Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

血管内皮细胞通透性的变化与人类的许多疾病有关,如动脉粥样硬化、高血压、中风、炎症反应、肿瘤、糖尿病引起的视网膜病变和黄斑水肿等.剪切力是作用于血管内皮细胞的主要力学因素并对血管内皮细胞通透性起重要作用.Rho GTP酶家族是细胞信号转导通路中的一类重要蛋白,参与血管内皮细胞通透性的调控.研究表明,Rho GTP酶在介导剪切力引起血管内皮细胞通透性变化的过程中起重要的信号传导作用.就剪切力对血管内皮细胞通透性的影响以及Rho GTP酶在其分子机制上的作用进行综述.     

Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

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Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

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Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

血管内皮细胞通透性的变化与人类的许多疾病有关,如动脉粥样硬化、高血压、中风、炎症反应、肿瘤、糖尿病引起的视网膜病变和黄斑水肿等.剪切力是作用于血管内皮细胞的主要力学因素并对血管内皮细胞通透性起重要作用.Rho GTP酶家族是细胞信号转导通路中的一类重要蛋白,参与血管内皮细胞通透性的调控.研究表明,Rho GTP酶在介导剪切力引起血管内皮细胞通透性变化的过程中起重要的信号传导作用.就剪切力对血管内皮细胞通透性的影响以及Rho GTP酶在其分子机制上的作用进行综述.     

Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

血管内皮细胞通透性的变化与人类的许多疾病有关,如动脉粥样硬化、高血压、中风、炎症反应、肿瘤、糖尿病引起的视网膜病变和黄斑水肿等.剪切力是作用于血管内皮细胞的主要力学因素并对血管内皮细胞通透性起重要作用.Rho GTP酶家族是细胞信号转导通路中的一类重要蛋白,参与血管内皮细胞通透性的调控.研究表明,Rho GTP酶在介导剪切力引起血管内皮细胞通透性变化的过程中起重要的信号传导作用.就剪切力对血管内皮细胞通透性的影响以及Rho GTP酶在其分子机制上的作用进行综述.     

Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

血管内皮细胞通透性的变化与人类的许多疾病有关,如动脉粥样硬化、高血压、中风、炎症反应、肿瘤、糖尿病引起的视网膜病变和黄斑水肿等.剪切力是作用于血管内皮细胞的主要力学因素并对血管内皮细胞通透性起重要作用.Rho GTP酶家族是细胞信号转导通路中的一类重要蛋白,参与血管内皮细胞通透性的调控.研究表明,Rho GTP酶在介导剪切力引起血管内皮细胞通透性变化的过程中起重要的信号传导作用.就剪切力对血管内皮细胞通透性的影响以及Rho GTP酶在其分子机制上的作用进行综述.     

Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

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Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

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Rho GTP酶介导剪切力引起的血管内皮细胞通透性变化

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蛋白激酶C与内皮细胞骨架蛋白和血管通透性研究进展

蛋白激酶C作为一种重要的蛋白激酶和细胞内信号分子,可作用于多种底物蛋白;内皮细胞骨架蛋白作为PKC的一种重要作用底物,在维持细胞形态、黏附及细胞连接中起重要的作用。炎症介质等作用于内皮细胞膜受体或通过其他途径,可引起细胞骨架蛋白含量、分布和功能的变化,导致内皮回缩,细胞连接间隙形成,是血管通透性增加的主要机制。而激活的PKC作用于骨架蛋白是引起血管通透性增加的重要途径之     

Rho and rho kinase modulation of barrier properties: cultured endothelial cells and intact microvessels of rats and mice

Previous experiments using cultured endothelial monolayers indicate that Rho-family small GTPases are involved in modulation of endothelial monolayer permeability by regulating assembly of the cellular actin filament scaffold, activity of myosin-based contractility and junctional distribution of the Ca²⁺-dependent endothelial cell adhesion molecule, VE-cadherin. We investigated these mechanisms using both cultured endothelial cells (from porcine pulmonary artery and mouse heart) and vascular endothelium in situ (mouse aorta, and individually perfused venular microvessels of mouse and rat mesentery). Exposure to Clostridium difficile toxin B (100 ng ml⁻¹) inactivated 50–90 % of all endothelial Rho proteins within 60–90 min. This was accompanied by considerable reduction of actin filament stress fibres and junctional F-actin in cultured endothelial monolayers and in mouse aortic endothelium in situ . Also, VE-cadherin became discontinuous along endothelial junctions. Inhibition of Rho kinase with Y-27632 (30 μ m ) for 90–120 min induced F-actin reduction both in vitro and in situ but did not cause redistribution or reduction of VE-cadherin staining. Perfusion of microvessels with toxin B increased basal hydraulic permeability ( L _p) but did not attenuate the transient increase in L _p of microvessels exposed to bradykinin. Perfusion of microvessels with Y-27632 (30 μ m ) for up to 100 min reduced basal L _p but did not attenuate the permeability increase induced by platelet activating factor (PAF) or bradykinin. These results show that toxin B-mediated reduction of endothelial barrier properties is due to inactivation of small GTPases other than RhoA. Rho proteins as well as RhoA-mediated contractile mechanisms are not involved in bradykinin- or PAF-induced hyperpermeability of intact microvessels.