脂质体载体法转染FPRL1基因到HEK293细胞及其鉴定

目的验证脂质体载体法将FPRL1基因有效转染到HEK2 93细胞。方法G4 18筛选 ,RT PCR和趋化试验。结果用脂质体载体法将FPRL1基因转染HEK2 93细胞 ,G4 18筛选 ,3周形成集落状细胞克隆 ;RT PCR以FPRL1特异性引物扩增 ,凝胶电泳可见 1条约 70 0bp的目的片段 ,对照组为阴性 ;趋化实验显示HEK2 93/FPRL1细胞在一定浓度的fMLP的刺激下有趋化活性 ,而HEK2 93细胞无反应。结论初步证实脂质体载体法能有效地将FPRL1基因导入HEK2 93细胞 ,且FPRL1在细胞中有表达     

脂质体载体法转染FPRL1基因到HEK293细胞及其鉴定

[目的]验证脂质体载体法将FPRL1基因有效转染到HEK293细胞。[方法]G418筛选，RT-PCR和趋化试验。[结果]用脂质体载体法将FPRL1基因转染HEK293细胞，G418筛选，3周形成集落状细胞克隆；RT-PCR以FPRL1特异性引物扩增，凝胶电泳可见1条约700bp的目的片段，对照组为阴性；趋化实验显示HEK293/FPRL1细胞在一定浓度的fMLP的刺激下有趋化活性，而HEK293细胞无反应。[结论]初步证实脂质体载体法能有效地将FPRL1基因导入HEK293细胞，且FPRL1在细胞中有表达。     

脂质体介导法转染mIMCD-3细胞的可行性及最佳转染条件

背景:近年来阳离子脂质体成为基因转移较为常用的载体,但应用脂质体对mIMCD-3细胞株进行转染的相关报道较少。目的:探讨脂质体法转染mIMCD-3细胞株的可行性,并通过优化脂质体转染效率的影响因素,获得mIMCD-3的最佳转染条件。方法:以绿色荧光蛋白作为报告基因,采用脂质体LipofectamineTM2000包裹pIRES2-EGFP质粒转染mIMCD-3细胞,分别按照细胞接种密度、DNA用量、DNA与脂质体的比例、不同的质粒抽提方法、血清有无设定分组,观察以上因素对mIMCD-3细胞转染效率的影响。结果与结论:采用脂质体LipofectamineTM 2000转染mIMCD-3细胞,在2×108L-1细胞接种浓度、1μgDNA用量、1:3的DNA与脂质体比例时,转染效率最高。采用美国OMEGA公司生产的E.Z.N.A. Endo-Free Plasmid Mini Kit抽提的质粒能获得更高的转染效率。转染前漂洗细胞后换入无血清培养基比有血清组转染效率高(P<0.01),而转染后6h加入血清不影响转染效率。结果显示,脂质体法转染mIMCD-3细胞株是可行的,通过优化脂质体转染效率的影响因素,获得了mIMCD-3的最佳转染条件,可作为有关研究或应用的参考。     

脂质体介导法转染mIMCD-3细胞的可行性及最佳转染条件

背景：近年来阳离子脂质体成为基因转移较为常用的载体,但应用脂质体对mIMCD-3细胞株进行转染的相关报道较少。目的：探讨脂质体法转染mIMCD-3细胞株的可行性,并通过优化脂质体转染效率的影响因素,获得mIMCD-3的最佳转染条件。方法：以绿色荧光蛋白作为报告基因,采用脂质体Lipofectamine^TM2000包裹pIRES2-EGFP质粒转染mIMCD-3细胞,分别按照细胞接种密度、DNA用量、DNA与脂质体的比例、不同的质粒抽提方法、血清有无设定分组,观察以上因素对mIMCD-3细胞转染效率的影响。结果与结论：采用脂质体Lipofectamine^TM 2000转染mIMCD-3细胞,在2×10^8L^-1细胞接种浓度、1μgDNA用量、1：3的DNA与脂质体比例时,转染效率最高。采用美国OMEGA公司生产的E.Z.N.A. Endo-Free Plasmid Mini Kit抽提的质粒能获得更高的转染效率。转染前漂洗细胞后换入无血清培养基比有血清组转染效率高（P〈0.01）,而转染后6h加入血清不影响转染效率。结果显示,脂质体法转染mIMCD-3细胞株是可行的,通过优化脂质体转染效率的影响因素,获得了mIMCD-3的最佳转染条件,可作为有关研究或应用的参考。     

超声联合微泡增强脂质体介导基因转染RPE细胞的实验研究

目的 比较声诺维联合超声与脂质体法介导基因转染RPE细胞的转染率和安全性,探讨超声联合微泡增强脂质体转染率的可行性.方法 RPE细胞培养在24孔板,质粒用量2 μg/孔,分为对照组、超声辐照组、超声联合微泡组(包括2 W/cm2和3 W/cm2两个亚组)、脂质体组、脂质体+超声+微泡组5组,每组10孔细胞.荧光显微镜观察基因转染情况,流式细胞仪检测基因转染率,Annexin Ⅴ-FITC和PI双染流式细胞法检测凋亡率.结果 单纯超声辐照组基因转染率为(1.06±0.13)%,超声联合微泡组分别为(15.81±1.70)%和(20.86±2.63)%,脂质体组为(30.06±3.49)%,明显高于超声联合微泡组(P<0.05).脂质体+超声+微泡组为(44.51±1.28)%,明显高于脂质体组(P<0.05).结论 脂质体介导EGFP转染RPE细胞的效率高于超声联合微泡的转染率.超声联合微泡能明显提高脂质体的转染率.     

PEI与脂质体介导基因转染的比较研究

目的：比较新型转染试剂阳离子聚合物聚乙烯亚胺（PEI）与脂质体2000介导的血管内皮细胞生长因子 VEGF165基因转染人胚肾细胞293T 的转染效率,为基因转染提供新的方法。方法分别采用脂质体和不同 N／P 比值的 PEI 将合成的含有绿色荧光蛋白（GFP）和 VEGF165的质粒转入293T 细胞。转染24 h 后,采用 CCK-8试剂盒检测细胞活性;转染48 h 后在荧光显微镜下观察比较两种转染方法的转染效率,并通过 ELISA 方法检测细胞上清液中 VEGF165浓度,比较两种方法的转染效果。结果当 N／P＝9时,PEI 转染的细胞活性与脂质体转染相近,对细胞的毒性较小;此时,PEI 转染效率与脂质体也相似,均可达到约70％;同样,转染后细胞上清中 VEGF165浓度较未转染组提高（P ＜0．05）,但两种方法转染组间比较差异无统计学意义（P ＞0．05）。结论PEI 作为一种新型的转染试剂,与脂质体相比,在一定比例范围内,具有转染效率高,对细胞毒性小且价格低廉的优势,有望成为基因转染的有效载体。     

阳离子脂质体介导的基因转移机制

背景:与病毒载体相比,许多天然与合成的阳离子类脂以脂质体的形式用于基因转移,具有无免疫原性、易生产、质粒免受核酸酶降解和无致瘤性等优点,并且作为病毒载体的有效替代物,阳离子脂质体能用于细胞的体内和体外转染.目的:介绍阳离子脂质体介导的基因转移机制研究进展.方法:由第一作者用计算机检索中国期刊全文数据库(CNKI:1987/2010)和PubMed (1987/2010)数据库,检索词分别为"基因治疗、阳离子脂质体、基因转移、机制"和"gene therapy,cationic liposome,gene transfer,mechanism",语言分别设定为中文和英文.从阳离子脂质体基因转染和基因转移机制进行总结,综述了阳离子脂质体介导的基因转移机制.结果与结论:共检索到108篇,按纳入和排除标准对文献进行筛选,共纳入20篇文章.综述了阳离子脂质体介导的基因转移机制,包括阳离子脂质体/DNA复合物的形成、细胞吸收、内含体释放和复合物解体以及细胞核摄入等方面的研究内容.结果提示,对类脂构效关系和基因转移机制的研究,是提高阳离子脂质体转染效率和优化基因治疗的关键.     

阳离子脂质体介导的基因转移机制

背景：与病毒载体相比,许多天然与合成的阳离子类脂以脂质体的形式用于基因转移,具有无免疫原性、易生产、质粒免受核酸酶降解和无致瘤性等优点,并且作为病毒载体的有效替代物,阳离子脂质体能用于细胞的体内和体外转染。目的：介绍阳离子脂质体介导的基因转移机制研究进展。方法：由第一作者用计算机检索中国期刊全文数据库（CNKI：1987/2010）和PubMed（1987/2010）数据库,检索词分别为＂基因治疗、阳离子脂质体、基因转移、机制＂和＂gene therapy,cationic liposome,gene transfer,mechanism＂,语言分别设定为中文和英文。从阳离子脂质体基因转染和基因转移机制进行总结,综述了阳离子脂质体介导的基因转移机制。结果与结论：共检索到108篇,按纳入和排除标准对文献进行筛选,共纳入20篇文章。综述了阳离子脂质体介导的基因转移机制,包括阳离子脂质体/DNA复合物的形成、细胞吸收、内含体释放和复合物解体以及细胞核摄入等方面的研究内容。结果提示,对类脂构效关系和基因转移机制的研究,是提高阳离子脂质体转染效率和优化基因治疗的关键。     

阳离子脂质体介导转染核酸的研究

阳离子脂质体介导转染法是一种新的高效转染技术 ,已逐渐成为介导核酸进入真核细胞的标准方法。但由于大多数的阳离子脂质体的血清稳定性差 ,且阳离子脂质体与体内网状内皮细胞系统的关系不明 ,在一定程度上限制了其体内的应用     

电穿孔法基因转染K562细胞条件的优化

目的以绿色荧光蛋白(GFP)为观察指标优化K562细胞的电穿孔基因转染条件。方法通过改变悬液体积、温度及缓冲液、质粒浓度等转染条件,采用不同条件组合后用电穿孔法将质粒DNA转入K562细胞,通过流式细胞仪和荧光显微镜观察转染效率。结果①在电压250V、电容950μF的条件下.K562细胞得到58.6%的最大转染率。②应用0.4mL细胞悬液体积,当质粒浓度≥20μg/mL时可得到较高的转染效率。③温度和缓冲液中的血清成分对电穿孔效率影响不大。结论电穿孔是一种高效的基因转染法,通过优化条件,可提高转染率。     

超声辐照微泡声学造影剂增强脂质体介导肝细胞基因转染的体外实验研究

目的研究超声破坏微泡声学造影剂提高脂质体介导肝细胞生长因子质粒（plRES—EGFP—HGF）在肝细胞中转染率的可行性。 方法将培养的肝细胞分为4组：（1）单纯对照组，（2）脂质体转染组，（3）超声辐照脂质体转染组，（4）超声辐照微泡＋脂质体转染组。第（4）组按照每孔加入造影剂剂量又分为1）10μl组，2）20μl组，3）30μl组，4）40μl组4亚组。超声辐照微泡＋脂质体转染组在脂质体介导肝细胞生长因子转染肝细胞1h后，在24孔板中每孔加入微泡声学造影剂10，20，30或40μl，超声辐照60s。24h后用荧光显微镜观察绿色荧光蛋白表达情况、MTT法检测肝细胞增殖率和流式细胞仪检测基因转染率。 结果超声频率1MHz，功率0．5W／cm。辐照60S，每孔加入造影剂30μl时肝细胞基因转染效率最高，与脂质体转染组比较有显著性。 结论在一定条件下，超声辐照微泡声学造影剂可明显提高脂质体介导肝细胞基因转染效率，为基因治疗提供了新的思路。     

分泌人内皮抑素基因工程细胞系的建立

目的建立稳定的基因工程细胞系。方法将含有白细胞介素-2（IL-2）分泌肽的人endostatin全长cDNA插入真核表达载体pSNA2.0,产生重组质粒pSNA2.0/hEndostatin,利用阳离子脂质体介导将其转染到人HEK293细胞中,G418筛选后得到阳性克隆hED/293,采用Western-blot检测转染细胞上清中endostatin蛋白的表达。结果hED/293细胞株培养上清中有endosta-tin蛋白的表达,分子量为20000。结论重组pSNA2.0/hEndostatin真核表达载体构建正确,转染HEK293细胞后可有效的表达人endostatin蛋白,并能分泌到细胞外。     

慢病毒载体介导Mdr1基因转染人骨髓间充质干细胞的实验研究

本研究探讨多药耐药（mdr1）基因体外转染人骨髓间充质干细胞（BMMSC）以应用于基因治疗的可行性、安全性。体外分离、培养、鉴定MSC;采用具有高效转染非分裂期细胞的慢病毒载体（1entiviralvector,LV）系统将mdr1基因导入BMMSC中;采用RT—PCR和GFP荧光技术检测目的基因的表达,台盼蓝染色及MTT法检测转染后细胞的增殖能力。结果表明：慢病毒感染MSC的感染复数（multiplicityofinfection,MOI）为10,最佳感染率可达80％;Msc表面低表达CD34、HLA—DR、CD31、CD45,高表达CD44、CDl05、CD90、CDl3;GFP荧光表达自72小时开始出现,以后逐渐增强;转染细胞中显示目的基因mRNA的表达;转染对MSC存活及增殖几乎无影响（P〉0．05）。结论：慢病毒载体可成功转染人骨髓间充质干细胞并使其mdrl表达增高,转染对MSC存活及增殖基本无影响。     

重组腺病毒AdmIL-12对树突状细胞的基因转染

目的：应用重组腺病毒AdmIL-12转染树突状细胞（DC）制备DC疫苗。方法：以重组腺病毒AdmIL-12转染DC后,用流式细胞仪检测DC的表型,用RT-PCR检测IL-12在DC内的表达,用EILSA法测定细胞培养上清液中的mIL-12和mIFN-γ的含量。通过IL-12刺激T细胞分泌IFN-γ的能力以检测DC分泌的IL-12的生物活性。结果：重组腺病毒AdmIL-12能高效转染DC,转染后DC的表型无显著改变,转染DC能大量分泌具有生物活性的IL-12。结论：腺病毒AdmIL-12成功转染DC,获得有效的DC疫苗。     

一种新的离体培养大鼠海马神经元基因转染技术

目的:探讨一种新的离体培养大鼠海马神经元基因转染方法。方法:选用17d的胚胎SD大鼠,取海马组织分离成细胞悬液,离心去上清并用混有2μg CAG-RE质粒的电转液重悬,置Neucleofector电转染仪中,选用O-03程序进行电转染,后用基础神经元培养液稀释并接种于培养皿中,4h后,待细胞贴壁时换新的神经元维持培养液,继续培养,选择不同时间点在荧光显微镜下观察,并计算在转染后4d时神经元的转染效率。结果:电转染24h后可以观察到有绿色荧光蛋白表达的转染神经元,荧光可以持续表达到2周,转染效率可达60%～80%,神经元生长良好,神经突起显示清楚。结论:电穿孔基因转染技术可以作为离体培养海马神经元很好的基因导入方法。     

人粒系巨噬系克隆刺激因子基因导入真核细胞及其表达

目的：获得带糖链、近天然的重组人粒系巨噬系克隆刺激因子（ｈＧＭ－ＣＳＦ），以期为临床提供更安全、稳定的细胞因子。方法：采用基因重组技术，构建编码ｈＧＭ－ＣＳＦ的稳转载体ｐＭＥｎｅｏ－ｈＧＭ－ＣＳＦ，以酶切和猴肾细胞ＣＯＳ瞬时转染鉴定后，用磷酸钙－ＤＮＡ共沉淀法将重组质粒导入中国仓鼠卵细胞（ＣＨＯ）。结果：经Ｇ４１８加压筛选（８００μｇ／ｍｌ～１ｍｇ／ｍｌ），获得可表达ｈＧＭ－ＣＳＦ的细胞株。常规或载体培养ＣＨＯ－ｈＧＭ－ＣＳＦ细胞株上清可直接刺激ｈＧＭ－ＣＳＦ依赖细胞株的增殖，ＭＴＴ测定活性单位可达１×１０７ｕ／Ｌ原液。ＳＤＳ－ＰＡＧＥ及Ｗｅｓｔｅｒｎｂｌｏｔ分析显示ｒｈＧＭ－ＣＳＦ主带在２８ＫＤ位左右，为２Ｎ糖链型。结论：此ＣＨＯ－ｈＧＭ－ＣＳＦ细胞株表达稳定，活性较高，具有开发价值。     

Targeted Gene Transfection from Microbubbles into Vascular Smooth Muscle Cells Using Focused,Ultrasound-Mediated Delivery

We investigated a method for gene delivery to vascular smooth muscle cells using ultrasound triggered delivery of plasmid DNA from electrostatically coupled cationic microbubbles. Microbubbles carrying reporter plasmid DNA were acoustically ruptured in the vicinity of smooth muscle cells in vitro under a range of acoustic pressures (0 to 950 kPa) and pulse durations (0 to 100 cycles). No effect on gene transfection or viability was observed from application of microbubbles, DNA or ultrasound alone. Microbubbles in combination with ultrasound (500-kPa, 1-MHz, 50-cycle bursts at a pulse repetition frequency [PRF] of 100 Hz) significantly reduced viability both with DNA (53 ± 27%) and without (19 ± 8%). Maximal gene transfection (∼1% of cells) occurred using 50-cycle, 1-MHz pulses at 300 kPa, which resulted in 40% viability of cells. We demonstrated that we can locally deliver DNA to vascular smooth muscle cells in vitro using microbubble carriers and focused ultrasound. (E-mail: jh7fj@virginia.edu)