实验和体内动物实验上修复突变的DNA序列,也能改变 CCR5、PD-1/L1、CAR-T等基因序列,用于控制 HIV病毒的入侵及提高肿瘤免疫治疗的疗效。该技术还被运用于诱导多能干细胞(induced pluripotent stem cells,iPS)分化,形成某些具有功能的器官用于器官移植。本文综述了CRISPR/Cas 9系统的来源、结构和作用原理,以及其在现代生物学研究和基因治疗领域的应用。     

利用CRISPR/Cas9系统建立斑马鱼Morn3基因敲除模型

目的：采用高效基因编辑系统CRISPR/Cas9对斑马鱼的Morn3基因进行编辑,以期建立Morn3基因敲除斑马鱼模型。方法：针对斑马鱼Morn3基因用生物信息学选取靶位点,构建gRNA表达载体并体外转录,将gRNA和Cas9mRNA混合物显微注射到斑马鱼单细胞期的受精卵中,24~48 h提取基因组DNA,PCR扩增出目的片段,限制性酶切法初步检测基因打靶情况,最后进行测序分析确定编辑效果。结果：取3个靶位点（M1、M2、M3）进行试验,选择gRNA浓度较高的M2和M3进行注射。限制性酶切及测序的结果显示M3已产生基因编辑效应。结论：本研究通过CRISPR/Cas9系统成功获得Morn3基因编辑的突变体,为进一步探讨Morn3基因的作用提供研究基础。     

CRISPR/Cas9基因编辑技术在肿瘤耐药研究中的应用进展

成簇规律间隔短回文重复序列/CRISPR相关核酸酶9(CRISPR/Cas9)基因编辑系统是存在于细菌和古生细菌中的一种抵御外源DNA入侵的适应性免疫反应系统.与传统的锌指核酸酶(ZFN)和转录激活样因子效应物核酸酶(TALEN)基因编辑技术相比,CRISPR/Cas9操作更加简便、高效.目前,该技术已在肿瘤耐药研究中得到广泛应用,包括乳腺癌和白血病耐药等诸多方面.CRISPR/Cas9技术的应用虽仍存在脱靶效应等问题,但其应用前景非常广阔.本文就其在肿瘤耐药研究方面的应用进行综述.     

CRISPR/Cas 基因组靶向编辑技术综述

Clustered regularly interspaced short palindromic repeats （CRISPR）/CRISPR-associated（Cas）是细菌特有的一种获得性免疫系统,研究人员将其改造成为靶向基因组编辑的工具,由于操作简单、成功率高且效率高,成为了靶向基因组编辑工具中的佼佼者。同时CRISPR/Cas系统也被改造作为一种极为有效的位点特异性的转录抑制/激活的工具而在研究工作中广泛应用,不仅如此,具有靶向细胞转录过程中产生的RNA底物的利用前景,从而起到与RNAi技术相类似的效果。 CRISPR-Cas技术已经在基因功能研究、动物模型建立、基因治疗等领域得到广泛的推广和应用,有力地推动了相关领域的研究进展。     

利用CRISPR/Cas9系统在Beta-TC-6细胞株中剔除Sidt2基因

目的:利用CRISPR/Cas9基因编辑系统和电穿孔技术,在小鼠胰岛素瘤胰岛β细胞(Beta-TC-6)中剔除溶酶体膜蛋白Sidt2基因。方法:针对小鼠Sidt2基因设计向导RNA(sgRNA),sgRNA退火合成双链后克隆到px459载体中。测序鉴定成功的重组质粒命名为px459-Sidt2并大量扩增。使用NEPA 21高效基因转染系统将px459-Sidt2重组质粒电转到Beta-TC-6细胞中,电转染48 h后使用嘌呤霉素加压进行阳性细胞筛选。阳性细胞扩增冻存,得到Sidt2基因剔除混合克隆细胞株,提取细胞DNA及蛋白,利用T7酶以及Western blot方法检测细胞株中Sidt2的敲除效果。结果:成功构建靶向小鼠Sidt2基因的px459重组质粒px45-Sidt2。使用NEPA 21高效基因转染系统电转Beta-TC-6的最佳电转参数为脉冲电压150 V,脉冲时间5 ms,脉冲间隔50 ms,脉冲次数2次,电压衰减10%,电穿孔模式为正方向。与对照组细胞相比,嘌呤霉素加压筛选得到的Beta-TC-6阳性细胞中的Sidt蛋白表达缺失(P<0.05),成功在小鼠胰岛素瘤胰岛β细胞(Beta-TC-6)中剔除溶酶体膜蛋白Sidt2基因。结论:利用CRISPR/Cas9基因编辑系统以及电穿孔技术,在相对难转染的小鼠胰岛素瘤胰岛β细胞Beta-TC-6成功剔除Sidt2基因。     

CRISPR/Cas9基因编辑系统的发展及其在医学研究领域的应用

近年来,CRISPR/Cas9技术凭借着其操作方便、设计简单、效率高、成本低以及可同时进行多位点编辑等优势,已成为当今最热的新一代基因编辑技术。CRISPR/Cas9独特的在RNA引导下对DNA进行靶向编辑的作用机制,不仅拓展了各相关领域的科研工作者们对生物体遗传调控的了解,更显示出优良的便捷性。近十年来,该系统在各生物、医学研究领域应用极为广泛,发展迅速。在医学领域,更是显示出极大的潜力。本文从CRISPR/Cas9基因编辑系统的研究历史、作用机理以及该技术在医学领域的应用等方面综述其最新研究进展,为更好地应用和优化CRISPR/Cas9提供参考。